口蹄疫防治技术规范.docx

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口蹄疫防治技术规范

二、口蹄疫防治技术规范

口蹄疫（FootandMouthDisease,FMD）是由口蹄疫病毒引起的以偶蹄动物为主的急性、热性、高度传染性疫病，世界动物卫生组织（OIE）将其列为必须报告的动物传染病，我国规定为一类动物疫病。

为预防、控制和扑灭口蹄疫，依据《中华人民共和国动物防疫法》、《重大动物疫情应急条例》、《国家突发重大动物疫情应急预案》等法律法规，制定本技术规范。

1适用范围

本规范规定了口蹄疫疫情确认、疫情处置、疫情监测、免疫、检疫监督的操作程序、技术标准及保障措施。

本规范适用于中华人民共和国境内一切与口蹄疫防治活动有关的单位和个人。

2诊断

2.1诊断指标

2.1.1流行病学特点

2.1.1.1偶蹄动物，包括牛科动物（牛、瘤牛、水牛、牦牛）、绵羊、山羊、猪及所有野生反刍和猪科动物均易感，驼科动物（骆驼、单峰骆驼、美洲驼、美洲骆马）易感性较低。

2.1.1.2传染源主要为潜伏期感染及临床发病动物。

感染动物呼出物、唾液、粪便、尿液、乳、精液及肉和副产品均可带毒。

康复期动物可带毒。

2.1.1.3易感动物可通过呼吸道、消化道、生殖道和伤口感染病毒，通常以直接或间接接触（飞沫等）方式传播，或通过人或犬、蝇、蜱、鸟等动物媒介，或经车辆、器具等被污染物传播。

如果环境气候适宜，病毒可随风远距离传播。

2.1.2临床症状

2.1.2.1牛呆立流涎，猪卧地不起，羊跛行；

2.1.2.2唇部、舌面、齿龈、鼻镜、蹄踵、蹄叉、乳房等部位出现水泡；

2.1.2.3发病后期，水泡破溃、结痂，严重者蹄壳脱落，恢复期可见瘢痕、新生蹄甲；

2.1.2.4传播速度快，发病率高；成年动物死亡率低，幼畜常突然死亡且死亡率高，仔猪常成窝死亡。

2.1.3病理变化

2.1.3.1消化道可见水泡、溃疡；

2.1.3.2幼畜可见骨骼肌、心肌表面出现灰白色条纹，形色酷似虎斑。

2.1.4病原学检测

2.1.4.1间接夹心酶联免疫吸附试验，检测阳性（ELISAOIE标准方法附件一）；

2.1.4.2RT-PCR试验，检测阳性（采用国家确认的方法）；

2.1.4.3反向间接血凝试验（RIHA），检测阳性（附件二）；

2.1.4.4病毒分离，鉴定阳性。

2.1.5血清学检测

2.1.5.1中和试验，抗体阳性；

2.1.5.2液相阻断酶联免疫吸附试验，抗体阳性；

2.1.5.3非结构蛋白ELISA检测感染抗体阳性；

2.1.5.4正向间接血凝试验（IHA），抗体阳性（附件三）。

2.2结果判定

2.2.1疑似口蹄疫病例

符合该病的流行病学特点和临床诊断或病理诊断指标之一，即可定为疑似口蹄疫病例。

2.2.2确诊口蹄疫病例

疑似口蹄疫病例，病原学检测方法任何一项阳性，可判定为确诊口蹄疫病例；

疑似口蹄疫病例，在不能获得病原学检测样本的情况下，未免疫家畜血清抗体检测阳性或免疫家畜非结构蛋白抗体ELISA检测阳性，可判定为确诊口蹄疫病例。

2.3疫情报告

任何单位和个人发现家畜上述临床异常情况的，应及时向当地动物防疫监督机构报告。

动物防疫监督机构应立即按照有关规定赴现场进行核实。

2.3.1疑似疫情的报告

县级动物防疫监督机构接到报告后，立即派出2名以上具有相关资格的防疫人员到现场进行临床和病理诊断。

确认为疑似口蹄疫疫情的，应在2小时内报告同级兽医行政管理部门，并逐级上报至省级动物防疫监督机构。

省级动物防疫监督机构在接到报告后，1小时内向省级兽医行政管理部门和国家动物防疫监督机构报告。

诊断为疑似口蹄疫病例时，采集病料（附件四），并将病料送省级动物防疫监督机构，必要时送国家口蹄疫参考实验室。

2.3.2确诊疫情的报告

省级动物防疫监督机构确诊为口蹄疫疫情时，应立即报告省级兽医行政管理部门和国家动物防疫监督机构；省级兽医管理部门在1小时内报省级人民政府和国务院兽医行政管理部门。

国家参考实验室确诊为口蹄疫疫情时，应立即通知疫情发生地省级动物防疫监督机构和兽医行政管理部门，同时报国家动物防疫监督机构和国务院兽医行政管理部门。

省级动物防疫监督机构诊断新血清型口蹄疫疫情时，将样本送至国家口蹄疫参考实验室。

2.4疫情确认

国务院兽医行政管理部门根据省级动物防疫监督机构或国家口蹄疫参考实验室确诊结果，确认口蹄疫疫情。

3疫情处置

3.1疫点、疫区、受威胁区的划分

3.1.1疫点为发病畜所在的地点。

相对独立的规模化养殖场/户，以病畜所在的养殖场/户为疫点；散养畜以病畜所在的自然村为疫点；放牧畜以病畜所在的牧场及其活动场地为疫点；病畜在运输过程中发生疫情，以运载病畜的车、船、飞机等为疫点；在市场发生疫情，以病畜所在市场为疫点；在屠宰加工过程中发生疫情，以屠宰加工厂（场）为疫点。

3.1.2疫区由疫点边缘向外延伸3公里内的区域。

3.1.3受威胁区由疫区边缘向外延伸10公里的区域。

在疫区、受威胁区划分时，应考虑所在地的饲养环境和天然屏障（河流、山脉等）。

3.2疑似疫情的处置

对疫点实施隔离、监控，禁止家畜、畜产品及有关物品移动，并对其内、外环境实施严格的消毒措施。

必要时采取封锁、扑杀等措施。

3.3确诊疫情处置

疫情确诊后，立即启动相应级别的应急预案。

3.3.1封锁

疫情发生所在地县级以上兽医行政管理部门报请同级人民政府对疫区实行封锁，人民政府在接到报告后，应在24小时内发布封锁令。

跨行政区域发生疫情的，由共同上级兽医行政管理部门报请同级人民政府对疫区发布封锁令。

3.3.2对疫点采取的措施

3.3.2.1扑杀疫点内所有病畜及同群易感畜，并对病死畜、被扑杀畜及其产品进行无害化处理（附件五）；

3.3.2.2对排泄物、被污染饲料、垫料、污水等进行无害化处理（附件六）；

3.3.2.3对被污染或可疑污染的物品、交通工具、用具、畜舍、场地进行严格彻底消毒（附件七）；

3.3.2.4对发病前14天售出的家畜及其产品进行追踪，并做扑杀和无害化处理。

3.3.3对疫区采取的措施

3.3.3.1在疫区周围设置警示标志，在出入疫区的交通路口设置动物检疫消毒站，执行监督检查任务，对出入的车辆和有关物品进行消毒；

3.3.3.2所有易感畜进行紧急强制免疫，建立完整的免疫档案；

3.3.3.3关闭家畜产品交易市场，禁止活畜进出疫区及产品运出疫区；

3.3.3.4对交通工具、畜舍及用具、场地进行彻底消毒；

3.3.3.5对易感家畜进行疫情监测，及时掌握疫情动态;

3.3.3.6必要时，可对疫区内所有易感动物进行扑杀和无害化处理。

3.3.4对受威胁区采取的措施

3.3.4.1最后一次免疫超过一个月的所有易感畜，进行一次紧急强化免疫；

3.3.4.2加强疫情监测，掌握疫情动态。

3.3.5疫源分析与追踪调查

按照口蹄疫流行病学调查规范，对疫情进行追踪溯源、扩散风险分析（附件八）。

3.3.6解除封锁

3.3.6.1封锁解除的条件

口蹄疫疫情解除的条件：

疫点内最后1头病畜死亡或扑杀后连续观察至少14天，没有新发病例；疫区、受威胁区紧急免疫接种完成；疫点经终末消毒；疫情监测阴性。

新血清型口蹄疫疫情解除的条件：

疫点内最后1头病畜死亡或扑杀后连续观察至少14天没有新发病例；疫区、受威胁区紧急免疫接种完成；疫点经终末消毒；对疫区和受威胁区的易感动物进行疫情监测，结果为阴性。

3.3.6.2解除封锁的程序：

动物防疫监督机构按照上述条件审验合格后，由兽医行政管理部门向原发布封锁令的人民政府申请解除封锁，由该人民政府发布解除封锁令。

必要时由上级动物防疫监督机构组织验收。

4疫情监测

4.1监测主体：

县级以上动物防疫监督机构。

4.2监测方法：

临床观察、实验室检测及流行病学调查。

4.3监测对象：

以牛、羊、猪为主，必要时对其他动物监测。

4.4监测的范围

4.4.1养殖场户、散养畜，交易市场、屠宰厂（场）、异地调入的活畜及产品。

4.4.2对种畜场、边境、隔离场、近期发生疫情及疫情频发等高风险区域的家畜进行重点监测。

监测方案按照当年兽医行政管理部门工作安排执行。

4.5疫区和受威胁区解除封锁后的监测临床监测持续一年，反刍动物病原学检测连续2次，每次间隔1个月，必要时对重点区域加大监测的强度。

4.6在监测过程中，对分离到的毒株进行生物学和分子生物学特性分析与评价，密切注意病毒的变异动态，及时向国务院兽医行政管理部门报告。

4.7各级动物防疫监督机构对监测结果及相关信息进行风险分析，做好预警预报。

4.8监测结果处理

监测结果逐级汇总上报至国家动物防疫监督机构，按照有关规定进行处理。

5免疫

5.1国家对口蹄疫实行强制免疫，各级政府负责组织实施，当地动物防疫监督机构进行监督指导。

免疫密度必须达到100%。

5.2预防免疫，按农业部制定的免疫方案规定的程序进行。

5.3突发疫情时的紧急免疫按本规范有关条款进行。

5.4所用疫苗必须采用农业部批准使用的产品，并由动物防疫监督机构统一组织、逐级供应。

5.5所有养殖场/户必须按科学合理的免疫程序做好免疫接种，建立完整免疫档案（包括免疫登记表、免疫证、免疫标识等）。

5.6各级动物防疫监督机构定期对免疫畜群进行免疫水平监测，根据群体抗体水平及时加强免疫。

6检疫监督

6.1产地检疫

猪、牛、羊等偶蹄动物在离开饲养地之前，养殖场/户必须向当地动物防疫监督机构报检，接到报检后，动物防疫监督机构必须及时到场、到户实施检疫。

检查合格后，收回动物免疫证，出具检疫合格证明；对运载工具进行消毒，出具消毒证明，对检疫不合格的按照有关规定处理。

6.2屠宰检疫

动物防疫监督机构的检疫人员对猪、牛、羊等偶蹄动物进行验证查物，证物相符检疫合格后方可入厂（场）屠宰。

宰后检疫合格，出具检疫合格证明。

对检疫不合格的按照有关规定处理。

6.3种畜、非屠宰畜异地调运检疫

国内跨省调运包括种畜、乳用畜、非屠宰畜时，应当先到调入地省级动物防疫监督机构办理检疫审批手续，经调出地按规定检疫合格，方可调运。

起运前两周，进行一次口蹄疫强化免疫，到达后须隔离饲养14天以上，由动物防疫监督机构检疫检验合格后方可进场饲养。

6.4监督管理

6.4.1动物防疫监督机构应加强流通环节的监督检查，严防疫情扩散。

猪、牛、羊等偶蹄动物及产品凭检疫合格证（章）和动物标识运输、销售。

6.4.2生产、经营动物及动物产品的场所，必须符合动物防疫条件，取得动物防疫合格证，当地动物防疫监督机构应加强日常监督检查。

6.4.3各地根据防控家畜口蹄疫的需要建立动物防疫监督检查站，对家畜及产品进行监督检查，对运输工具进行消毒。

发现疫情，按照《动物防疫监督检查站口蹄疫疫情认定和处置办法》相关规定处置。

6.4.4由新血清型引发疫情时，加大监管力度，严禁疫区所在县及疫区周围50公里范围内的家畜及产品流动。

在与新发疫情省份接壤的路口设置动物防疫监督检查站、卡实行24小时值班检查；对来自疫区运输工具进行彻底消毒，对非法运输的家畜及产品进行无害化处理。

6.4.5任何单位和个人不得随意处置及转运、屠宰、加工、经营、食用口蹄疫病（死）畜及产品；未经动物防疫监督机构允许，不得随意采样；不得在未经国家确认的实验室剖检分离、鉴定、保存病毒。

7保障措施

7.1各级政府应加强机构、队伍建设，确保各项防治技术落实到位。

7.2各级财政和发改部门应加强基础设施建设，确保免疫、监测、诊断、扑杀、无害化处理、消毒等防治技术工作经费落实。

7.3各级兽医行政部门动物防疫监督机构应按本技术规范，加强应急物资储备，及时培训和演练应急队伍。

7.4发生口蹄疫疫情时，在封锁、采样、诊断、流行病学调查、无害化处理等过程中，要采取有效措施做好个人防护和消毒工作，防止人为扩散。

附件一：

间接夹心酶联免疫吸附试验（I-ELISA）

1试验程序和原理

1.1利用包被于固相（I，96孔平底ELISA专用微量板）的FMDV型特异性抗体（AB，包被抗体，又称为捕获抗体），捕获待检样品中相应型的FMDV抗原（Ag）。

再加入与捕获抗体同一血清型，但用另一种动物制备的抗血清（Ab，检测抗体）。

如果有相应型的病毒抗原存在，则形成“夹心”式结合，并被随后加入的酶结合物/显色系统（*E/S）检出。

1.2由于FMDV的多型性，和可能并发临床上难以区分的水泡性疾病，在检测病料时必然包括几个血清型（如O、A、亚洲-1型）；及临床症状相同的某些疾病，如猪水泡病（SVD）。

2材料

2.1样品的采集和处理

见附件四

2.2主要试剂

2.2.1抗体

2.2.1.1包被抗体：

兔抗FMDV-“O”、“A”、“亚洲-I”型146S血清；及兔抗SVDV-160S血清。

2.2.1.2检测抗体：

豚鼠抗FMDV-“O”、“A”、“亚洲-I”型146S血清；及豚鼠抗SVDV-160S血清。

2.2.2酶结合物

兔抗豚鼠Ig抗体（Ig）-辣根过氧化物酶（HRP）结合物。

2.2.3对照抗原

灭活的FMDV-“O”“A”“亚洲-I”各型及SVDV细胞病毒液。

2.2.4底物溶液（底物/显色剂）

3％过氧化氢/3.3mmol/L邻苯二胺（OPD）。

2.2.5终止液

1.25mol/L硫酸。

2.2.6缓冲液

2.2.6.1包被缓冲液0.05mol/LNa2CO3-NaHCO3，pH9.6。

2.2.6.2稀释液A0.01mol/LPBS-0.05％（v/v）Tween-20，pH7.2～7.4。

2.2.6.3稀释液B5％脱脂奶粉（w/v）-稀释液A。

2.2.6.4洗涤缓冲液0.002mol/LPBS-0.01％（v/v）Tween-20。

2.3主要器材设备

2.3.1固相

96孔平底聚苯乙烯ELISA专用板。

2.3.2移液器、尖头及贮液槽

微量可调移液器一套，可调范围0.5～5000μL（5～6支）；多（4、8、12）孔道微量可调移液器（25～250μL）；微量可调连续加样移液器（10～100μL）；与各移液器匹配的各种尖头，及配套使用的贮液槽。

2.3.3振荡器

与96孔微量板配套的旋转振荡器。

2.3.4酶标仪,492nm波长滤光片。

2.3.5洗板机或洗涤瓶,吸水纸巾。

2.3.637℃恒温温室或温箱。

3操作方法

3.1预备试验

为了确保检测结果准确可靠，必须最优化组合该ELISA，即试验所涉及的各种试剂，包括包被抗体、检测抗体、酶结合物、阳性对照抗原都要预先测定，计算出它们的最适稀释度，既保证试验结果在设定的最佳数据范围内，又不浪费试剂。

使用诊断试剂盒时，可按说明书指定用量和用法。

如试验结果不理想，重新滴定各种试剂后再检测。

3.2包被固相

3.2.1FMDV各血清型及SVDV兔抗血清分别以包被缓冲液稀释至工作浓度，然后按图3-1<Ⅰ>所示布局加入微量板各行。

每孔50μL。

加盖后37℃振荡2h。

或室温（20～25℃）振荡30min，然后置湿盒中4℃过夜（可以保存1周左右）。

3.2.2一般情况下,牛病料鉴定“O”和“A”两个型，某些地区的病料要加上“亚洲-I”型；猪病料要加上SVDV。

图3-1：

定型ELISA微量板包被血清布局<Ⅰ>、对照和被检样品布局<Ⅱ>

<Ⅰ><Ⅱ>123456789101112

AFMDV“O”

C++C++

C+C+

C-C-

S11

S33

S55

B“A”

C++C++

C+C+

C-C-

S11

S33

S55

C“Asia-I”

C++C++

C+C+

C-C-

S11

S33

S55

DSVDV

C++C++

C+C+

C-C-

S11

S33

S55

EFMDV“O”

C++C++

C+C+

C-C-

S22

S44

S66

F“A”

C++C++

C+C+

C-C-

S22

S44

S66

G“Asia-I”

C++C++

C+C+

C-C-

S22

S44

S66

HSVDV

C++C++

C+C+

C-C-

S22

S44

S66

试验开始，依据当天检测样品的数量包被，或取出包被好的板子；如用可拆卸微量板，则根据需要取出几条。

在试验台上放置20min，再洗涤5次，扣干。

3.3加对照抗原和待检样品

3.3.1布局

空白和各阳性对照、待检样品在ELISA板上的分布位置如图3-1<Ⅱ>所示。

3.3.2加样

3.3.2.1第5和第6列为空白对照（C-），每孔加50μL稀释液A。

3.3.2.2先将各型阳性对照抗原分别以稀释液A适当稀释，然后加入与包被抗体同型的各行孔中，C++为强阳性，C+为阳性，可以用同一对照抗原的不同稀释度。

每一对照2孔，每孔50μL。

3.3.2.3按待检样品的序号（S1、S2...）逐个加入，每份样品每个血清型加2孔，每孔50μL。

37℃振荡1h，洗涤5次，扣干。

3.4加检测抗体

各血清型豚鼠抗血清以稀释液A稀释至工作浓度，然后加入与包被抗体同型各行孔中，每孔50μL。

37℃振荡1h。

洗涤5次，扣干。

3.5加酶结合物

酶结合物以稀释液B稀释至工作浓度，每孔50μL。

37℃振荡40min。

洗涤5次，扣干。

3.6加底物溶液

试验开始时，按当天需要量从冰箱暗盒中取出OPD，放在温箱中融化并使之升温至37℃。

临加样前，按每6mLOPD加3％双氧水30μL（一块微量板用量），混匀后每孔加50μL。

37℃振荡15min。

3.7加终止液

显色反应15分钟，准时加终止液1.25mol/LH2SO4。

50μL/孔。

3.8观察和判读结果

终止反应后,先用肉眼观察全部反应孔。

如空白对照和阳性对照孔的显色基本正常,再用酶标仪（492nm）判读OD值。

4结果判定

4.1数据计算

为了便于说明，假设表3-1所列数据为检测结果（OD值）。

利用表3-1所列数据,计算平均OD值和平均修正OD值（表3-2）

4.1.1各行2孔空白对照（C-）平均OD值；

4.1.2各行（各血清型）抗原对照（C++、C+）平均OD值；

4.1.3各待检样品各血清型（2孔）平均OD值；

4.1.4计算出各平均修正OD值（＝［每个

（2）或（3）值］－［同一行的

（1）值］。

表3-1.定型ELISA结果（OD值）

C++C+C-S1S2S3

AFMDV“O”

1.841.74

0.560.46

0.060.04

1.621.54

0.680.72

0.100.08

B“A”

1.251.45

0.400.42

0.070.05

0.090.07

1.221.32

0.090.09

C“Asia-I”

1.321.12

0.520.50

0.040.08

0.050.09

0.120.06

0.070.09

DSVDV

1.081.10

0.220.24

0.080.08

0.090.10

0.080.12

0.280.34

C++C+C-S4S5S6

EFMDV“O”

0.940.84

0.240.22

0.060.06

1.221.12

0.090.10

0.130.17

F“A”

1.101.02

0.110.13

0.060.04

0.100.10

0.280.26

0.200.28

G“Asia-I”

0.390.41

0.290.21

0.090.09

0.100.09

0.100.10

0.350.33

HSVDV

0.880.78

0.150.11

0.050.05

0.110.07

0.090.09

0.100.12

表3-2.平均OD值/平均修正OD值

C++C+C-S1S2S3

AFMDV“O”

1.79/1.75

0.51/0.46

0.05

1.58/1.53

0.70/0.65

0.09/0.04

B“A”

1.35/1.29

0.41/0.35

0.06

0.08/0.02

1.27/1.21

0.09/0.03

C“Asia-I”

1.22/1.16

0.51/0.45

0.06

0.07/0.03

0.09/0.03

0.08/0.02

DSVDV

1.09/1.01

0.23/0.15

0.08

0.10/0.02

0.10/0.02

0.31/0.23

C++C+C-S4S5S6

EFMDV“O”

0.89/0.83

0.23/0.17

0.06

1.17/1.11

0.10/0.04

0.15/0.09

F“A”

1.06/1.01

0.12/0.07

0.05

0.10/0.05

0.27/0.22

0.24/0.19

G“Asia-I”

0.40/0.31

0.25/0.16

0.09

0.10/0.01

0.10/0.01

0.34/0.25

HSVDV

0.83/0.78

0.13/0.08

0.05

0.09/0.05

0.09/0.04

0.11/0.06

4.2结果判定

4.2.1试验不成立

如果空白对照（C-）平均OD值＞0.10，则试验不成立，本试验结果无效。

4.2.2试验基本成立

如果空白对照（C-）平均OD值≤0.10，则试验基本成立。

4.2.3试验绝对成立

如果空白对照（C-）平均OD值≤0.10，C+平均修正OD值＞0.10，C++平均修正OD值＞1.00,试验绝对成立。

如表2中A、B、C、D行所列数据。

4.2.3.1如果某一待检样品某一型的平均修正OD值≤0.10，则该血清型为阴性。

如S1的“A”、“Asia-1”型和“SVDV”。

4.2.3.2如果某一待检样品某一型的平均修正OD值＞0.10，而且比其他型的平均修正OD值大2倍或2倍以上，则该样品为该最高平均修正OD值所在的血清型。

如S1为“O”型；S3为“Asia-I”型。

4.2.3.3虽然某一待检样品某一型的平均修正OD值＞0.10，但不大于其他型的平均修正OD值的2倍，则该样品只能判定为可疑。

该样品应接种乳鼠或细胞，并盲传数代增毒后再作检测。

如S2“A”型。

4.2.4试验部分成立

如果空白对照（C-）平均OD值≤0.10，C+平均修正OD值≤0.10，C++平均修正OD值≤1.00,试验部分成立。

如表2中E、F、G、H行所列数据。

4.2.4.1如果某一待检样品某一型的平均修正OD值≥0.10，而且比其他型的平均修正OD值大2倍或2倍以上，则该样品为该最高平均修正OD值所在的血清型。

例如S4判定为“O”型。

4.2.4.2如果某一待检样品某一型的平均修正OD值介于0.10～1.00之间,而且比其他型的平均修正OD值大2倍或2倍以上，该样品可以判定为该最高OD值所在血清型。

例如S5判定为“A”型。

4.2.4.3如果某一待检样品某一型的平均修正OD值介于0.10～1.00之间,