western blot免疫印迹handbook.docx
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westernblot免疫印迹handbook
WesternBlottingWorkflow（免疫印迹解决手册）
——给您提供便利、快捷、全面的解决方略
目录
1WesternBlot简介1
1.1WesternBlot原理1
1.2WesternBlot优点1
1.3WesternBlot应用1
1.4WesternBlot成功要素1
2WesternBlot基本流程2
2.1蛋白样品的提取2
2.1.1通过有机溶剂或水溶法制备总蛋白2
2.1.2通过层析或电洗脱法制备目的蛋白2
2.1.3裂解液的选择2
2.2蛋白样品的定量2
2.3蛋白样品的变性3
2.4SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）4
2.4.1SDS-PAGE基本原理4
2.4.2PAGE：
聚丙烯酰胺凝胶4
2.4.3聚丙烯酰胺凝胶分类5
2.5转膜（Trarsmembran）6
2.5.1转膜的定义6
2.5.2转移膜的选择6
2.5.3转膜步骤（以槽式湿转为例）7
2.5.4转膜注意事项7
2.5.5转膜后检测（此步可以省略）8
2.6封闭（Blocking）8
2.7一抗、二抗孵育（Antibodyincubation）8
2.7.1一抗孵育（Primaryantibodyincubation）8
2.7.2二抗孵育（Secondaryantibodyinucubation）9
2.7.3注意事项9
2.8蛋白检测（Detectionofproteins）——显影9
2.9结果分析（ResultAnalysis）11
2.9.1对照设计11
2.9.2内参11
2.10膜的重复利用（Membranerecovery）11
2.10.1膜解吸的方法11
2.10.2方法步骤12
3WesternBlot常见问题分析12
3.1封闭液的选择12
3.2一抗的选择13
3.3优化抗原和抗体浓度的斑点杂交方法13
3.4电泳中的问题14
3.5Westernblot结果中背景高且不均匀14
3.6Westernblot结果中信号弱或无信号15
3.7Westernblot结果中背景较高15
3.8Westernblot结果中杂带较多16
3.9WesternBlot结果中无信号或显示信号弱16
3.10其它现象16
3.11安全问题16
4生兴生物WesternBlot产品汇总17
4.1蛋白抽提17
4.2蛋白定量18
4.3蛋白上样、电泳和染色18
4.4转膜及封闭21
4.5一抗、二抗孵育21
4.6显色23
1WesternBlot简介
1.1WesternBlot原理
与Southern或Northern杂交方法类似，但WesternBlot采用的是聚丙烯酰胺凝胶电泳，被检测物是蛋白质，“探针”是抗体，“显色”用标记的二抗。
经过PAGE分离的蛋白质样品，转移到固相载体（例如硝酸纤维素薄膜）上，固相载体以非共价键形式吸附蛋白质，且能保持电泳分离的多肽类型及其生物学活性不变。
以固相载体上的蛋白质或多肽作为抗原，与对应的抗体起免疫反应，再与酶或同位素标记的第二抗体起反应，经过底物显色或放射自显影以检测电泳分离的特异性目的基因表达的蛋白成分。
该技术也广泛应用于检测蛋白水平的表达。
1.2WesternBlot优点
☐高分辨率的电泳技术
☐特异敏感的抗原-抗体反应
☐1-5ng中等大小的靶蛋白
☐WesternBlot结合了凝胶电泳的高分辨率和固相免疫测定的特异敏感等多种优点，可检测到低至1～5ng（最低可到10～100pg）中等大小的靶蛋白。
1.3WesternBlot应用
☐目的蛋白的表达特性分析
☐目的蛋白与其它蛋白的互作
☐目的蛋白的组织定位
☐目的蛋白的表达量分析
1.4WesternBlot成功要素
实验步骤
影响WesternBlot成功的要素
电泳分离蛋白
蛋白抽提，蛋白定量，样品制备，电泳
转膜
膜的选择，膜的确认，特殊处理
封闭
封闭液的选择，封闭条件优化
漂洗
漂洗液的配制与选择
抗体孵育
抗体选择，抗体稀释倍数优化
底物孵育
恰当的发光或显色底物
曝光
曝光时间掌控，X-光片，显影定影试剂
后WesternBlot选择
抗体剥离缓冲液（蛋白印迹膜再生液），底片背景去除剂
2WesternBlot基本流程
2.1蛋白样品的提取
2.1.1通过有机溶剂或水溶法制备总蛋白
水溶液提取法：
针对水、稀盐、稀酸或碱溶液中的蛋白质。
稀盐和缓冲系统的水溶液对蛋白质稳定性好、溶解度大、是提取蛋白质最常用的溶剂。
有机溶剂提取法：
对于分子中非极性侧链较多的蛋白质可用有机溶剂提取，包括乙醇、丙酮和丁醇等。
2.1.2通过层析或电洗脱法制备目的蛋白
2.1.3裂解液的选择
根据检测蛋白位置选择合适的裂解液
蛋白位置
推荐裂解液
全细胞
NP-40或RIPA
胞浆（可溶性蛋白）
Tris-HCl
胞浆（骨架结合蛋白）
Tris-Triton
膜蛋白
NP-40orRIPA
核蛋白
RIPAor核蛋白提取试剂盒
线粒体蛋白
RIPAor线粒体分离试剂盒
2.2蛋白样品的定量
目前常用比色法测定样品蛋白的含量：
Bradford法（考马斯亮蓝法）、Lowry法（Folin-酚试剂法）、BCA法等。
但各有优缺点，大家可以根据具体情况选取。
按相应蛋白质定量试剂盒操作说明操作，测定样品浓度。
收集完蛋白样品后，为确保每个蛋白样品的上样量一致，需要测定每个蛋白样品的蛋白浓度。
根据所使用的裂解液的不同，需要采用适当的蛋白浓度测定方法。
因为不同的蛋白浓度测定方法对于一些去垢剂和还原剂等的兼容性差别很大，大家可以根据具体情况选取。
Bradford法（考马斯亮蓝法）:
考马斯亮蓝G-250有红、蓝两种不同颜色的形式，在一定浓度的乙醇和酸性条件下，可配成淡红色的溶液，与蛋白结合后形成蓝色化合物，该化合物在595nm处有最大吸收值，化合物颜色深浅与蛋白的浓度高低成正比。
该法操作简便迅速，消耗样品量少，但不同蛋白质之间差异大，且标准曲线线性差。
高浓度的Tris、EDTA、尿素、甘油、蔗糖、丙酮、硫酸铵和去污剂对测定有干扰。
缓冲液浓度过高时，改变测定液pH值会影响显色。
Lowry法（Folin-酚试剂法）:
福林-酚试剂（Folin-phenolreagent）的显色原理是：
首先在碱性条件下蛋白质与铜作用生成蛋白质-铜复合物，该复合物随之将磷钼酸-磷钨酸还原成蓝色复合物。
在一定条件下，蓝色强度与蛋白质量成正比，蛋白质浓度范围约在25～250μg/mL。
虽然该法是测定蛋白质浓度应用最广泛的方法之一，但其缺点也很明显，专一性较差，干扰物质多（如Tris缓冲剂、蔗糖、硫酸铵、巯基化物、酚类、柠檬酸等），标准曲线的直线关系不特别严格。
因此在其应用过程中有很多新的修正。
BCA法（二喹啉甲酸法）:
二喹啉甲酸（Bicinchoninicacid，BCA）法是Lowry测定法的一种改进方法，是近来广为应用的蛋白定量方法。
其原理与Lowery法蛋白定量相似，即在碱性条件下蛋白质分子中的肽键能与Cu2+络合生成络合物，同时将Cu2+还原成Cu+。
二喹啉甲酸及其钠盐是一种溶于水的化合物，在碱性条件下，可以和Cu+结合形成稳定的紫蓝色复合物，在562nm处有高的光吸收值，并且化合物颜色的深浅与蛋白质浓度成正比，据此可测定蛋白质浓度。
与Lowery法相比，BCA蛋白测定方法操作更简单，试剂及其形成的颜色复合物稳定性更好，几乎没有干扰物质的影响，灵敏度高（微量检测可达到0.5μg/ml），应用更加灵活。
与Bradford法相比，BCA法的显著优点是不受去垢剂的影响。
BCA法与Lowry法都容易受到蛋白质之间以及去污剂的干扰。
Bradford法敏感度最高，且与一系列干扰Lowry，BCA反应的还原剂（如DTT，巯基乙醇）相容。
但是对于去污剂依然是敏感的，其最主要的缺点是不同的标准品会导致同一样品的结果差异较大，无可比性。
2.3蛋白样品的变性
SDS：
☐阴离子去污剂、变性剂；
☐氨基酸侧链与SDS充分结合形成带负电荷的蛋白质-SDS胶束；
☐蛋白质-SDS胶束所带的负电荷大大超过了蛋白质分子原有的电荷量，消除了不同分子之间原有的电荷差异；
☐与强还原剂一起使蛋白分子氢键、疏水键打开，使蛋白质分子线性化。
蛋白质-SDS胶束的特点：
☐具有相同的形状，形状像一个长椭圆棒；
☐平均1g蛋白质结合1.4gSDS；
☐短轴对不同的蛋白质亚基-SDS胶束基本上是相同的；
☐长轴的长度则与亚基分子量的大小成正比。
2.4SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）
2.4.1SDS-PAGE基本原理
1.SDS-PAGE是在蛋白质样品中加入SDS和含有巯基乙醇的样品处理液，SDS是一种很强的阴离子表面活性剂，它可以断开分子内和分子间的氢键，破坏蛋白质分子的二级和三级结构。
2.强还原剂巯基乙醇（或二硫苏糖醇，DTT）可以断开二硫键破坏蛋白质的四级结构。
使蛋白质分子被解聚成肽链形成单链分子。
解聚后的侧链与SDS充分结合形成带负电荷的蛋白质-SDS复合物。
3.蛋白质分子结合SDS阴离子后，所带负电荷的量远远超过了它原有的净电荷，从而消除了不同种蛋白质之间所带净电荷的差异。
蛋白质的电泳迁移率主要决定于亚基的相对分子质量，而与其所带电荷的性质无关。
2.4.2PAGE：
聚丙烯酰胺凝胶
聚丙烯酰胺凝胶（polyacrylamidegel）是由单体丙烯酰胺（acrylamide，简称Acr）和交联剂（crosslinker）N,N’-亚甲基双丙烯酰胺（N,N’-methylenebisacylamide，简称Bis）在催化剂（过硫酸胺或核黄素AP）和加速剂（四甲基乙二胺TEMED）作用下聚合交联而成的三维网状结构的凝胶。
化学惰性强，具有一定的机械强度和透明度。
是良好的电泳介质。
聚丙烯酰胺凝胶聚合机理是通过提供氧游离基（freeradicals）的催化，使体系发生氧化还原作用（catalyst-redoxsystems）来完成的。
催化体系主要有化学催化（AP-TEMED）和光化学催化（核黄素-TMTED）体系。
凝胶浓度与蛋白分离范围
凝胶浓度（％）
线性分离范围（kDa）
15
10-43
12
12-60
10
20-80
8.0
36-94
6.0
57-212
SDS-PAGE浓缩胶（5%Acrylamide）及分离胶配方表
2.4.3聚丙烯酰胺凝胶分类
PAGE分为连续系统和不连续系统两大类。
连续系统电泳体系中缓冲液pH值与凝胶中的相同。
带电颗粒在电场作用下，主要靠电荷和分子筛效应。
不连续系统中带电颗粒在电场中泳动不仅有电荷效应、分子筛效应，还具有浓缩效应，因而其分离条带清晰度及分辨率均较前者佳。
不连续电泳
作用
缓冲液PH
凝胶浓度
浓缩胶
使蛋白样品浓缩
pH6.8Tris-HCl
低，2-5%
分离胶
使蛋白样品分离
pH8.8Tris-HCl
高，根据蛋白大小
不连续系统的浓缩效应：
☐凝胶层的不连续性：
浓缩胶的孔径大，分离胶的孔径小。
在电场的作用下，蛋白质颗粒在大孔胶中遇到的阻力小，移动快。
而在小孔胶中遇到的阻力大，移动慢。
因此，在两层凝胶的交界处，由于凝胶孔径的不连续性使样品迁移受阻而压缩成很窄的区带。
☐缓冲液离子成分和pH的不连续性：
HCl易解离出Cl-，它在电场中迁移率大，走在最前面，故称为快离子或前导离子。
电极缓冲液中的甘氨酸在pH6.8的缓冲液中解离度很小，仅为0.1-1%，因而在电场中迁移率很小，称为慢离子或尾随离子。
蛋白质均带负电荷，在电场中均移向正极，其有效迁移率介于快慢离子之间，于是蛋白质就在快慢离子间形成的界面处，被浓缩成极窄的区带。
当进入pH8.8的分离胶时，甘氨酸解离度增加，其有效迁移率超过蛋白质，因此氯离子和甘氨酸离子沿着离子界面继续前进。
蛋白质分子由于分子量大，被留在后面，然后分离成多个区带。
2.5转膜（Trarsmembran）
2.5.1转膜的定义
将电泳后分离的蛋白质从凝胶中转移到固相载体（例如NC膜）上，通常有两种方法：
毛细管印迹法和电泳印迹法。
常用的电泳转移方法有湿转和半干转。
两者的原理完全相同，只是用于固定胶/膜叠层和施加电场的机械装置不同。
前者操作容易，转移效率高；而后者适用于大胶的蛋白转移，所用缓冲液少。
2.5.2转移膜的选择
杂交膜的选择是决定Westernblot成败的重要环节。
应根据杂交方案、被转移蛋白的特性以及分子大小等因素，选择合适材质、孔径和规格的杂交膜。
用于Westernblot的膜主要有两种：
硝酸纤维素膜（NC）和PVDF膜。
NC膜是蛋白印迹实验的标准固相支持物，在低离子转移缓冲液的环境下，大多数带负电荷的蛋白质会与膜发生疏水作用而高亲和力的结合在一起，但在非离子型的去污剂作用下，结合的蛋白还可以被洗脱下来。
根据被转移的蛋白分子量大小，选择不同孔径的NC膜。
因为随着膜孔径的不断减小，膜对低分子量蛋白的结合就越牢固。
通常用0.45μm和0.2μm两种规格的NC膜。
大于20kD的蛋白可用0.45μm的膜，小于20kD的蛋白就要用0.2μm的膜了，如用0.45μm的膜就会发生“Blowthrough”的现象。
PVDF膜灵敏度、分辨率和蛋白亲和力比常规的膜要高，非常适合于低分子量蛋白的检测。
但PVDF膜在使用之前必需用纯甲醇浸泡饱和1-5秒钟。
最常用于WesternBlot的转移膜主要是硝酸纤维素（Nitrocellulose,NC）膜和聚偏二氟乙烯（PolyvinylideneFluoride,PVDF）膜，此外也有用尼龙膜、DEAE纤维素膜做蛋白印迹。
尼龙膜和NC膜的特点相似,主要用于核酸杂交。
硝酸纤维素（nitrocellulose,NC）膜：
NC与蛋白质靠疏水作用结合，无需预先活化，对蛋白质的活性影响小；非特异性本底显色浅；价格低廉，使用方便。
但结合在NC上的小分子蛋白质在洗涤时易丢失；NC韧性较差，易损坏。
聚偏二氟乙烯（Polyvinylidenefluoride,PVDF）膜：
与蛋白质亲和力高，用前需在甲醇中浸泡，以活化膜上的正电基团，使其更容易与带负电荷蛋白结合。
膜的选择主要根据：
☐膜与目的蛋白分子的结合能力（也就是单位面积的膜能结合蛋白的载量），以及膜的孔径（也就是拦截蛋白的大小）；
☐不影响后续的显色检测（也就是适和用于所选的显色方法，信噪比好）；
☐如果后继实验有其他要求，比如要做蛋白测序或者质谱分析，还要根据不同目的来挑选不同的转移膜。
几种膜的性质对比
PVDF膜
NC膜
尼龙膜
背景
低
低
较高
蛋白结合能力
100-200μg/cm2
80-100μg/cm2
>400ug/cm2
机械强度
强
干的膜很脆
软而结实
溶剂抗性
强
差
差
使用前处理
甲醛润湿
缓冲液润湿
缓冲液润湿
价格
高
较低
低
2.5.3转膜步骤（以槽式湿转为例）
1.将胶浸于转移缓冲液中平衡10min。
注意：
如检测小分子蛋白，可省略此步，因小分子蛋白容易扩散出胶。
2.依据胶的大小剪取膜和滤纸6片，放入转移缓冲液中平衡10min。
如用PVDF膜需用纯甲醇浸泡饱和3-5秒钟。
3.装配转移三明治：
海绵/3层滤纸/胶/膜/3层滤纸/海绵，每层放好后，用试管赶去气泡。
切记：
胶放于负极面（黑色面）。
4.将转移槽置于冰浴中，放入三明治（黑色面对黑色面），加转移缓冲液，插上电极，100V，1h（电流约为0.3A）。
注意：
应再次检查三明治和电极是否装配正确，电源是否接通。
5.转膜结束后，切断电源，取出杂交膜。
2.5.4转膜注意事项
1.泡膜：
转膜之前将海绵、胶、膜都用预冷的转移buffer浸泡20min；
a.凝胶若是没在预冷的转膜buffer中浸泡，就会在转膜过程中出现凝胶皱缩，导致出现转移条带变形。
b.PVDF膜具有疏水性，需用甲醇浸泡。
2.转膜顺序：
阴极碳板+海绵+三滤+胶+膜+三滤+海绵+阳极碳板；
3.转膜条件：
0.35A/250V/1h/40min/冰浴中进行转膜（转膜过程产生大量的热，注意冷却）；
（具体转膜时间要根据目的蛋白的大小而定；目的蛋白的分子量越大，需要的转膜时间越长，反之则短。
）
4.其它注意事项：
a.避免直接用手碰杂交膜，使用镊子。
因为手上的蛋白和油脂会影响转膜效率并会使膜脏掉。
b.夹好膜和凝胶后，确定在凝胶/膜和滤纸之间没有气泡存在，否则会导致转膜不完全。
c.保证膜和滤纸的大小和凝胶完全一样，过大和过小都会影响转膜效率。
d.鸡来源的抗体与PVDF和尼龙膜有较强的结合能力，从而产生较高的背景，故如果选择鸡来源的抗体最好使用硝酸纤维素膜（NC膜）。
2.5.5转膜后检测（此步可以省略）
转膜完毕后，立即把蛋白膜放置到预先准备好的TBST（或PBST）中漂洗1-2分钟，以洗去膜上的转膜液。
转膜的效果可以观察所使用的预染蛋白质分子量标准，通常分子量最大的1-2条带较难全部转到膜上。
转膜的效果也可以用丽春红染色液或硬度墨汁染色液对膜进行染色，以观察实际的转膜效果。
也可以用考马斯亮蓝快速染色液对完成转膜的SDS-PAGE胶进行染色，以观察蛋白的残留情况。
a.丽春红染色：
蛋白带出现后，于室温用去离子水漂洗硝酸纤维素滤膜，换水几次。
b.印度墨汁染色：
只用于放射性标记抗体或放射性标记A蛋白探针的Western印迹过程。
印度墨汁不能和化学发光物合用，若是使用呈色反应的酶检测法时，印度墨汁的黑色会使凝胶难于拍照。
这时，可改用其他检测方法或换用丽春红S。
注意：
从转膜完毕后所有的步骤，一定要注意膜的保湿，避免膜的干燥，否则极易产生较高的背景。
2.6封闭（Blocking）
杂交膜上有很多非特异性的蛋白质结合位点，为防止这些位点与抗体结合引起非特异的染色和背景，一般用惰性蛋白质或非离子去污剂封闭膜上的未结合位点来降低抗体的非特异性结合。
封闭剂应该封闭所有未结合位点而不替换膜上的靶蛋白、不结合靶蛋白的表位，也不与抗体或检测试剂有交叉反应。
最常见的封闭剂是BSA、脱脂奶粉、酪蛋白、明胶和Tween-20（0.05-0.1%）稀溶液PBST或者TBST。
☐5%脱脂奶粉或BSA（室温孵育1h）
☐WesternBlot膜封闭液（生物试剂公司）
☐Tween-20的作用：
Tween-20是一种非离子型去污剂，有复性抗原的作用，可提高特异性的识别能力。
在做westenblot时，用惰性蛋白质或非离子去污剂封闭膜上的未结合位点可以降低抗体的非特异性结合。
Tween这种非离子型去污剂在乳化蛋白时，不破坏蛋白的结构，可减少对蛋白质之间原有的相互作用的破坏。
离子型去污剂如SDS则破坏蛋白的结构。
封闭剂选择的特殊情况：
☐脱脂奶粉不能与生物素化或伴刀豆蛋白标记的抗体一起使用，因为脱脂奶粉含有糖蛋白和生物素。
☐如果封闭剂中含磷酸酶，用磷酸化特异性抗体分析磷酸化蛋白受到影响，因为磷酸酶与印记膜上的磷酸化蛋白接触可使之去磷酸化。
☐检测磷酸化抗体时，不能使用酪蛋白/脱脂奶粉作为封闭剂。
一般封闭条件为：
室温或者37℃缓慢摇荡1～2h，特殊情况也可4℃过夜。
根据结果情况调整封闭试剂的浓度和类型。
比如有时BSA比脱脂奶粉更有利于降低非特异性背景，而有些抗体则在脱脂奶粉封闭的情况下才能得到清晰的背景。
2.7一抗、二抗孵育（Antibodyincubation）
2.7.1一抗孵育（Primaryantibodyincubation）
参考一抗的说明书，按照适当比例用封闭液稀释一抗。
吸尽封闭液后，立即加入稀释好的一抗，室温或4℃在摇床上缓慢摇动孵育1～2小时。
如果一抗孵育一小时效果不佳，可以在4℃缓慢摇动孵育过夜。
（注意：
抗体浓度过高会导致背景较深，过低会导致和抗原结合不充分，出现假阴性）。
回收一抗。
然后加入Western洗涤液，在摇床上缓慢摇动洗涤5-10分钟。
吸尽洗涤液后，再加入洗涤液，洗涤5-10分钟。
共洗涤3次。
如果结果背景较高可以适当延长洗涤时间并增加洗涤次数。
2.7.2二抗孵育（Secondaryantibodyinucubation）
参考二抗的说明书，按照适当比例用封闭液稀释辣根过氧化物酶（HRP）标记的二抗。
吸尽洗涤液后，立即加入稀释好的二抗，室温或4℃在摇床上缓慢摇动孵育1～2小时。
回收二抗。
然后加入Western洗涤液，在摇床上缓慢摇动洗涤5-10分钟。
吸尽洗涤液后，再加入洗涤液，洗涤5-10分钟。
共洗涤3次。
如果结果背景较高可以适当延长洗涤时间并增加洗涤次数。
前2步洗涤是为了洗去一抗和二抗的非特异性结合，洗涤的效果直接影响结果背景的深浅，所以洗涤一定要干净。
洗涤液使用TBST或者PBST，其中的Tween20有助于去除非特异性的结合，减少背景。
同时短时间多次的洗膜（如5-6次，每次3分钟）比长时间少次数的洗膜更有效。
第3步TBS洗涤是为了洗去膜上的Tween-20，因为它可以阻碍底物的沉积。
2.7.3注意事项
1.抗体保存注意事项：
☐收到抗体后按要求离心后再打开管盖进行分装和保存！
☐对于大部分抗体，比较合适的保存方式是分装后保存在-20℃。
◆分装的量以一次实验用完为好，最少不能少于10ul每份。
因为分装体积越小，抗体的浓度越可能会受到蒸发以及管壁吸附的影响。
◆复融后的分装抗体如果一次用不完，将剩余母液保存在40℃，避免再冻起来！
◆绝对避免将抗体保存在自动除霜冰箱中。
☐大部分抗体收到后40℃短暂保存1-2周对抗体活性是没有影响的。
☐长期保存，加入叠氮纳，防止细菌污染。
2.一抗/二抗使用问题：
一抗、二抗的浓度一般要参照抗体说明书选择最适当的比例，一抗二抗的选择直接影响实验结果以及背景的深浅。
要严格保证反应时间，洗膜要注意尽可能地将一抗二抗洗净，有利于降低背景；还要注意一抗二抗的匹配。
3.天然和非还原样品问题：
有些抗体只能识别的表位是非连续氨基酸，这些氨基酸虽然在蛋白质一级结构中彼此不连续，但是在空间结构中则是靠在一起的。
这些抗体就只能识别靶蛋白的空间结构状态（抗体说明书中会有特殊说明）。
对于这些样品，缓冲液和凝胶中就不能含有SDS，并且不能够对蛋白进行加热变性。
有些抗体只能识别蛋白的非还原状态如氧化状态，对此类样品，就需要将缓冲液和凝胶中的还原剂DTT和beta-巯基乙醇去除。
2.8蛋白检测（Detectionofproteins）——显影
酶促反应比同位素安全且快速，已经成为WesternBlot的主流检测方法。
酶促反应可以搭配不同的底物从而实现不同的显色方法：
化学发光和底物显色，前者灵敏度很高，已经达到皮
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