土壤中产淀粉酶芽孢杆菌的筛选及其淀粉酶活力的测定FINAL.docx
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土壤中产淀粉酶芽孢杆菌的筛选及其淀粉酶活力的测定FINAL
土壤中产淀粉酶芽孢杆菌的筛选及其淀粉酶活力的测定FINAL
土壤中产淀粉酶芽胞杆菌的筛选及其淀
粉酶活力的测定设计性实验方案
微生物学实验
生命科学学院
06生工
本文通过稀释平板和分区划线的方法在演艺中心旁的土壤、新运动场附近的足
球场和实验室老师用于培养大麦所用的有机肥土壤培养基的土壤样品中分离到能产淀粉酶
的芽孢杆菌3株，编号为3、5、7。
通过观察其透明圈并测量计算透明圈直径（H）和菌落直径（D）的比值和采用3，5-二硝基水杨酸显色法（DNS）对发酵培养基发酵培养提取的
粗酶液进行酶活力测定的方法对该3株菌株进行鉴定，结果表明
酶是生物体内进行生物化学反应的催化剂，在生物体中已发现的酶有2500多种。
由于酶促反应的特异性强，反应条件温和、安全、无毒、环境污染少。
而不同类型的微
生物由于自身生长的需要，产生并向胞外分泌能水解大分子蛋白和淀粉的酶类，使不能透过
微生物细胞的大分子物质经酶解后形成小分子糖、小队和氨基酸，可为微生物提供碳素和氮
素营养。
由于微生物体积小，生长速度快，易于大规模生产，从微生物中制取酶已成为发酵
工业中的一个新兴领域。
目前能由工业生产的50多种酶制剂，大部分是由霉菌、细菌、链
霉菌和酵母菌产生的。
酶制剂中的蛋白酶、淀粉酶、脂肪酶、果胶酶、纤维素酶、葡萄糖氧
化酶，葡萄糖异构酶在食品、洗涤剂、皮革、纺织、造纸、诊断、药用等领域具有广泛的应
用价值。
潮lJ值得一提的是，用于H报反应的高温叫A聚合酶Taq酶是从古生菌中的水生栖热菌（7AowM6g坝zifm）中获取的，此酶可耐80—90?
高温，而最新的Pfu酶则是从另一类古生菌——激烈火球菌（P）州。
en6／M71删）中获取的。
该酶可耐90?
以上的高温，这两种微生物酶的发现，为分子生物学的研究提供了有力的工具。
1、了解微生物分离纯化的原理及微生物分离纯化常用方法和技术；2、掌握从土壤中筛选产淀粉酶菌株的原理及方法；
3、掌握微生物的摇瓶培养方法及淀粉酶活力测定的原理及方法；4、培养学生自行设计实验流程、综合分析解决问题及判断实验结果的能力；5、对所学习过的微生物实验方法进行综合技能训练；
6、从不同环境土壤样品中筛选出能产淀粉酶的芽孢杆菌，并分析比较各产淀粉酶菌株的产
淀粉酶活力及总结各芽孢杆菌在土壤中的分布情况。
土壤微生物类群在全球自然生态系统中具有不可替代的作用,它推动着生态系统的能量流动和物质循环,维持生态系统的正常运转,是生态系统中的重要组成部分,在土壤中的分布既反映土壤、植物和气候等综合因素对微生物的影响和作用,同时其生命活动也反映出土壤肥力、土壤改良与植物营养的密切关系。
芽孢杆菌是土壤细菌中最具活力的部分之一,也是土壤细菌的主要种群之一[3]。
芽孢杆菌属（Bacillus）是一类好氧或兼性厌氧、产生抗逆性内生孢子的杆状细菌。
多数
为腐生菌,主要分布于土壤、动植物体表及水体中。
由于芽孢杆菌属的细菌可以产生多种有
用代谢产物,芽孢又是菌体度过不良环境的休眠体,因此,在工、农业生产上有较高的应用价值[1]。
从混杂微生物群体中获得只含有某一种或某一株微生物的过程称为微生物分离与纯化。
平板分离发普遍用于微生物的分离与纯化。
其基本原理是选择适合与待分离微生物的生长条
件，如营养成分、酸碱度、温度和氧等要求，或加入某种抑制剂造成只利于该微生物生长，
而抑制其他微生物生长的环境，从而淘汰一些不需要的微生物。
微生物在固体培养基上生长形成的单个菌落，通常是由一个细胞繁殖而成的集合体。
因
此可通过挑取单菌落而获得一种纯培养。
获取单个菌落的方法可通过稀释涂布平板或平板划
线等技术完成。
值得指出的是，从微生物群体中经分离生长在平板上的单个菌落并不一定保
证是纯培养。
因此，纯培养的确定除观察其菌落特征外，还要结合显微镜检测个体形态特征
后才能确定，有些微生物的纯培养要经过一系列分离与纯化过程和多种特征鉴定才能得到。
土壤是微生物生活的大本营，它所含微生物无论是数量还是种类都是极其丰富的。
因此
土壤是微生物多样性的重要场所，是发掘微生物资源的重要基地，可以从中分离、纯化得到
许多有价值的菌株。
本实验将用营养琼脂和淀粉牛肉膏培养基分离纯化产淀粉酶的芽孢杆
菌。
新运动场附近的足球场、温室旁、b17楼下、演艺中心旁的土壤和实验室老师
用于培养大麦所用的有机肥土壤培养基
营养琼脂（%）：
蛋白胨1牛肉膏0.3氯化钠0.5琼脂1.5～2.0蒸馏水将除琼脂以外的各成分溶解于蒸馏水内，加入15%氢氧化钠溶液约2mL，校正pH至7.2～7.4。
加入琼脂,加热煮沸，使琼脂溶化。
淀粉牛肉膏蛋白胨培养基（%）：
可溶性淀0.2牛肉0.3蛋白1.0氯化钠0.5琼脂1.5～2.0校正pH至7.2～7.4
发酵培养基（%）：
玉米粉2黄豆饼粉1.5CaCl0.02MgSO0.02NaCl0.25KHPO0.2424
柠檬酸钠0.2硫酸氨0.075（溶解后加）NaHPO0.2校正pH值7.024
葡萄糖蛋白胨培养基（V.P试验用）（%）：
葡萄糖0.5蛋白胨0.5KHPO0.2校正pH7.2～247.4
蛋白胨水培养基（吲哚试验用）（%）：
蛋白胨1%氯化钠0.5%校正pH7.2～7.4
西蒙氏柠檬酸盐培养基（%）：
氯化钠0.5硫酸镁（MgSO?
7HO）0.02磷酸二氢铵0.1磷42
酸氢二钾0.1柠檬酸0.5琼脂2溴麝香草酚蓝溶液4酚红试剂校正pH6.8配制营养明胶培养基（%）：
蛋白胨0.5、牛肉膏0.3、明胶1.2，调pH6.8~7.0耐盐培养基（%）：
蛋白胨1牛肉膏0.3氯化钠1琼脂1.5～2.0蒸馏水
蛋白胨1牛肉膏0.3氯化钠2琼脂1.5～2.0蒸馏水
蛋白胨1牛肉膏0.3氯化钠3琼脂1.5～2.0蒸馏水
蛋白胨1牛肉膏0.3氯化钠4琼脂1.5～2.0蒸馏水
蛋白胨1牛肉膏0.3氯化钠5琼脂1.5～2.0蒸馏水加入15%氢氧化钠溶液约2mL，校正pH至7.2～7.4。
加入琼脂,加热煮沸，使琼脂溶化。
染料
革兰氏染色：
草酸铵结晶紫染色液、卢戈氏碘液、95%乙醇;
芽孢染色：
5%孔雀绿溶液,石炭酸复红液;香柏油、二甲苯
吲哚试验：
乙醚、吲哚试剂
V.P.试验：
40％NaOH溶液、α-奈酚，
淀粉酶活力测定：
1%3,5-二硝基水杨酸试剂
无菌玻璃涂棒无菌吸管接种环无菌培养皿土样三角瓶烧杯洗瓶玻棒试管酒精灯擦镜纸接种环酒精灯载玻片吸水纸等。
恒温摇床恒温培养箱高压蒸汽灭菌箱超净工作台水浴箱紫外灯照射箱磁力搅拌器玻璃珠移液管涂布器显微镜
1、土样的采集
取五个土样点，分别是新运动场附近的足球场、温室旁、b17楼下、演艺中心旁的土壤和实验室老师用于培养大麦所用的有机肥土壤。
用无菌用具，如用酒精擦拭过的铲子铲去表土，
取其各自表土5cm左右的深处土壤，装进无菌防水纸袋，编号包装好。
2、菌株的分离提纯-1的2.1土壤稀释液的制备土壤悬浮液。
每个环境的土样装1个锥形瓶，共5个，同时将其分为10组，编号ABCDE。
?
五个土样分别取5g，放入各自装有45mL无菌水的三角瓶，振荡10min,即为稀释10?
将5个锥形瓶加塞、包扎、摇匀（无菌室里），利用恒温水浴装置80?
左右水浴，水浴锅
-1温度恒定后维持20min（制悬液时就应先开始加热），制成10g/ml的土壤悬液
-2-3-4-5?
再分别另取装有9mL无菌水试管5支，用记号笔编上10、10、10、10。
取已稀释成-110土壤液，振荡后静止0.5min，用无菌吸管吸取1mL土壤悬液加入10-2的无菌水的试管
-2-2中，并在试管内轻轻反复吹吸数次，使之充分混匀，即成10土壤稀释液。
同法从10的试
-3管中吸取1mL稀释液加入编号为10的无菌水试管中，混匀后即为10-3土壤稀释液，依次
-4-5连续稀释为10、10土壤稀释液。
在土壤稀释过程中，以同一支吸管由浓到稀，稀释到底。
-2-3-4?
选择稀释度10、10、10，加热80?
20min处理稀释液以杀死无芽孢细菌，浓缩芽孢
杆菌。
2.2分离土壤中的细菌及纯化
?
制作平板每组取无菌培养皿2副，各在培养皿底部贴上标签，注明分离菌名、稀释度、
组别、班级。
取已溶化的牛肉膏蛋白胨培养基，倒入无菌培养皿
中，制成平板。
?
涂布平板用一支新的无菌枪头，由低浓度开始，从各浓度土
壤稀释液中各吸取100ul，对号较均匀地放入已写好稀释度的牛肉
蛋白胨培养基平板上，用灼烧冷却后的无菌玻璃涂棒涂匀。
每个
浓度做3个平板（重复）。
?
划线接种（分区划线法）平板凝固后，各组分别用接种环以
无菌操作挑取平板上长出的单菌落分区划线，先在平板培养基的
一边作第1次平行划线3~4条，再转动培养皿约60?
角，并将接
种环上剩余物烧掉，待冷却后通过第1次划线部分作第2次平行
划线，再用同法通过第2次平行划线部分作第3次平行划线和通
过第3次平行划线部分作第4次平行划线（如右图）。
划线完毕，
盖上皿盖，倒置于28~29?
C温室中培养约20h.。
再继续分区划线2-3次，以获得较纯的菌种。
?
将纯化得到的单菌落分为两部分，其中一部分接种到培养基内，用以保存菌种，另一部分
用来做染色实验。
2.3获产淀粉酶芽孢杆菌纯种：
上述划线接种后的菌落中各挑取形态特征不一致的点接于倒好的淀粉牛肉膏培养基中，一个
土样取8个平板两两标记同一位置同序号标记，一平板分5个区域，点接重复两次，在37?
培养箱中培养24h。
上述点接后的平板中取出一组四个分好区域的淀粉牛肉膏培养基平板于实验室，其他置于无
菌室。
实验室里，四个平板均加入碘液，立即观察记录阳性和阴性菌落所在位置，并可同时
记录透明圈的大小。
根据所记录的阳性菌的编号，利用另一组中的营养琼脂平板上其对应的
菌落继续划线接种，培养后将出现的形态特征不一致的菌落进行编号，然后挑取部分出来进
行革兰氏染色镜检，若发现视野内出现形态、大小、颜色一致且为杆菌的菌体，则将其对应
的菌种划线接种到新的营养琼脂平板上，标记，37?
下培养24h。
否则继续进行划线分离，培养后再经革兰氏染色镜检直至得到纯种杆菌后进行芽孢染色。
筛选出芽孢纯种后进行斜面
接种。
其中革兰氏染色步骤：
涂片、干燥及固定
初染：
在做好的涂面上滴加草酸铵结晶紫染液，染1分钟，倾去染液，流水冲洗至无紫色。
媒染：
先用新配的路哥氏碘液冲去残水，而后用其覆盖涂面1分钟，后水洗。
脱色：
除去残水后，滴加95%酒精进行脱色约15－20秒，后立即用流水冲洗。
复染：
滴加番红染色液，染3－5分钟，水洗后用吸水纸吸干。
镜检：
油镜观察染色结果。
芽孢染色染色镜检：
?
取37?
培养18～24h的枯草芽孢杆菌涂片，干燥，固定。
?
于涂片上滴人3～5滴5%孔雀绿水溶液。
?
用试管夹夹住载玻片在火焰上用微火加热，自载玻片上出现蒸汽时，开始计算时间约4～5min。
加热过程中切勿使染料蒸干，必要时可添加少许染料。
?
倾去染液，待玻片冷却后，水冲洗至孔雀绿不再褪色为止。
?
用石炭酸复红液复染lmin，水洗。
?
制片干燥后用油镜观察。
芽孢呈绿色，菌体红色。
观察荚膜
2.4斜面保存菌种
?
贴标签取各种无菌斜面试管数支，将注有菌株名称和接种日期的标签贴上，贴在试管
斜面的正上方，距试管口2～3cm处。
（每种菌接3管，标上相同编号也要与平板上
菌落编号相对应）。
进行斜面接种操作，加塞、包扎好到37?
培养箱里培养24h。
3、菌种的鉴定
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