生鲜牛奶检验标准.docx
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生鲜牛奶检验标准
生鲜牛奶检验标准
1.0鲜奶的感官理化指标
1.1感官指标
正常生鲜牛奶为乳白色或略带微黄色的均匀胶体，无粘稠、浓厚、分层现象；不得有肉眼可见的机械杂质；具备乳的正常滋气味，不得有苦、咸、涩、臭等异味。
2.0鲜奶的理化指标
标准
可接受
不可接受
脂肪含量％
3.2
≥3.1
＜3.1
蛋白质含量％
3.0
≥2.95
＜2.95
密度（20/4）
1.030
1.028-1.032
＜1.028或＞1.032
滴定酸度oT
16
14－18
＜14或＞18
杂质度ppm
≤4
＞4
汞ppm
≤0.01
＞0.01
农药残留
≤0.1
＞0.1
酒精试验
通过80％
通过75％
未通过75％
冰点
-0.54－-0.59
＜-0.59或＞-0.54
抗生素ug/ml
－青霉素
≤0.004
＞0.004
－其它
未检出
检出
体细胞
≤50万/ml
＞50万/ml
3.0鲜奶的微生物指标
标准
可接受
不可接受
菌落总数
≤50万
50万－200万
＞200万
芽孢总数
≤100
100－1000
＞1000
耐热芽孢总数
≤10
10－100
＞100
嗜冷菌
≤100
100－1000
＞1000
4.0常规检验方法
4.1相对密度的测定
4.1.1仪器：
乳稠计：
20℃/4℃或15℃/15℃；玻璃圆桶：
200～250ml
4.1.2测定方法步骤：
将10～25℃的牛乳样品小心的注入容积为250ml的量桶中，加至量桶容积的3/4，不要产生泡沫。
用手拿住乳稠计上部小心的将它沉入到相当标尺刻度30处，放手让它在乳中自由浮动，但不能接触筒壁。
待静止1～2min后。
读取乳稠计刻度，以牛乳表面层与乳稠计的接触点（即新月形表面的顶点）为准。
根据牛乳温度和乳稠计读数，查牛乳温度换算表，将乳稠计读数换算成20℃或15℃时的读数。
相对密度D204与乳稠计读数的关系如式所示：
乳稠计读数＝（D204-1..000）×1000
4.1.3牛乳温度与相对密度换算表
乳稠计读数
牛乳温度℃
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
换算成20℃时牛乳乳稠计读数
25
23.3
23.5
23.6
23.7
23.9
24.0
24.2
24.4
24.6
24.8
25.0
25.2
25.4
25.6
25.5
23.7
23.9
24.0
24.2
24.4
24.5
24.7
24.9
25.1
25.3
25.5
25.7
25.9
26.1
26
24.2
24.4
24.5
24.7
24.9
25.0
25.2
25.4
25.6
25.8
26.0
26.2
26.4
26.6
26.5
24.6
24.8
24.9
25.1
25.3
25.4
25.6
25.8
26.0
26.3
26.5
26.7
26.9
27.1
27
25.1
25.3
25.5
25.6
25.7
25.9
26.1
26.3
26.5
26.8
27.0
27.2
27.5
27.7
27.5
25.5
25.7
25.8
26.1
26.1
26.3
26.6
26.8
27.0
27.3
27.5
27.7
28.0
28.2
28
26.0
26.1
26.3
26.5
26.6
26.8
27.0
27.3
27.5
27.8
28.0
28.2
28.5
28.7
28.5
26.4
26.6
26.8
27.0
27.1
27.3
27.5
27.8
28.0
28.3
28.5
28.7
29.0
29.2
29
26.9
27.1
27.3
27.5
27.6
27.8
28.0
28.3
28.5
28.8
29.0
29.2
29.5
29.7
29.5
27.4
27.6
27.8
28.0
28.1
28.3
28.5
28.8
29.0
29.3
29.5
29.7
30.0
30.2
30
27.9
28.1
28.3
28.5
28.6
28.8
29.0
29.3
29.5
29.8
30.0
30.2
30.5
30.7
30.5
28.3
28.5
28.7
28.9
29.1
29.3
29.5
29.8
30.0
30.3
30.5
30.7
31.0
31.2
31
28.8
29.0
29.2
29.4
29.6
29.8
30.1
30.3
30.5
30.8
31.0
31.2
31.5
31.7
31.5
29.3
29.5
29.7
29.9
30.1
30.2
30.5
30.7
31.0
31.3
31.5
31.7
32.0
32.2
32
29.8
30.0
30.2
30.4
30.6
30.7
31.0
31.2
31.5
31.8
32.0
32.3
32.5
32.3
4.2脂肪的测定
4.2.1试剂：
异戊醇、浓硫酸
4.2.2仪器：
盖勃氏离心机、乳脂计、11ml移液管
4.2.3操作方法：
在乳脂计中加入浓硫酸10ml，沿壁小心加入新鲜牛乳11ml,不要使其混合，然后加入异戊醇1ml，塞上橡胶塞，用力摇动（瓶口向下向外，避免冲出腐蚀衣服和皮肤）使其成为均匀棕色液体，静止数分钟（瓶口向下），置于65-70℃水浴中5min取出，以1200 r/min的转速离心10min，取出后（瓶口仍向下）再置于65-70℃水浴中5min。
应注意水浴中的水面必须高于乳脂计的脂肪层。
最后按照刻度读出脂肪的百分比。
4.3蛋白质的测定（凯氏定氮法）
4.3.1、原理：
4.3.2、仪器：
凯氏定氮仪、移液管、250ml三角烧瓶、电炉、凯氏定氮瓶、100ml容量瓶
4.3.3、试剂：
硫酸铜、硫酸钾、硫酸、过氧化氢溶液、40%氢氧化钠、2%硼酸、0.05N硫酸、蒸馏水、混合指示剂（0.1%的甲基红和0.1%的溴甲酚绿以1:
5的比例混合）
4.3.4、消化：
用移液管吸取10ml液体样品，移入干燥的500ml定氮瓶中，加入3g硫酸钾和0.2g硫酸铜混合催化剂及20ml硫酸使样品全部浸泡在消化液中，防止样品粘附瓶颈上部，摇匀后将瓶以45°角斜支在电炉上，微火加热，小心瓶内泡沫冲出影响结果。
当样品炭化变黑产生泡沫时要减小火力，勿使黑色物质上升到凯氏定氮瓶颈部，当泡沫完全停止、消化液均匀沸腾后，加大火力，直至瓶内容物的颜色逐渐成透明的淡绿色后继续消化0.5-1hr，若凯氏烧瓶壁上粘有炭化粒时应进行摇动，或待瓶内容物冷却数分钟后，用少量、多次过氧化氢溶液冲下，继续消化0.5hr直至完全透明为止，稍冷，沿瓶壁吹入少许水，混合，再沿瓶壁吹入少许水（防止剧烈沸腾，水冲出烧瓶），至烧瓶内溶液体积达到约60ml，将其定量转移入100ml容量瓶中，冷却，定容，混匀备用，同时作空白试验（除不加样品外其余与消化步骤一致）。
4.3.5、蒸馏：
检查定氮装置各连接部分不漏气，在水蒸汽发生瓶内装水约2/3，加数粒玻璃珠以防爆沸，加热煮沸定氮蒸汽发生瓶内的水，接通冷凝水。
吸取20ml消化液于定氮蒸气蒸馏瓶中，用洗瓶冲洗管壁，将塞用水封好，在冷凝器的下端出液管口处放置一个盛有50ml硼酸、2滴混合指示剂的250ml锥形瓶，使冷凝器下端的出液管口正好在液面下，一切准备好后将约20ml40%氢氧化钠慢慢加入蒸馏瓶，一切准备好后，通入蒸气进行蒸馏，蒸馏至锥形瓶内液体变成蓝色，继续蒸馏10min后用蒸馏水冲洗出液管口，将洗液一并收集于锥形瓶内，再蒸馏1min，蒸馏途中不得停火断气，否则发生倒吸（若意外情况发生倒吸时，应及时破除真空）。
4.3.6、滴定：
使用微量滴定管以0.05N的盐酸溶液滴定锥形瓶中的溶液，使之由蓝绿色滴定至紫色为止，同时做空白试验。
4.3.7、计算：
X=[（V-V0）×M×0.014/（m×25/100）]×F×100
X——样品中蛋白质的含量
V——滴定时样品消耗盐酸标准溶液的体积ml
V0——滴定时试剂空白消耗盐酸标准溶液体积ml
M——盐酸标准溶液的当量浓度
F——氮换算为蛋白质的系数 牛乳：
6.38
m——样品体积ml
4.3.8、清洗：
蒸馏前，要将蒸馏装置清洗至少2次，实验完毕后也要清洗2次。
4.4酸度的测定
4.4.1、试剂：
0.1mol/L氢氧化钠标准溶液、0.5%酚酞指示剂
4.4.2、仪器：
100ml三角瓶，10ml吸管，吸耳球，碱式滴定管
4.4.3、方法及步骤
准确吸取10ml鲜乳注入100ml三角瓶中，用20ml中性蒸馏水稀释。
再加入0.5%酚酞指示剂0.5ml。
小心混均后用0.1mol/L氢氧化钠标准溶液滴定，时时摇动，直至微红色在30秒内不消失为止。
4.4.4、计算：
牛乳滴定酸度（°T）＝（V1-V0）×C×10
式中：
V1：
耗用碱的体积，ml
V0：
空白试验耗用碱的体积，ml
C：
碱液的浓度，mol/L
4.5干物质的测定
4.5.1减量法
4.5.1.1仪器和试剂：
带盖玻璃皿：
直径50~70mm；海砂；电热恒温干燥箱；分析天平
4.5.1.2操作方法
4.5.1.3在带盖玻璃皿中加入海砂10~20g，在98~100℃干燥箱中干燥至恒重，称取带盖玻璃皿及海砂的总重量，计作：
m3
4.5.1.4吸取5ml样品于上述恒重的玻璃皿中，称取其总重量，计作：
m1
4.5.1.5先将加有样品的玻璃皿置于水浴上蒸干，擦去皿壁上的水迹，将其及皿盖同时放入98~100℃干燥箱中开盖干燥2h，加盖取出，置于干燥器中，冷却20~30min，将盖盖紧称重记录数值，再将其及皿盖同时放入98~100℃干燥箱中开盖干燥2h，加盖取出，置于干燥器中，冷却20~30min，将盖盖紧称重记录数值，如此反复至前后两次质量差不超过2mg为止。
记录最终结果，计作计作：
m2
4.5.1.6计算
W＝（m2-m3）/（m1-m3）×100％
式中：
w——样品中干物质的质量分数；
m1——含有海砂的玻璃皿及样品的质量,g；
m2——含有海砂的玻璃皿及样品干燥后的质量,g；
m3——含有海砂的皿的质量,g。
4.5.2计算法
4.5.2.1测定该奶样的乳稠读（15℃/15℃），记作L；
4.5.2.2测定该奶样的脂肪的质量分数，记作w
4.5.2.3计算
全脂乳固体质量分数＝0.25L+1.2w+0.14
4.5.2.4注：
如果采用20℃/4℃乳稠计时，应将测得的读数加上2°，然后按照上式计算。
4.6非脂乳固体的测定
可由所测得的总固体质量分数和测得的脂肪质量分数计算得到，
非脂乳固体＝总固体－脂肪
4.7美兰试验
4.7.1、试剂：
亚甲兰溶液：
吸取5ml饱和亚甲兰乙醇溶液，加入195ml水混匀，备用。
4.7.2、仪器：
水浴锅
4.7.3、操作方法：
吸取20ml牛乳，置于试管中。
在水浴锅上加热至38～40℃，加入1ml亚甲兰溶液，混匀后，将试管置于38～40℃恒温水浴锅中，经过20min,2h和5.5h观察退色情况。
级别
乳的质量
退色时间
每ml牛乳相当
于细菌数
1
合格
大于5.5h
小于50万
2
合格
2.5-5.5h
50-400万
3
不好
20min-2h
400-2000万
4
很差
小于20min
大于2000万
4.7.4、根据退色时间将牛乳分为四个等级。
4.8体细胞检测
4.8.1尿素试验法
4.8.1.1试剂：
十二烷基磺酸钠4g、尿素24g用适量水溶解，再定容至100ml，然后用0.05mol/L稀硫酸溶液调节PH至8.0。
4.8.1.2操作方法：
取等量的试剂与奶样混合，摇匀即可观察。
4.8.1.3结果评定：
无混浊 －
混浊 + 50万体细胞/ml
粘稠 ++ 100万体细胞/ml
很粘稠 +++ 150～200万体细胞/ml
4.8.2细胞计数板计数法
5.0特殊奶检验
5.1、乳房炎乳的检查
乳房炎分为慢性（隐形）乳房炎和急性（临床）乳房炎。
传染源：
隐形主要为金黄色葡萄球菌、溶血性链球菌等传染性细菌；临床型主要为大肠杆菌、芽孢杆菌、放线菌等环境性病菌。
传播途径：
隐形为从牛到牛，临床型为从环境到牛。
病菌直接从乳头进入乳房。
乳房炎乳中体细胞数、过氧化氢酶（多由体细胞崩坏而得）、氯化钠、乳清蛋白、PH等均增高，酸度、脂肪、乳糖、非脂乳固体等均减少。
乳房炎乳可能因含有血液及凝固物，外观显粉红色。
因离子浓度平衡打乱，酒精试验呈阳性反应，因含有过多的过氧化氢酶，自身具有很强的还原体系，故对甲烯兰和刃天青试验敏感。
因含有较多的氯离子，氯糖比大于4.0，故对硝酸银试验敏感，呈黄色。
因含有较多的体细胞，故对尿素呈阳性反应，故对下列检测项目的综合考虑可以正确判断：
感官检验｛蛋白不稳定，滋气味差｝、滴定酸度｛降低｝、酒精试验｛阳性｝、尿素试验｛阳性｝、硝酸银试验｛阳性｝、甲烯兰或刃天青试验｛敏感｝
5.1.1、试剂配制：
Na2CO3溶液：
60gNa2CO3.10H2O溶于100ml水中。
CaCL2溶液：
40g无水氯化钙溶于300ml水中。
g
以上两种溶液加温过滤，然后混在一起。
加入等量的15％NaOH溶液，搅均匀后过滤，加入少量溴甲酚紫（有助于观察结果）。
5.1.2、检验方法：
吸取乳样3ml，置于白色平皿中，加入0.5ml上述试剂，混匀，10秒钟后观察结果。
5.1.3结果判断
无沉淀及絮片 （-）阴性；
稍有沉淀发生 （+-）可疑；
肯定有沉淀 （+）阳性；
发生粘稠性团块并继之分为薄片 （++）强阳性；
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