病原菌的分离培养和纯化.docx

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病原菌的分离培养和纯化

病原菌的分离培养和纯化

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（9）大豆细菌性斑点病叶（pseudomonassyringaepv．glycinea）。

（10）白菜软腐病叶（erudniacarotovorasubsp．carotovora）。

2．培养基pda培养基；肉膏蛋白胨培养基；加寄主组织煎汁的培养基等。

3．仪器与用品超镜工作台、培养箱、培养皿、吸管、吸水纸、三角玻璃棒、剪刀、解剖刀、镊子、接种铲（针）、接种环（铒）、70％酒精、0．1％升汞、酒精灯、火柴、记号笔、橡皮筋套、可调式电炉、铝锅等。

0．1％升汞溶液配制：

升汞1e浓盐酸2．5ml蒸馏水1000ml。

先将升汞溶于盐酸中，待充分溶解后，再加水稀释。

升汞是剧毒药物，在操作时应特别小心。

四、实验操作

（一）病原真菌的分离

1．组织分离法按照以下步骤进行：

（1）取灭菌培养皿一个，置于湿纱布上，在皿盖上用玻璃铅笔注明分离日期、材料和分离人的姓名。

提示：

为了保证无菌操作，应注意下面几点：

工作前最好将所需的物品都放在超净工作台内，工作中临时去取容易带来杂菌；保证工作人员自身的洁净，工作前用肥皂洗手；无菌操作前还要用70％酒精擦拭双手；工作中，特别在使用无菌操作间时，呼吸要轻，不要说话。

（2）用无菌操作法向培养皿中加入25％乳酸1--2滴（可减少细菌污染），然后将融化而冷至60c左右的pda培养基倒人培养皿中，每皿倒10--15ml，轻轻摇动使之成平面。

凝固后即成平板培养基。

提示：

加入25％乳酸1～2滴，可基本保证平板上不出现污染细菌苗落。

除乳酸外，在培养基中加入适当的抗菌素抑制细菌的生长，也是常用的方法。

加青霉素（20μg／ml）可以抑制g+细菌生长；加多黏霉素b（5．0μg／ml）可以抑制g—细菌生长；加链霉素（40μg／ml）或氯霉素（50μg／ml）可以抑制大部分细菌的生长。

除了氯霉素可在灭菌前加入外，其他抗菌素都应在灭菌后并冷却到45c左右（以手背触三角瓶感到烫，但尚可以忍耐为宜）’时加入。

倒平板过程中只要遵循“稳、轻、快”要领，不必在火焰上方，一般很少污染。

（3）取真菌叶斑病的新鲜病叶（或其他分离材料），选择典型的单个病斑，用剪刀或解剖刀从病斑边缘（病健交界处）切取小块（海边长3--4mm）病组织数块。

提示：

选择新患病的组织作为分离的材料，可以减少腐生菌混入的机会。

腐生菌一般在发病很久而已经枯死或腐败的部分滋生，因此，一般斑点病害应在临近健全组织的部分分离。

（4）将病组织放人70％酒精中浸3—5s后，按无菌操作法将病组织移人0．1％升汞液中分别表面消毒0．5、1、2、3、5rain（也可使用其他表面消毒剂），如植物组织柔嫩，则表面消毒时间宜短；反之则可长些。

然后放入灭菌水中连续漂洗三次，除去残留的消毒剂。

提示：

先用70％的酒精浸2、3s是为了消除寄主表面的气泡，减少表面张力，70％的酒精亦用于表面消毒，处理的时间较短（一般数秒至lmin）。

升汞溶液消毒的时间因材料而异，可自30s至30min不等，一般情况下，需时间3，5min。

（5）用无菌操作法将病组织移至平板培养基上，每皿内放4--6块。

提示：

在将病组织小块移放到平板表面之前，应将其在无菌吸水纸上吸去多余的水，以大大减少病组织附近出现细菌污染。

（6）将培养皿倒置放人2512左右恒温箱内培养。

一般3—4d后观察待分离菌生长结果。

（7）若病组织小块上均长出较为一致的菌落，则多半为要分离的病原菌。

在无菌条件下，用接种针（铲）自菌落边缘挑取小块移入斜面培养基上，在25℃左右恒温箱内培养，数日后，观察菌落生长情况，如无杂菌生长，即得该分离病菌纯菌种，便可置于冰箱中保存。

提示：

除根据菌落的一致性初步确定长出的菌落是否目标菌外，还要在显微镜下检查，进一步确定。

如果是对未知病原菌的组织分离，则要将长出的蕾落分别转出，通过进一步的接种实验明确哪一种为其病原菌。

在组织分离工作中，如果植物材料体积较大且较软（如患灰霉病的番茄果实），在分离过程中可直接挖取内部患病组织移人平板培养基上，完成分离工作。

2．稀释分离法

（1）取灭菌培养皿三个，平放在湿纱布上，编号，并注明日期、分离材料及分离人姓名。

（2）用灭菌吸管吸取灭菌水，在每一皿中分别注入0．5～1．0ml。

（3）用移植环蘸一滴孢子悬浮液，与第一个培养皿中的灭菌水混合，再从第一个培养皿移三环到第二个培养皿中，混合后再移三环到第三个培养皿中。

（4）将熔化开冷却到45～50c的培养基，分别倒在三个培养皿中（为防止细菌污染，也可以向每个培养皿中事先加入1-2滴25％乳酸），摇匀，凝固，要使培养基与稀释的菌液充分混匀。

提示：

倒平板时的培养基温度一定要掌握好，过热易将病原菌烫死而使分离失败，过冷则倒入培养皿中后难以形成平板，而成为起伏不平的表面，不利于分离。

为大体估计培养基温度，可将盛培养基的器皿靠在人手背上，如果手背感到烫但尚可以忍耐，则大体为45~50c。

（5）将培养皿翻转后置恒温箱（2513）中培养，数日后观察菌落生长情况。

（6）挑菌。

将培养后长出较为整齐一致的单个菌落分别挑取，接种到斜面培养基上，置25℃左右培养。

待菌长出后，检查菌是否单纯，若有其他菌混杂，就要再一次进行分离纯化，直到获得纯株培养。

（二）病原细菌的分离病原细菌的分离方法以稀释分离法和划线分离法为最常用。

在进行分离之前，首先应对病组织材料进行细菌学初步诊断，即经过镜检确认有喷菌现象以后，才对该病组织作分离工作。

稀释分离法是最经典的标准分离法，方法同上述真菌分离。

除去上述稀释分离法以外，较为方便的是划线分离法：

（1）预先把熔化好的肉膏蛋白胨培养基倒在培养皿中，凝成平板后，翻转放在30c恒温箱中2—4h，使表面无水滴凝结。

也可凝成平板后直接使用。

（2）将病组织先用0．1％升汞表面消毒0．5--2min，再用无菌水换洗3次后，放在灭菌培养皿中的灭菌水中，用灭菌玻棒研碎，并让组织碎块在水中浸泡20—60min，让细菌释放到灭菌水中。

（3）用灭菌的接种铒（接种环）蘸取浸泡液在干燥的培养基平板表面划线，尽量不要把平板表面划破。

划过第一批线后的接种环应放在火焰上烧灼．冷却后直接在第一批划线的末端向另一方向划线。

灭菌后再划第三次线。

提示：

划过第一批线后接种铒放在火焰上烧过这一步骤非常重要，这样做可以使第一批线和第二批线上的细菌数量相差很大。

（4）用玻璃铅笔在培养皿上写上分离材料、日期和分离者姓名后，翻转培养皿，放在26～28c恒温箱中培养。

1—3d后观察有无细菌生长，在哪些地方有单菌落生长出来?

其中的优势单菌落应为待分离菌形成的。

（5）仔细挑取病原菌的单菌落，并移植到斜面培养基上。

同时，再把单菌落用灭菌水稀释成悬浮液作第二次划线分离，经培养后出现的菌落在形态特征都趋于一致，并与典型描述的特征相一致时，即表明已获得纯培养。

最好要经过连续三次单菌落的分离，才能确保纯化。

（三）真菌、细菌培养性状观察

1．真菌培养性状观察取已分离、纯化的某种真菌菌种，按前述稀释分离法中

（1）--（5）步骤进行，待某培养皿中形成单个菌落后观察。

记载以下内容：

菌落颜色、菌丛密集及繁茂程度、是否有色素分泌出来而渗透到培养基中、菌落生长速度快慢等。

同时要记载培养基种类（成分及ph）和培养温度、光照条件。

2．细菌培养性状观察

（1）仿照上述真菌菌落形成步骤，观察记载以下内容：

菌落颜色、菌落边缘形状、菌落表面是光亮还是粗糙或有皱折、菌落隆起情况、是否有色素分泌到培养基中，菌落生长速度快慢，是否有特殊气味形成等。

同时要记载培养基种类（成分及ph）和培养温度、光照条件。

（2）用接种铒（环）蘸细菌菌种后，通过无菌操作在肉膏蛋白胨等斜面培养基表面从下向上划一直线，过2～3d后长出的细菌群体称为菌苔，可仿照观察记载细菌菌落的记载内容，记载菌苔颜色、边缘形状、表面是光亮还是粗糙有皱折、隆起情况、是否有色素分泌到培养基中，是否有特殊气味生成，生长速度快慢等。

也要记载培养基种类（成分及ph）和培养温度、光照条件。

（3）用接种铒（环）蘸取细菌菌种后，通过无菌操作，将其接种在某种液体培养基中，数日后观察记载培养基中是否变混浊、是否有色素、气体、沉淀生成，培养液表面是否可生成菌膜等。

也要记载培养基种类（成分及ph）和培养温度、光照条件。

五、所需时间流程

1．病原真菌分离组织分离：

切取病组织，表面消毒，无菌水洗移人平板：

1h。

稀释分离：

配孢子悬液，倒平板il培养7--10d分离菌移人斜面30min培养7--10d检查斜面上分离菌产孢30min保存菌种

2．病原细菌分离划线分离：

倒平板沾菌悬液划线，1h。

稀释分离

3．病原真菌、细菌菌落培养性状观察平板上形成单菌落1--3d观察迦些写报告

4．病原细菌菌苔培养性状观察斜面上形成菌苔i-3d观察30min写报告

5．病原细菌液体培养性状观察接菌于液体培养基30min培养2--3d观察30min写报告

六、实验作业

l.上交分离的病原真菌、细菌菌种。

2．写出病原真菌、细菌培养性状观察的实验报告。

七、思考题

1．如果要分离的病原真菌是鞭毛菌中的腐霉菌、疫霉菌等应当如何进行才会获得更好的效果?

2．在分离病原真菌时，向平板培养基中加人乳酸为什么会大大减少细菌的污染?

3．如果要从土壤中分离某种病原菌，应当采取什么样的分离方法会更有效?

4．观察记载真菌及细菌的培养性状有何意义?

5．怎样才能知道你获得的病原真菌、细菌的菌种是否是纯培养?

附1常用的几种典型的病原菌分离方法　　

1．斑点病原菌的分离。

从病斑部分切取每边3—5mm的小块组织，在70％酒精中浸数秒钟后，移人0．1％的升汞水溶液中处理3—5rain，以灭菌水冲洗3次，移置培养皿的培养基中，然后培养。

2．维管束组织内病原菌的分离。

从根茎维管束组织分离病菌，可先将寄主病部表面用70％酒精擦拭消毒，将表皮组织用灭菌的解剖刀削去，然后切取其中小块变色的维管束组织，用升汞或漂白粉液消毒后，用灭菌水冲洗几次，移置培养基面上。

3．根腐病病原菌的分离。

根腐或基腐病的分离，由材料的大小决定。

材料小的可仿照斑点病的分离法，材料大的则可以用维管束组织内病原的分离法。

4．肉质组织中病原菌的分离。

多肉的根、茎及果实等，可以采用维管束组织内病菌分离法除去表面组织，切取小块病组织分离。

如有杂菌感染可采用“直接接种”法，待出现症状后，用此法再行分离。

5．种子内病原菌分离。

将整个种子或者种子的一部分进行表面消毒（升汞或漂白粉），用灭菌水洗涤后，移置培养基上。

6．孢子分离法。

能产生大量孢子的病菌如青霉素、链格孢等，则可配制成孢子悬浮液以稀释法或划线法分离之。

7．土壤带菌分离法。

为了研究一些真菌在土壤中存活和分布的情形，从有病的土壤中分离它们是必要的。

分离方法是将土壤取出少许，配制成悬浮液，然后用稀释法或划线法分离。