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若采用5ml以下的血液可直接注入此试管中，轻轻摇晃；

枸橼酸钠法：

先配制2%枸橼酸钠，取0.15-0.2ml加于1ml血液中即可抗凝；

EDTA法（186.1）：

每ml血液中加0.5mmol/LEDTA2l。

6,细胞分离技术-从血液、体液中分离细胞,体液标本采集：

在局部70%酒精消毒灭菌后，用灭菌注射器穿刺入体腔（如胸腔，腹腔，关节腔等）抽取液体样品。

膝关节腔穿刺,胸腔穿刺,7,细胞分离技术-从血液、体液中分离细胞,血样中红细胞和白细胞的分离：

利用细胞的相对密度或大小不同而沉降速度不同的原理，以自然沉降法结合不同速度的离心沉降法将不同的细胞分离。

抗凝血，室温或37下直立静置30-60min，红细胞沉降至下层，中间乳白色薄膜层为白细胞及血小板，上层为淡黄色血浆。

也可将抗凝血与3%明胶（经灭菌消毒）等量或3l量混合于离心管中，直立静置30-60min，红细胞沉于管底，上层乳白色混浊液含白细胞。

8,细胞分离技术-从血液、体液中分离细胞,血中单个核细胞的分离：

单个核细胞包括淋巴细胞和单核细胞，其相对密度在1.050-1.077之间，采用速度沉降法原理使其分离。

淋巴细胞分离液,9,细胞分离技术-从血液、体液中分离细胞,血中单核细胞的分离：

利用细胞在培养过程中贴壁时间的早晚不同进行细胞分离,单个核细胞悬液,多将悬液放入12cm直径的培养皿中，于37培养箱中静置30-60min。

此时单核细胞贴壁，而淋巴细胞尚未贴壁，倾出未贴壁细胞，并用Hanks液轻轻冲洗培养皿以尽量洗下未贴壁细胞（淋巴细胞）。

用Hanks液强力冲洗吹打与震荡，将贴壁的单核细胞冲落或用刮刀轻刮，收集贴壁的单核细胞。

计数后分别制备所需浓度的细胞悬液。

10,细胞分离技术-从血液、体液中分离细胞,黏附法分离血中单核细胞、T，B淋巴细胞,因B淋巴细胞和单核细胞能黏附于尼龙纤维柱上（聚酰胺纤维柱），所以可将其与T淋巴细胞分离。

11,具体步骤：

单个核细胞用含20%小牛血清RPMI-1640制成（2.5-3）107/ml的细胞悬液。

先用Hanks液，再用含20%小牛血清的RPMI-1640液冲洗平衡尼龙纤维柱，冲洗液尽量流净。

将尼龙柱预温37，再用配制的单个核细胞悬液2ml装入尼龙纤维柱，不使流出，37温箱内静置l小时。

取下注射针头，用预温37含20%小牛血清的RPMI-1640培养液冲洗尼龙纤维柱，洗出者即为未黏附的T淋巴细胞。

从注射器内取出尼龙纤维，在4的RPMI-1640液内漂洗，并轻轻挤压，将黏附的B细胞洗脱收集（B淋巴细胞中混有的单核细胞可用贴壁法将其分离）。

收集的T、B淋巴细胞可分别用Hanks液悬浮，洗涤，离心（250g，7min），并重复洗涤3次。

计算活细胞，计数悬液中的细胞数后制备所需浓度的T和B淋巴细胞悬液。

12,细胞分离技术-从血液、体液中分离细胞,免疫磁珠法（MACS）分离T、B淋巴细胞：

磁性微珠是20世纪80年代初以高分子材料和金属离子（如Fe3O4）为原料聚合而成的一种以金属离子为核心、外层均匀地包裹高分子聚合体的固相微粒，即磁性微珠。

在液相中，受外加磁场的吸引作用，磁性微珠可快速沉降。

以磁性微珠为载体，包被上针对某种细胞表面抗原的特异性抗体即可制成免疫磁性微珠。

13,细胞分离技术-从血液、体液中分离细胞,免疫磁性微珠用于细胞的分离和纯化的基本原理及步骤是：

首先将抗特异细胞表面抗原的抗体致敏到磁珠上，待它与混合体系中的细胞反应后，利用磁力的作用，使与致敏结合的细胞与其它物质分离，达到纯化、分离的目的。

通常有二种分离方式：

阳性分离和阴性分离。

阳性分离是直接从细胞混合液中分离出靶细胞，阴性分离是利用磁珠去除无关细胞，使靶细胞得以分离。

14,细胞分离技术-从血液、体液中分离细胞,免疫磁珠分离细胞已被广泛应用于人类各种细胞的分离，如T（CD3）、B（CD19）淋巴细胞、内皮细胞（CD34）、造血祖细胞（CD34）、单核/巨噬细胞（CD14）、胰岛细胞（胰岛GK和GLUT2（葡萄糖转运子））、多种肿瘤细胞等。

15,细胞分离技术-从血液、体液中分离细胞,16,细胞分离技术-从血液、体液中分离细胞,17,细胞分离技术-从血液、体液中分离细胞,18,细胞分离技术-从血液、体液中分离细胞,MACS技术优点：

稳定、高质量的分选：

纯度（90-99%）对细胞无损伤操作简便、快速：

消毒方便，手动分选30分钟内完成，autoMACS分选2.5-10分钟之内完成。

从实验室到临床：

MACS技术可以实现105-1011个细胞分选。

有autoMACS和CliniMACS。

分选后细胞适用于后续实验：

分选后适用于细胞培养和体内实验，分选得到的标记和未标记细胞组分均可回收利用。

从细胞到分子分选：

不仅可以分选各种细胞，还可以分选转染细胞、亚细胞物质、蛋白质、DNA、RNA及mRNA。

MACS技术缺点：

分离效率较流式细胞仪分选略低且耗材相对较贵，适合无大型流式细胞仪设备且对分选细胞纯度要求不高的分选。

只适用于简单标记的细胞分离,19,细胞分离技术-从血液、体液中分离细胞,流式细胞术分离法分离T、B淋巴细胞：

密度梯度离心法分离单个核细胞，用RPMI-1640培养基配成1107/ml；

加适量FITC-抗CD3或FITC-抗CD19，4孵育30min,用RPMI-1640培养基洗2次；

用流式细胞仪进行分析。

在散射光参数图上选取淋巴细胞群，在荧光参数图上选取绿色荧光阳性的细胞进行分选。

20,细胞分离技术-从血液、体液中分离细胞,注意事项：

分选细胞常用于细胞亚群进一步的功能研究，因此，整个过程均需要严格无菌操作，流式细胞仪进行无菌冲洗。

此法分离得到的T细胞纯度可达到99%,收获率可达到90%。

由于喷嘴孔很小（约70100m），分选前用3040m孔径的滤网过滤细胞悬液，以免堵塞喷嘴。

21,细胞分离技术-从血液、体液中分离细胞,优缺点：

流式细胞仪分选纯度较高、回收率高，分选一些具有比较复杂细胞标记的细胞时相当有用的，例如要分选出白血病人骨髓中某些CD34+CD13-CD45dim的幼稚细胞，只需要在流式上简单地逻辑设门就可以了，而且流式可以双通道分选，也就是同一时间分选出两种细胞，流式分选成本比磁珠低。

流式分选最致命的缺点就是污染，且设备昂贵，技术复杂，需专业技术人员操作，操作费时，适合对细胞纯度和回收率要求较高的分选。

22,细胞分离技术,二、从原代组织中分离细胞组织和器官采集：

人标本：

可采取无菌手术法切取少量所需的组织或器官（活检和手术）。

大量的动物组织：

先麻醉或处死，浸入70%酒精中，使毛皮全部浸湿，从腹中线剪开皮肤，注意不要剪开胸腔或腹腔。

将皮肤向上、下撕开分离并向上、下翻开，暴露胸腹部的筋膜，用生理盐水洗净黏于筋膜上的断毛，以碘酒和70%酒精消毒后，更换一套消毒灭菌的器械，剪开胸腔或腹腔，无菌采取所需器官。

动物的骨髓：

可以无菌手术采取一段股骨，用灭菌注射器，将小牛血清或培养液从断端一端加压注射以从另一断端出骨髓。

23,细胞分离技术-从原代组织中分离细胞,制备细胞悬液方法：

将组织块分离（散）成细胞悬液的方法有多种，最常用的是机械解离细胞法、酶学解离细胞法以及螯合剂解离细胞法。

从原代组织中获得单细胞悬液的一般方法是酶解聚。

细胞暴露在酶中的时间要尽可能的短，以保持最大的活性。

包括胰蛋白酶、胶原酶和中性蛋白酶等。

24,细胞分离技术-从原代组织中分离细胞,1.胰蛋白酶（Trypsin）,在去除不需要的组织后，使用无钙镁的平衡盐溶液清洗组织块，重复清洗2到3次。

用无菌的解剖刀和剪子把组织切成1-2mm3小块。

将盛有组织碎片的容器置于冰上。

加入0.25溶解在无钙镁的平衡盐溶液中的胰蛋白酶（100mg组织加入1ml胰蛋白酶）。

25,细胞分离技术-从原代组织中分离细胞,在4孵育6到18小时，使胰蛋白酶尽可能渗透进去,移弃组织碎片中的胰蛋白酶，在37孵育包含残留胰蛋白酶的组织碎片20到30分钟,在组织碎片加入热的完全培养基，用移液管轻轻地分散组织。

如果使用无血清培养基，要加入大豆胰蛋白酶抑制剂,通过无菌不锈钢丝网（100-200目）过滤，计数和接种细胞，进行培养,26,细胞分离技术-从原代组织中分离细胞,2.胶原酶（Collagenase）,用无菌解剖刀和剪子把剩余组织切成1-2mm3小块，用Hanks平衡液（HBSS）清洗组织碎片几次,加入胶原酶（50200单位/ml，溶解在HBSS中）,在37孵育4到18小时。

加入3mMCaCl2增加解离效率,27,细胞分离技术-从原代组织中分离细胞,通过离心在HBSS中清洗悬液几次,再一次在培养基中悬浮细胞，计数和接种细胞，进行培养,通过无菌不锈钢丝网或尼龙网过滤细胞悬液，分离分散细胞、组织碎片和较大的碎片。

如需进一步的解聚，在碎片中加入新鲜的胶原酶,28,细胞分离技术-从原代组织中分离细胞,3.中性蛋白酶（Dispase）,用无菌解剖刀和剪子把剩余组织切成1-2mm3小块，用不含钙镁的平衡盐溶液清洗组织碎片几次,加入Dispase（0.62.4单位/ml溶解在无钙镁的平衡盐溶液）,在37孵育20分钟到几个小时。

29,细胞分离技术,通过无菌不锈钢丝网或尼龙网过滤细胞悬液，分离分散细胞、组织碎片和较大的碎片。

如需进一步的解聚，在碎片中加入新鲜的Dispase,通过离心在平衡盐溶液中清洗悬液几次,再一次在培养基中悬浮细胞，计数和接种细胞，进行培养,30,细胞分离技术-从原代组织中分离细胞,举例（滑膜细胞的胶原酶胰蛋白酶消化分离法）:

无菌取滑膜组织，去除脂肪、纤维等,用D-Hanks液（无Ca2+、Mg2+，含青霉素200kUL-1、链霉素200mgL-1）反复冲洗后剪成12mm3小块，离心洗涤2次,置于加入2ml含10%胎牛血清、0.4%型胶原酶的DMEM培养液的培养瓶中，在37、5%CO2培养箱中消化2h，每隔10min吹打1次。

31,细胞分离技术-从原代组织中分离细胞,再加入含0.25%胰蛋白酶的D-Hanks液4ml，培养消化30min,将培养液移至离心管中，1200rpm离心10min，弃上清,200目尼龙网纱过滤，1200rpm离心10min，弃上清,将获得的细胞在37、5%CO2培养箱中培养24h，弃去未黏附细胞（如淋巴细胞，红细胞），此时的贴壁细胞即为原代滑膜细胞,32,细胞分离技术-从原代组织中分离细胞,4.组织块培养法举例（成纤维样滑膜细胞组织块培养法）：

无菌取滑膜组织，去除脂肪、纤维等，用不含钙镁的D-Hanks液（含青霉素200kUL-1、链霉素200mgL-1）反复冲洗后剪成12mm3小块,用吸管吸取均匀排列于培养瓶（预先用含20胎牛血清DMEM培养液湿润）的底壁，瓶底朝上，37、5%CO2培养箱中培养3h，使其贴壁,33,细胞分离技术-从原代组织中分离细胞,待细胞快长满时用0.25%胰蛋白酶消化细胞并传代培养，取第35代细胞用于实验,观察到有大量成纤维细胞长出后轻轻去除组织块，继续培养,轻轻翻转培养瓶，使培养液刚刚覆盖组织块，每隔23天换一次培养液,34,成纤维样滑膜细胞组织块培养法,培养24h,培养96h,培养120h,35,细胞分离技术-从原代组织中分离细胞,举例（初步淋巴细胞分离法）：

放血处死动物，无菌取胸腺和脾组织，去除脂肪和结缔组织，放入盛