突变人CD59分子抗MAC沉积在糖尿病血管病中的作用.docx
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突变人CD59分子抗MAC沉积在糖尿病血管病中的作用
突变人CD59分子抗MAC沉积在糖尿病血管病中的作用
(作者:
___________单位:
___________邮编:
___________)
【摘要】目的:
研究糖化人突变(HM)CD59作为补体攻膜复合体(MAC)抑制物在糖尿病血管病病理机制中的重要作用。
方法:
构建2种HMCD59重组质粒,转染CHO细胞;FCM、Westernblot筛选高表达细胞。
糖化,BCECF释放试验测定糖化HMCD59和糖化HNCD59抗补体活性。
ELISA测定30例糖尿病无血管病变组和30例Ⅱ型糖尿病血管病组血清PDGFBB、VEGF含量。
结果:
筛选细胞株表达率分别为59.8%、53.7%、54.5%;BCECF释放试验显示糖化前转染突变CD59细胞比较糖化后细胞染料释放率低(P0.01);而正常CD59细胞比较糖化后细胞染料释放率无统计学意义。
Ⅱ型糖尿病有血管病变组与糖尿病无血管病变组相比,血清PDGFBB、VEGF明显增高(P0.01)。
结论:
证实HMCD59易糖化抗补体活性下降加速糖尿病血管病的发生发展。
【关键词】CD59;真核表达;糖化;补体;免疫分子
[Abstract]AIM:
ToinvestigatethefunctionofhumanmutantCD59indiabeticpathology.METHODS:
TherecombinantPALTERMAXplasmidcontaininghumanmutantCD59cDNAandpcDNAplasmidwerecotransfectedintoCHOcellsusingcationlipoidmediatingmethod.HighlyexpressedcellswereselectedbyflowcytometryandWesternblot,whichwerethencultivatedinhighglucose.ThefunctionsofrestrictingcomplementmembraneattackcomplexformationofglycatedHMCD59andHNCD59weredetectedbyBCECFreleasetest.ELISAwasusedtodetecttheserumconcentrationofPDGFBBandVEGFin30patientsoftypeⅡdiabeteswithoutvascularproliferatecomplicationand30typeⅡdiabetespatientswithvascularproliferatecomplication.RESULTS:
TheexpressionrateofHM1CD59,HM2CD59,HNCD59cellswas53.7%,54.5%and59.8%,respectively.BCECFreleasetestindicatedthereleaserateofglycatedHMCD59cellswashigherthanthatofunglycatedones(P0.01)whilenosignificantdifferenceswerefoundbetweennormalHNCD59cellsandglycatedones.TheserumconcentrationofPDGFBBandVEGFinpatientswithtypeⅡdiabetesmarkedlyincreased(P0.01).CONCLUSION:
Thedecreaseofglycatedrestrictingcomplementmembraneattackcomplexresultsintheacceleratingofhumanvascularproliferatecomplicationofdiabetes.
[Keyword]CD59;eukaryoticexpression;glycation;complement;immunologicalmolecule
补体调节蛋白CD59通过干扰补体攻膜复合体(membraneattackcomplex,MAC)的形成,保护宿主细胞免受补体的攻击。
已有报道,MAC刺激内皮细胞释放成纤维细胞生长因子(basicfibroblastgrowthfactor,bFGF)及血小板衍生生长因子(plateletderivedgrowthfactor,PDGF),这两种因子可刺激成纤维细胞、平滑肌细胞、肾小球基底膜细胞和血管内皮细胞大量增殖[1],最终导致糖尿病血管病。
MAC在糖尿病血管壁的增长性沉积已有文献报道。
糖化被认为是糖尿病组织损伤的主要病理机制[2]。
如果被糖化的蛋白质单氨基靠近活性位点就会影响蛋白质的功能。
通过观察糖化蛋白的三维结构得以证实,糖化易发生于靠近咪唑基的氨基或赖赖氨基的一部分。
人类CD59NMR[3,4]结构揭示了蛋白质赖氨酸K41是糖化位点,它距离惟一含有咪唑基的组氨酸H44大约5。
而且,K41邻近CD59功能基团W40[5]。
这表明K41位点易于糖化使CD59失去活性。
根据人类CD59分子的结构,人们发现在高血糖环境下,在CD59易于糖基化的位点K41H44上确实存在基因突变,即HMCD59:
K38C39W40K41H42E43Q44C45N46F47(正常HCD59:
K38C39W40K41F42E43H44C45N46F47),在糖尿病患者的尿液中已经提取出了此HMCD59,经测序得到证实。
基于此,本课题设计两种突变CD59cDNA序列连接于PALTER质粒转染CHO细胞,筛选高表达细胞株,通过BCECF释放试验证实了糖化人突变CD59在糖尿病血管并发症病理机制中的重要作用。
应用酶联免疫吸附实验法测定Ⅱ型糖尿病患者血清血小板衍生生长因子BB(PDGFBB)、血管内皮生长因子(vascularendothelialgrowthfactor,VEGF)含量,探讨这些免疫分子与糖尿病血管病变发生发展之间的相关性。
1材料和方法
1.1材料CHO细胞株购自中科院上海细胞生物学研究所,大肠杆菌DH5α由本室保存。
pALTERMAX、pcDNA3由美国哈佛大学惠赠;2’,7’二羧乙基56羧基荧光素(BCECF)为Sigma产品;彩色蛋白质marker为Gibco产品。
Lipfectamine2000购自InvitrogenTMlifetechnologies。
PDGFBB、VEGF试剂盒由美国RDSYSTEMS公司提供。
Ⅱ型糖尿病无血管病变组30例,Ⅱ型糖尿病有血管病变组30例,均符合1997年美国糖尿病学会(ADA)诊断标准。
1.2方法
1.2.1目的基因的选择及引物设计
(1)目的基因的选择:
1号人突变CD59(HM1)42位(F)氨基酸突变为组氨酸(H)相应密码子CAT(H)取代TTT,即X37X38C39W40K41H42X43X44C45X46;2号人突变CD59(HM2)43位(E)氨基酸突变为组氨酸(H)相应密码子CAT(H)取代GAG,即X37X38C39W40K41X42X43H44C45X46。
(2)引物设计:
根据已公布正常人CD59基因及已构建CD59cDNA重组载体序列设计2对突变CD59基因引物序列,1对常规上下游引物(pT7,T3)根据待插入CD59cDNA模板两侧pT7、T3RNA聚合酶启动子序列设计。
每种突变基因再合成一对带有诱变位点的互补寡核苷酸引物(18F,18R),2对突变引物长度均为28碱基,错配碱基位于中央。
引物序列如下:
常规引物pT7为5′TAATACGACTCACTATAGGC3′;常规引物T3为5′ATTAACCCTCACTAAAGGGA3′;HM1/F为5′AAGTGTTGGAAGCATGAGCAGTGCAATT3′;HM1/R为5′ATTGCACTGCTCATGCTTCCAACACTTG3′;HM2/F为5′GTGTTGGAAGTTTCATCAGTGCAATTTC3′;HM2/R为5′GAAATTGCACTGATGAAACTTCCAACAC3′。
1.2.2重组PCR定点突变获取目的突变基因EcoRI单酶切,T4连接酶连接,构建pALTERMAX突变CD59重组质粒,pALTERMAX结构图(图1),pcDNA结构图均含有氨苄青霉素抗性基因pcDNA含G418抗性基因。
图1pALTERMAX结构图
Fig1ConstructionofpALTERMAX1.2.3人基因突变CD59重组质粒(pALTERCD59)的扩增及鉴定pALTERCD59质粒转化大肠杆菌DH5ɑ:
感受态细菌的制备;pALTERCD59质粒转化大肠杆菌DH5ɑ;阳性菌落的筛选;碱裂解法小提取pALTERCD59质粒。
pALTERCD59质粒的酶切鉴定:
以EcoRⅠ对碱裂解法获取的重组质粒DNA进行37℃过夜单酶切,注意标记好管号,同时设空pALTER质粒阴性对照,酶切产物进行12g/L的琼脂糖凝胶电泳,每孔加样品10μL,以及DNA标准分子量参照,观察结果,筛选含重组基因的转化子。
重组子的序列分析鉴定:
DNA自动序列测定仪测定并筛选出插入序列正确的细菌克隆,命名为pALTERHM1CD59和pALTERHM2CD59。
扩增提取质粒备用(1号2号重组质粒方法相同)。
1.2.4HMCD59、HNCD59转染CHO细胞应用F12培养基作转染及克隆筛选培养液、1640作细胞扩增培养液(含青霉素100g/L、链霉素100g/L及100mL/L新生牛血清)。
阳离子脂质体法介导pcDNA与pALTERCD59质粒共转染CHO细胞:
转染前1d,消化并按1×106细胞/孔的数量接种于24孔板中37℃、CO2孵箱培养24h,细胞达到80%~90%汇合;稀释1μLPALTECD59重组质粒于100μL血清培养基的转染管中,混匀;稀释1μL脂质体于100μL无血清培养基的转染管中,混匀,室温放置5min;混合稀释的质粒和脂质体,室温放置20~30min;无血清无双抗培养液洗细胞1次;将质粒和脂质体混合液加入细胞中,轻混;37℃、CO2孵箱培养4~6h;加入1mL含200mL/LFBS无双抗的培养液培养24h;2.5g/L胰酶消化2~3min,每孔分别取20μL、200μL、1.5mL于3个10mL完全培养液的大板中培养。
G418(400~800)mg/L筛选阳性克隆。
1.2.5HMCD59在CHO细胞中表达的检测
(1)流式细胞术检测并筛选高表达克隆:
2.5g/L胰酶消化pALTERCD59转染CHO细胞成单细胞悬液,细胞计数获取1×106个细胞,PBS洗3次,15