植物生理学试验.docx

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植物生理学试验

实验1植物组织渗透势的测定（质壁分离法）

原理

当植物组织细胞内的汁液与其周围的某种溶液处于渗透平衡状态，植物细胞内的压力势为零时，细胞汁液的渗透势就等于该溶液的渗透势。

该溶液的浓度称为等渗浓度。

当用一系列梯度浓度溶液观察细胞质壁分离现象时，细胞的等渗浓度将介于刚刚引起初始质壁分离的浓度和尚不能引起质壁分离的浓度之间的深液浓度。

代入公式即可计算出春渗透势。

仪器药品

显微镜载玻片及盖玻片

镊子刀片

配成0.5—0.1mol/L梯度浓度的蔗糖溶液各50ml。

称34.23g蔗糖用蒸馏水配成100ml，其浓度为1m0le/L（母液）。

再配制成下列各种浓度：

0.50mol/L：

吸母液25ml+水25ml

0.45mol/L：

吸母液22.5ml+水27.5ml

0.40mol/L：

吸母液20.0ml+水30.0ml

0.35mol/L：

吸母液17.5ml+水32.5ml

0.30mol/L：

吸母液15.0ml+水35.0ml

0.25mol/L：

吸母液12.5ml+水37.5ml

0.20mol/L：

吸母液10.0ml+水40.0ml

0.15mol/L：

吸母液7.5ml+水42.5ml

0.10mol/L：

吸母液5.0ml+水45.0ml

操作步骤

将带有色素的植物组织（叶片），一般选用有色素的洋葱鳞片的外表皮、紫鸭跖草、苔藓、红甘蓝或黑藻、丝状藻等水生植物，也可用蚕豆、玉米、小麦等作物叶的表皮。

撕取下表皮，迅速分别投入各种浓度的蔗糖溶液中，使其完全浸入，5—10分钟后，从0.5mol/L开始依次取出表皮薄片放在滴有同样溶液的载玻片上，盖上盖玻片，于低倍显微镜下观察，如果所有细胞都产生质壁分离的现象，则取低浓度溶液中的制片作同样观察，并记录质壁分离的相对程度。

实验中必须确定一个引起半数以上细胞原生质刚刚从细胞壁的角隅上分离的浓度，和不引起质壁分离的最高浓度。

在找到上述浓度极限时，用新的溶液和新鲜的叶片重复进行几次，直至有把握确定为止。

在此条件下，细胞的渗透势与两个极限溶液浓度之平均值的渗透势相等。

将结果记录下表中。

测出引起质壁分离刚开始的蔗糖溶液最低浓度和不能引起质壁分离的最高浓度平均值之后，可按下列公式计算在常压下该组织细胞质液的渗透势。

为细胞渗透势。

R为气体常数=0.083×105/L·Pа/mol·K。

T为绝对温度，单位K，即273℃+t，t为实验湿度。

I为解离系数，蔗糖为1。

C为等渗溶液的浓度，单位为mol/L。

则：

=0.083×105×（273℃+t）×1×C

实验人时期材料名称实验时室温℃

蔗糖摩尔浓度（mol/L）

渗透势（Pа）

质壁分离的相对程度（作图表示）

0.50

0.45

0.40

0.35

0.30

0.25

0.20

0.15

0.10

实验2植物组织水势的测定（小液流法）

原理

水势表示水分的化学势，象电流之由高电位处流向低电位处一样，水从水势高处流向低处。

植物体细胞之间，组织之间以及植物体和环境间的水分移动方向都由水势差决定。

当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势（溶质势），则组织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡，所以外部溶液浓度不变，而溶液的渗透势即等于所测植物的水势。

可以利用溶液的浓度不同其比重也不同的原理来测定试验前后溶液的浓度的变化，然后根据公式计算渗透势。

仪器药品

试管毛细滴管

移液管剪刀

镊子甲烯蓝

操作步骤

首先配制一系列不同浓度的蔗糖溶液（0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8mol/L）各10ml注入8支试管中，各管都加上塞子，并编号。

按编号顺序在试管架上排成一列，作为对照组。

另取8支试管，编好号，按顺序放在试管架上，作为试验组。

然后由对照组的各试管中分别取溶液4ml移入相同编号的试验组试管中，再将各试管都加上塞子。

用剪刀将菠菜叶剪成约0.5cm2大小相等的小块60—80片。

向试验组的每一试管中各加相等数目（约10片）的叶片小块，塞好塞子，放置30分钟，在这段时间内摇动数次，到时间后，向每一试管中各加甲烯蓝粉末少许，并振荡，此时溶液变成蓝色。

用毛细滴管从试验组的各试管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入对照组的相同编号试管的液体的中部，缓慢从毛细滴管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液，并观察小液滴移动的方向。

如果有色液滴向上移动，说明溶液从细胞液中吸出水分而被冲淡，比重比原来小了；如果有色液向下移动，则说明细胞从溶液中吸了水，溶液变浓，比重变大；如果液滴不动，则说明试验溶液的密度等于对照溶液，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。

记录液滴不动的试管中蔗糖溶液的浓度。

重复测定一次。

按

计算水势。

式中

为细胞水势，其余符号同实验4。

注意：

毛细滴管要各个浓度专用。

实验3蒸腾强度的测定（钴纸法）

原理

本实验方法系根据氯化钴纸在干燥时为蓝色，当吸收水分后，变为粉红色，根据变色所需时间的长短，然后按钴纸标准吸水量计算出作物蒸腾强度。

仪器药品

扭力天平烘箱

干燥器瓷盘

镊子剪刀

玻璃板载玻片

薄橡皮有塞指管

滤纸弹簧纸夹

5%氯化钴溶液（9.2gCoCl1·6H2O用蒸馏水配成100ml）滴几滴盐酸调成弱酸性。

操作步骤

1．氯化钻纸的制备

选取优质滤纸，剪成0.8cm宽，20cm长的滤纸条，浸入5%氯化钴溶液中，待浸透后取出，用吸水纸吸去多余的溶液，将其平铺在干洁的玻璃板上，然后置于60—80℃烘箱中烘干，选取颜色均一的钴纸条，小心而精确地切成0.8cm的小方块，再行烘干，取出贮于有塞指管中，再放入氯化钙干燥器中备用。

2．钴纸标准化

使用前，先将钻纸标准化。

测出每一钴纸小方块由蓝色转变成粉红色需吸收多少水量。

取1—2钴纸小方块，置于扭力天平上称重，并记下开始称重的时间，及每隔一分钟记一次重量，当钻纸蓝色全部变为粉红色时，要立即准确地记下重量和时间，如此重复数次，计算出钻纸小方块由蓝色变为粉红色时平均吸收多少水分，以mg表示，作为钴纸吸水量。

3．测定

取二片玻片，薄橡皮一小块，在其中央开1cm2的小孔，用胶水将它固定在玻片当中，另准备一只弹簧夹。

用镊子从干燥器（管）中取出钻纸小块，放在玻片上的橡皮小孔中，立即置于待测作物叶子的背面（或正面），将另一玻片在叶子的正面（或背面）的相应位置上，用夹子夹紧，同时记下时间，注意观察钻纸的颜色变化，待钻纸全部变为粉红色时，记下时间。

以时间的长短作相对比较，可用钻纸小方块的标准吸水量成小纸块由蓝色变为粉红色所需的时间来计算术为该叶片表面蒸腾的强度，用mg/cm2·min表示之。

本实验可选择不同作物的功能叶片，或同一作物的不同部位的叶片测其蒸腾强度，或者可测定作物在不同环境条件下的蒸腾强度。

例如光和暗对植物蒸腾作用的影响，事先把一组盆栽的蚕豆、小麦或其他植物放在黑暗中过夜或几个小时，另一组放在光下，二者都要适当灌水，分别测其蒸腾强度（注：

黑暗中的植物在测定时可移到实验室柔和的光线下进行）。

每一处理最少要测10次左右，然后求其平均值。

实验4小孔的扩散（示范）

原理

气孔蒸腾是植物散失水分的主要途径，气孔口很小，其总面积一般不超过叶面积的1%，可是叶子通过气孔蒸腾所损失的水分却达到与叶面积相等的自由表面的50—80%，如此惊人的蒸腾量，可以用小孔扩散原理加以说明。

水分通过小孔扩散的量和小孔的周缘长度成正比，而和小孔面积不成比例。

通过此试验所产生的现象，可以证明小孔边缘效应的存在。

仪器获品

小烧杯台天平

培养皿刀片

尺及解剖针卡片纸

1%琼脂石蜡

红墨水或蓝墨水酒糟或丙酮

操作步骤

1．物质通过小孔扩散的途径

预备聚乙烯塑料薄膜（可用食品袋）一张，大小约5×5cm，取解剖针于煤气灯上加热，在薄膜中央穿刺一小孔。

配制1%琼脂，倒在一小烧坏中，如用10ml小烧杯，则更易于观察。

待琼脂还未完全凝固时，将薄膜小心地贴在琼脂的表面，使小孔位于烧杯的中央。

等琼脂凝固后，在薄膜上面倒上有色溶液少许。

4—5小时后，即可看到有色溶液通过小孔向琼脂凝胶中扩散，形成一个有色的半球形，它显示染料通过小孔扩散的途径。

2．将卡片纸剪成与培养皿大小一致的圆片，然后在一张卡片纸的中部剪成一正方形大孔，每边长3cm，则面积为9cm2。

在另一卡片纸上剪成数个小孔，其总面积与大孔完全相等。

为此，将其剪成9个每边长1cm的正方形小孔，并使其均匀地分布在圆形卡片纸上。

再将此卡片纸浸于熔化的石蜡中，取出盖于培养皿上，并用石蜡将边缘封严。

于两皿中各加入等量的酒精（或丙酮），将此皿分别置于台天平两边用酒精调节使之平衡。

隔15—30分钟后，由于小孔具有较高的边缘效应，酒精蒸发较快，因此台天平指针倾向大孔一边，由此可看出孔的总面积虽相等，但酒精通过小孔的散失比大孔要快得多。

证明小孔的边缘效应要大，因其周缘长度比大孔大。

实验5单盐毒害及离了间拮抗现象

原理

离子间的拮抗现象的本质是复杂的，它可能反映不同离子对原生质亲水胶粒的稳定度、原生质膜的透性，以及对各类酶活性调节等方面的相互制约作用，从而维持机体的正常生理状态。

仪器药品

烧杯纱布

石蜡0.12mol/LKCl

0.06mol/LCaCl20.12mol/LNaCl

（所用药品均需用AR）

操作步骤

实验前3—4天选择饱满的小麦种子100粒浸种，在室温下萌发，待根长1cm时即可用作材料。

取4个小烧杯，依次分别倒人不列盐溶液：

（1）0.12mol／LKCI

（2）0.06mol／LCaCl2

（3）0.12mol／LNaCI

（4）0.12mol／LNaCl100ml＋0.06mol／LCaCl21ml十0.12mol／LKCl2.2ml小烧杯用涂石蜡的纱布盖上。

挑选大小相等及根系发育一致的小麦幼苗10株或20株，小心种植在纱布盖的孔眼里，使根系接触到溶液，在室温下培育2—3星期后，即可看出在单盐溶液中，小麦幼苗生长，特别是它们的根部出现畸形。

实验6植物根系对离子的选择吸收

原理

植物根系对不同离子吸收量是不同的，即使是同一种盐类，对阳离子与阴离子的吸收量也不相同。

本实验是利用植物对不同盐类的阴、阳离子吸收量不同，使溶液的pH发生改变以说明这一吸收特性。

此实验也使我们了解什么是生理酸性盐与生理碱性盐。

仪器药品

pH计精密pH试纸

移液管100ml三角烧瓶

0.5mg/ml（NH4）2SO40.5mg/mlNaNO3

操作步骤

1．在实验前约2—3周按实验19方法培养根系完好的小麦（或其他植物）植株。

2．实验开始时吸取0.5mg/ml浓度的（NH4）2SO4和NaNO3各100ml分别置于两个100ml三角烧瓶中，另一三角烧瓶中放蒸馏水100ml。

用pH计或精密pH试纸测定以上各溶液和蒸馏水的原始pH值。

3．取根系发育完善的、大小相似的小麦3份，每份数株，但数目相等，分别放于上述3个三角烧瓶中，在室温下经2一3小时后*取出植株，并测定溶液的pH值。

实验结果按下表记录。

植物从盐溶液中吸收离子后溶液pH值的变化

处理

pH值

放植株前放植株后

0.5mg/ml（NH4）2SO4

0.5MG/MLNaNO3

蒸馏水

注：

为了避免根系的分泌作用影响实验结果，故用蒸馏水作对照，将上述pH值变化进行修正，即得真实的pH变化。

实验7钾离子对气孔开度的影响

原理

保卫细胞的渗透系统歌可由钾离子所调节，无论是环式或非环式光合磷酸化，都可形成ATP。

ATP不断供给保卫细胞原生质膜上的钾－氯离子交换泵作功，支持保卫细胞逆着离子浓度差而从周围表皮细胞吸收钾离子，降低保卫细胞的渗透势，从而使气孔张开。

仪器药品

显微镜

镊子温箱

载玻片、盖玻片培养皿

0.5%硝酸钾0.5%硝酸钠

操作步骤

1．配0.5%KNO3及0.5%NaNO3溶液。

2．在3个培养皿中分别放0.5%KNO3、0.5%NaNO3及蒸馏水各15ml。

3．撕蚕豆叶表皮若干放入上述3个培养皿中。

4．培养皿放入25℃温箱中，使溶液温度达到25℃。

5．将培养皿置于人工光照条件下照光半小时。

6．分别在显微镜下观察气孔的开度。

实验8植物的元素缺乏症（溶液培养）

原理

植物的生长发育，除需要充足的阳光和水分外，还需要矿质元素，否则植物就不能很好地生长发育甚至死亡。

应用溶液培养技术，可以观察矿质元素对植物生活的必需性；用溶液培养做植物的营养试验，可以避免土壤里的各种复杂因素。

近年来也已应用溶液培养进行无污染蔬菜的栽培生产。

仪器药品

分析天平培养缸（瓷质或塑料）

鱼缸打气泵量筒

烧杯移液管

按下表分别配制贮备液，所用药品均需为分析纯：

药品名称

用量（g/L）

Ca（NO3）2

82.07

KNO3

50.56

MgSO4·7H2O

61.62

KH2PO4

27.22

NaNO3

42.45

MgCl2

23.81

Na2SO4

35.51

CaCl2

55.50

KCl

37.28

Fe-EDTA

Na2-EDTA7.45g,FeSO4·7H2O5.57g

微量元素

H3BO32.860g,MnSO41.015g,

CuSO4·5H2O0.079g,ZnSO4.7H2O

0.220G,H2MOO40.090g

操作步骤

1．材料准备

番茄、蓖麻、小麦、玉米等都作为材料。

粒小的种子，从种了带来的营养元素少，缺乏症容易出现，粒大的种子可以在幼苗未做缺元素培养之前，先将胚乳（或子叶）除去，这样也可以加速缺乏症的出现。

种子用漂白粉溶液灭菌30分钟，用无菌水冲洗数次，然后放在洗净的石英砂中发芽，加蒸馏水，等幼苗长出第一真叶时待用。

2．配制缺元素培养液

按下表用量配制缺元素培养液：

贮备液

贮备液（ml）

完全

-N

-P

-K

-Ca

-Mg

-S

-Fe

缺微量元素

Ca（NO3）2

KNO3

MgSO4

KH2PO4

Fe-EDTA

微量元素

NaNO3

MgCl2

Na2SO3

CaCl2

KCl

10

—

10

10

—

10

10

10

10

10

—

10

—

10

10

10

10

10

10

10

10

10

10

—

—

10

10

10

10

—

—

10

10

10

10

10

1

1

1

1

1

1

1

—

1

—

1

1

1

1

1

1

1

—

—

—

10

10

—

—

—

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—

—

—

—

10

—

—

—

—

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—

—

10

—

—

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10

—

—

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—

—

—

10

2.5

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—

—

—

—

—

配制时先取蒸馏水900ml，然后加入贮备液，最后配成1000ml，以避免产生沉淀。

培养液配好后，用稀酸、碱调节至pH5—6

3．培养观察

先取大小一致的植株，用泡沫塑料包裹茎部，插入培养缸盖的孔中，每孔一株。

将培养缸移到温室中，经常注意管理并观察，用蒸馏水补充缸中失去的水分。

每隔一定时间（一周左右，随植株大小而定）更换培养溶液，并测定换出溶液的pH。

植株长大后要通气，通气可用鱼缸打气泵。

注意记录植株的生长情况，各种元素缺乏症的症状及出现的部位。

4．元素缺乏症检索

1．老叶受影响。

（1）影响遍及全株，下部叶子干枯并死亡。

a.植株淡绿色，下部叶子发黄，叶柄短而纤弱……缺N

b.植株深绿色，并出现红或紫色，下部叶子发黄，叶柄短而纤弱……………………缺P

（2）影响限于局部，有缺绿斑，下部叶子不干枯，叶子边缘卷曲呈凹凸不下。

a.叶子缺绿斑有时变红，有坏死斑，叶柄纤弱………………缺Mg

b.叶子缺绿斑，在叶边缘和近叶消耗或叶脉间出现小坏死斑，叶柄纤弱…………缺K

c．叶子缺绿斑，叶子包括叶脉产生大的坏死斑，叶子变厚，叶柄变短…………缺Zn

2．幼叶幼叶受影响。

（1）顶芽死亡，叶子变形和坏死。

a.幼叶变钩状，从叶尖和边缘开始死亡………………………………………………缺Ca

b.叶基部淡绿，从基部开始死亡，叶子扭曲…………………………………………缺B

（2）顶芽仍活着，缺绿或萎蔫而无坏死斑。

a.幼叶萎焉，不缺绿，茎尖弱……………………………………………………缺Cu

b.幼叶不发生萎蔫，缺绿。

（a）有小坏死斑，叶脉仍绿色…………………………………………………………缺Mn

（b）无坏死斑，叶脉仍绿色…………………………………………………………缺Fe

（c）无坏死斑，叶脉坏死………………………………………………………………缺S

5．待植株症状表现明显后，将缺元素培养液换成完全培养液，留下一株继续培养，观

察植株症状是否减轻以至消失。

其余植株测量根、茎的长度，重量，叶子数目、大小和重量，节数和节间长度，然后在烘箱中烘干，作为实验15、16、17、18的材料，测定植株中的氮，磷，铁，铜的含量。

实验9硝酸还原酶活性的测定

原理

硝酸还原酸是植物氮素代谢作用中关键性酶，与作物吸收各利用氮肥有关。

它作用于NO-3使还原为NO-3；

NO-3+NADH+H+→NO-2+NAD++H2O

产生的NO-2可以从级织内渗透到外界溶液中，并积累在溶液中，测定反应溶液中NO-2含量的增加，即表现该酶活性的大小。

这种方法简单易行，在一般条件下都能做到。

NO-2含量的测定用磺胺[对氨基苯磺酸胺（sulfanil-amide）]比色法。

在酸性溶液中磺胺与NO-2形成重氮盐，再与α-萘胺偶联形成紫红色的偶氮染料。

反应液的酸度大则增加重氮化作用的速度，但降低偶联作用的速度，颜色比较稳定。

增加温度可以增加反应速度，但降低重氮盐的稳定度，所以反应需要在相同条件下进行。

这种方法非常灵敏，能测定每ml含0.5μg的NaNO2。

仪器药品

721型分光光度计真空泵（或注射器）

保温箱天平

真空干燥器钻孔器

三角烧瓶移液管

烧杯

0.1mol/L磷酸缓冲液，pH7.5（见附表2）。

0.2mol/LKNO3：

溶解20.22gKNO3于1000ml蒸馏水中。

磺胺试剂：

1g磺胺加25ml浓盐酸，用蒸馏水稀释至100ml。

α-萘胺试剂：

0.2gα-萘胺溶于含1ml浓盐酸的蒸馏水中，稀释至100ml。

NaNO2标准溶液：

1gNaNO2用蒸馏水溶角成1000ml。

然后吸取5ml，再加蒸馏水稀释成1000ml，此溶液每ml含有NaNO210μg，用时稀释之。

操作步骤

1．将新鲜取回的叶片（蓖麻、烟草、向日葵、油菜、小麦、棉花等均可）水先，用吸水纸吸干，然后用钻孔器钻成直径约1cm的圆片，用蒸馏水洗涤2—3次，吸干水分，然后于台天平上称取等重的叶子圆片两份，每份约0.3—0.4g（或每份取50个圆片），分别置于含有下列溶液的50ml三角烧瓶中：

（1）0.1mol/L磷酸缓冲溶液（pH7.5）5ml+蒸馏水5ml；

（2）0.1mol/L磷酸缓冲溶液（pH7.5）5ml+0.2mol/LKNO35ml。

然后将三角烧瓶置于真空干燥器中，接上真空泵抽气，放气后，圆片即沉于溶液中（如果没有真空泵，也可以用20ml注射器代替，将反应液及叶子圆片一起倒入注射器中，用手指堵住注射器出口小孔，然后用力拉注射器使真空，如此抽气放气反复进行多次，即可使圆片中的空气抽去而沉于溶液中）。

将三角烧瓶置于30℃温箱中，使不见光，保温作用30分钟，然后分别吸取反应溶液1ml，以测定NO-2含量。

注意取样前叶子要进行一段时间的光合作用，以积累碳水化合物，如果组织中的碳水化合物含量低，会使得酶的活性降低，此时则可于反应溶液中加入30μg3-磷酸甘油醛或1，6-二磷酸果糖，能显著增加NO-2的产生。

2．NO-2含量的测定

保温30分钟的结束时，吸取反应溶液1ml于一试管中，加入磺胺试剂2ml及α-萘胺试剂2ml，混合摇匀，静置30分钟，用比色计进行比色测定，比色波长为520nm，记下吸光度或透光率，从标准曲线上查得NO-2含量，然后计算酶活性，以每小时每克鲜重产生的NO-2μg或μmol表示之。

3．绘制标准曲线

测定NO-2的磺胺比色法很灵敏，可以检出低于1μg/ml的NaNO2含量，可于0—5μg/ml浓度范围内绘制标准曲线。

由于显色反应的速度与重氮化作用及偶联作用的速度有关，温度、酸浓度等都影响显色速度，同时也影响灵敏度，但如果标准与样品的测定都在相同条件下进行，则显色速度相同，彼此可以比较。

吸取不同浓度的NaNO2溶液（例如5、4、3、2、1、0.5μg/ml）1ml于试管中，加入磺胺试剂2ml及α-萘胺试剂2ml，混合摇匀，静置303分钟（或于一定温度的水浴中保温30分钟），立即于分光光度计中进行测定，测定时的波长为520nm，比色，读取吸光度或透光率。

然后，以吸光度为纵坐标，NaNO2浓度为横坐标。

于毫米方格纸上绘制吸光度-浓度曲线。

实验10叶绿体色素的提取和分离（纸层析法）

原理

叶绿体色素是植物吸收太阳光能进行光合作用的重要物质，主要由叶绿素a、叶绿素b、胡萝卜素和叶黄素组成。

从植物叶片中提取和分离色素是对其认识和了解的前提。

利用叶绿体色素能溶于有机溶剂的特性，可用丙酮提取。

分离色素的方法有多种，纸层析是其中最简便的一种。

当溶剂不断地从层析滤纸上流过时，由于混合物中各成分在两相（即流动相和固定相）间具有不同的分配系数，它们的移动速度不同，使样品中的混合物得到分离。

仪器药品

大试管台天平

研钵量筒

烧怀漏斗

软木层新华滤纸

丙酮四氯化碳

无水硫酸钠碳酸钙

石英砂

操作步骤

1．称取新鲜叶子2g，放入研钵中加丙酮5ml，少许碳酸钙和石英砂，研磨成匀浆，再加丙酮5ml，然后以漏斗过滤之，即为色素提取液。

2．取准备好的滤纸条（2×2cm），将其一端剪去两侧，中间留一长约1.5cm，宽约0.5cm的窄条，如图7。

3．用毛细管取叶绿素溶液点于窄条的上方，注意一次所点溶液不可过多。

如色素过淡，用电吹风吹干后再点1一2次。

4．在大试管中加入四氯化碳3—5ml及少许无水硫酸钠。

然后将滤纸条固定于软木塞上，插入试管内，使窄端浸入溶剂中（色素点要略高于液面，滤纸条边缘不可碰图到试管壁），盖紧软木塞，直立于阴暗处进行层析。

5．经过0.5一1小时后，观察分离后色素带的分布。

最上端橙黄色为胡萝卜素，其次黄色为叶黄素，再下面蓝绿色为叶绿素a，最后的黄绿色为叶绿素b。

实验11植物体色素及其性质

原理

植物色素包括脂溶性的叶绿体色素和水溶性的细胞波色素，前者存在于叶绿体，与光合作用有关，如叶绿素；后者存在于液泡中，特别与花朵的颜色有关，如花青素属黄酮类物质。

了解它们的性质有助于对其生理功能的理解。

仪器药品

分光计天平

研钵分液漏斗

移液管量筒

吸球试管

碳酸钙氢氧化钾

丙酮乙醚

甲酸盐酸

醋酸铜

操作步骤

1．叶绿体色素的提取

取菠菜（或其他植