做实验常见错误.docx
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做实验常见错误
化工学院（SCET）
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发信人:
bianxihui（东方慧）,信区:
SCET
标 题:
实验室常见错误学习版
发信站:
天大求实BBS（TueJun1213:
53:
242007）,本站（
实验室常见错误
楼主发言:
在做实验中，我们不可能一直都保证能进行100%的正解操作，因此我们常会犯下这样那样的错误。
小小的错误有时对实验没什么影响，但有的错误却会让人追悔莫及、前功尽弃。
初进实验室的新手往往会丢三拉四、摔瓶破罐;实验老手虽然难得胡涂，但也有一不小心时。
人总是会出错的。
而我们的很多经验也是从错误中学习得来的。
但是一种错误每人都要犯一次才学习得到，这样的代价也许是大了点因此我想。
（老师的嘱咐、师兄师姐的教导毕竟还是有限的）,为了不让自己再犯同样的错误，也不让自己的错误让别人来重复，从别人所犯的错误中来吸取教训。
特此邀请dxy的站友们来谈谈自己在实验中曾犯（耳闻目睹）的错误，总结自己，警示他人。
所谈内容为药学实验，不求大而全，一个错误就可一贴。
表达要明白，最好要有事后分析小结。
以上为我的个人想法，不知战友对此提议有何高见
楼2:
很有意义的一个贴，先说几个：
1 刷瓶子，一定要里外都刷，省得你后来再花时间去找那点脏东西究竟是里面的还是外面的。
2 老教授教育我们在实验室不能穿钉了铁掌的皮鞋，因为会摩擦起电（个人觉得有点夸张）
3 见过一个来我们单位实习的学生，总是左手一个圆底瓶，右手一个，然后不知为何，两个总撞在一起，全碎。
实习三个月，打了三对，老师说他眼睛不聚焦，所以劝刚进实验室的战友，最好是只有一只手拿东西，慢就慢点，别急。
楼3:
洗NMR样品管时，一定不要在水池边摔里边的水；拔下样品管的帽时，要一手拿管，一手拔帽，不要逞英雄一个手拔。
这个教训使我在一天内损失两个样品管，导致一周的饭钱没了。
楼4:
所用样品多或者是有的样品以后还要用的时候，一定要贴上标签，既使你记忆力好得不得了也要帖，否则一旦忘记，后果——
楼4:
回收溶剂时一定要用圆底烧瓶,今天我将柱层析的流分合并后回收，没有用圆底烧瓶，直接用磨口的三角杯，结果由于负压太大，瓶碎了，我的心也跟着碎了。
楼5：
得到了新的试验数据，哪怕再理想也不要立刻开香槟庆祝，趁自己还十分清醒，立刻进行数据处理。
楼6：
对照品母液的保存，有时对照品对我们来说比金子还宝贵，所以对照品母液用完以后一定要用封口膜密封后放进冰箱保存，如果没有密封，呵呵，过些日子溶剂挥发浓度变高，就只有哭的份儿了。
楼7：
PH值的重要性：
师兄在分离纯化一样品时，得到了有两个点的组分。
由于这两个点在TLC上老师拖尾。
摸了很久的条件，发现加入少量醋酸后不拖尾了，上柱后两点也分开了，异常兴奋，指望可以拿这两个东西写篇文章。
可兴奋之余在回收溶剂的时候没有加入碱进行中和，结果组分在酸性条件下分解了，分开的点在TLC变成好几个点。
师兄为此郁郁寡欢好几天。
往层析溶剂里加酸加碱的战友们可要小心啊。
楼8：
在做植化分离时，对流份的合并，特别在薄层板上是一个点时，应从中间流份向两边合并，感觉到足够做谱的量时，就不要再合并其他流份了，如果把薄层板上看似一样的流份全合并后，再发现不纯，后悔晚已；其他未合并进去的流份流份可以单独合并存放，做为样品的母液。
楼9：
看到大家这麽激烈的发言，真是让我感动，这里也有一点小小的实验体会说出来与大家共勉，作实验时特别是分析时一定不要还没出结果就吧样品溶液给倒掉，万一结果不是太理想，可就没的救了，在刷容量瓶时，有好多同志往往只是用洗洁净涮一下，这很难干净，最好在放有洗洁净的超声器中超30分钟，取出洗去洗洁净就非常干净了
楼10：
容量瓶是要用洗液洗的，其他的办法都不是很保险。
楼11：
处理数据，大家一定要学会用excel的公式计算功能，只要建立一次，以后就只要输数据就行了，把计算器丢一边吧。
楼12：
做液相的朋友也要细心，碰到仪器出现了异常情况要冷静分析：
比如柱压高，在排除了预柱和分析柱的污染后，还要怀疑管路的堵塞，我的亲身经历是在做某个药物的血浓测定时，柱压高至27MPa,焦急万分，最后反复检查才发现是混合器的过滤孔被堵塞了，为此浪费了好几天。
楼13：
我想讲一件事：
去年我有个学生做体外血管环试验，开始几天始终不得结果，确实很辛苦。
他跟我谈了可能的原因，但我认为应测一下PSS的PH。
一测试PH很低，他一直在试剂等方面找原因，我又请他的同学按照他的PSS组成重配，结果PH仍旧。
待我检查他的实验纪录时发现，本来只有几十mg的EDTA，结果他却记成几十g了，所以不呈酸性才怪呢！
结论：
实验记录所写的东西粗心不得。
楼14：
我想谈的是要注意即时的数据处理及图像存储。
我虽不是做经典的药学实验，但我是应用影像学方法来观察工具药所引起的血流动力学改变的。
一次做实验，采到了非常漂亮的图像，当时好像是存到了机器的硬盘。
结果，第二天打开机器一看，只有实验序列号，没有图像内容。
惨！
！
！
！
可能是当时人多手杂，没有存盘。
所以，实验环境要安静，要有序进行。
结束实验时要认真检查，确保实验结果正确记录与保存，要自己亲自检查，勿过多依赖他人。
楼15：
一次柱毁人伤的事故：
本来不想说此事（太丢人了），但为了警示大家，也就说了。
本科做毕业论文时跟一个读研究生的师兄做课题，主要是做一种药用植物化学成分的提取分离。
第一次用大孔树脂，师兄亲自操刀，我在旁边看着。
当时也不知为什么，师兄文献没查也没有问用过的同学，直接将大孔树脂装入层析柱，然后向其中加纯水。
约过了十来分钟，就听到嘭的一声，柱子爆了，一块玻片划伤了师兄的大腿（幸好不是其它要害部门），裤子划开了在约3cm的口子，血流了出来。
我和师兄明白过来，他第一句话说：
“他x的，我这三百块的裤子啊。
”伤虽不太，其它人还是将师兄送到医院去了。
（老板一直不知道）大孔树脂吸水膨胀，这种装法当然会爆了，我留下来后收拾残局，满地都是树脂颗料，扫了好久才扫干净啊，这事印象太深了。
我从此明白：
1.做实验时要着工作装，不要穿贵重衣物;2.凡事不要想当然。
师兄就是认为装大孔树脂跟正相柱一样才这样的。
楼16：
千万不要把宜挥发的有机溶剂不密封置于冰箱中!
!
!
记得有人跟我说过一个真实的故事,他们实验室的同事将有机溶剂（好象是乙醚）提取物置于冰箱中过夜,第二天打开冰箱门时发生了爆炸.那还是一个新冰箱呢......乙醚是相当危险的,所以工业上都是尽量避免使用,及其容易发生爆炸
楼17：
做实验时,烧三蒸水,消毒,最好是记一下或者找人提醒一下.我们实验室的几个师兄师姐,好几次都烧干了锅.害的大家没的用.
楼18：
又记.今天要用碳酸钠,好家伙!
!
费了牛劲也没打开!
!
好久不用,因化学反应瓶盖粘到一块去了!
!
忧闷.提醒大家,那些容易与玻璃反映的东东,盖盖子之前,最好是把边缘的残留的打扫干净!
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!
!
!
楼19：
做植化分离时，如果发现效果不理想，不要总是以为自己的操作技术不过关，有时换一批试剂也许就会改变结果了。
我用正丁醇萃取黄芪甲苷发现药材含量总是不合格，最后才发现，原来是试剂不合格。
楼20：
用强酸水解时，如果需要挥发溶剂，记得温度要低一些，免得有效成分被氧化。
楼21：
我也来讲一个吧：
一次，我和搭档做实验，到了处理数据的时候了，我们一起处理，结果是他看了不好删，我看了也不好也删。
两个人到了最后才发现我们的数据没有备份，在一看我们要的重要的东西被我们你一点我一点的删掉了。
把我们都郁闷了好久。
结论：
做了的实验数据一定要有备份的，再者，实验的配合问题也很重要。
楼22：
合成的酰氯化反应：
几个星期前，实验室做无水的酰氯化反应，先用苯将反应瓶中的少量水带走，因投料少，估计用了一瓶苯，想想可能水已经带光了，就将酰氯投下去，开始没什么异常，一开搅拌，马上发烟，接着就冲料了。
嗨，还是因为里面有水。
后来再做这步反应，一定要保证分水器中苯澄清，5分钟内不再有水滴分出，再加酰氯，就没发生类似现象。
做实验要以事实为准，千万不能估计，或凭感觉。
。
。
最基本的一点,就是所有配的试剂,都要写上试剂名称,浓度,配试剂人的名字和日期.因为实验室人多嘛,防止别人拿错自己的东西,也防止自己拿错别人的东西
楼23：
作免疫组化染色时,一定同时要作阴性对照,阳性对照,看似多余,其实这样会少走许多弯路,省的试验阴性以后再三反思,是抗体不好,还是组织中就没有要找的蛋白,最后还要忐忑不安的重作一遍.另外,对于一种新的蛋白,试验前查该蛋白的mapping也很重要的。
楼24：
刚入实验室时，多听，多看，多问，不要想当然抢着干，这样有时很危险的，动手之前最好明白为什么这样做。
楼25：
柱层析上样的惨痛经历：
我们一般都是干法上样，所以样品应该溶在溶剂中，再拌到硅胶里。
但有一次，由于样品比较粘稠，不太好溶，师弟性急，就把粘粘糊糊的样品拌到了硅胶里，溶剂挥发后，一研磨，也看不出与平常有什么不同。
但上样后可就惨了，流速变的slowerandslower，最后不滴了。
到头来只好挖出样品，重新来过，整整花了一天的时间来返工。
经验就是做实验别偷懒，偷一分懒，会有十分的麻烦在等你
楼26：
严重同意，作实验就是要有耐心，不断的尝试不断的忍受失败：
）
1、捉大鼠时一定注意戴厚手套，捏颈项及背部的皮，另一只手操作或与别人协同操作，（偶同学就今天没戴，就被咬了，很郁闷。
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）
2、麻醉时，腹腔注射注意不要太靠上，如打到肝脏；注意计量，偶们常用1%戊巴比妥钠，按体重克算，最好不要超过0.7ml，偶有同学就有把麻的再也醒不来的。
（如果先弄好浓度，打之前称重，多少克就打多少，省心又放心）
3、做手术前，对操作台作必要的处理，最好自己先做好带夹子的橡皮带固定好，这样固定大鼠时就方便多了；另外，牙齿最好也要有钩状物固定钩住，预防在手术中大鼠对刺激反应，如果麻醉不理想的话，会要乱咬的！
！
！
（偶就有这样的血的教训了，不得不去看急诊）
4、手术结束后，清理物品，还要常规给它打抗菌素，预防感染，偶们常用庆大针剂，0.1腹腔注射，连续三天。
（不要怕这样麻烦，还是有好处的，手术伤口愈合和降低死亡率等等。
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）
5、最后，万一被咬了，还是注意一下，偶上次到急诊后，医生给我开了TNT。
但重要还是警惕出血热，打出血热疫苗，但很多地方没有此常备药，实在不行，开点利巴维林，一周。
偶就吃了一礼拜的利巴维林。
以上几点是偶的小小体会，希望能给大家帮助。
楼27：
同病相连啊，每次实验室有眼眶取血之类的活都找我，偶也是咬牙狠心在扎呀，不狠心就没date，没date偶就死定了，每次看大鼠红红的眼睛都很愧疚，唉。
我们手术后是缝皮前，在伤口涂青霉素挺管用的还简单。
大鼠灌胃也是实验的关键，呛了的话轻则剂量不准，重则全军覆没。
一定要抓紧了，头部固定好，没事可用手术失败的大鼠练练，尤其是新手。
实验室的灌胃器是特制的，针头弯曲，还有个小球在一侧，可防止划伤食道。
麻醉药也需常配啊，上次就是用的师姐的，结果给了2ml才倒下，再也没醒，那可是好不容易做的模型，都坚持活了3天了，损失惨重！
楼28：
做电生理试验时候一定要注意仪器的接地，电脑或传感器的静电对生物电,esp脑电影响很大.不要太相信你的三头插座有接地功能.现在偷工减料的实验室装修太多了.他们通常都没有设接地线.可用带液晶显示的电量计（俗称电笔）在电脑后盖的螺丝上测量一下.在确认电源接地不好的情况下，可找一节花线，
一端与计算机背面机壳的螺丝钉相连接，另一端与水管相连接，并在连接处滴加生理盐水另外生物信号的采样设置也是很重要的.下面给出一些常用生物信号的采样参数
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