免疫组化总结猪羊.docx
《免疫组化总结猪羊.docx》由会员分享，可在线阅读，更多相关《免疫组化总结猪羊.docx（17页珍藏版）》请在冰豆网上搜索。
免疫组化总结猪羊
免疫组化阶段总结
一实验所用试剂配方：
1苦味酸饱和液的配制：
1缓冲液：
1×TBS:
6.06gTRIS,8.5gNaCL，先加超纯水溶解（约800ml）然后使用pH计调节pH至7.4，定容至1L。
2抗原修复液：
根据Sigma抗体说明书配制。
1×柠檬酸钠缓冲液（0.1mol/l）：
二水柠檬酸三钠2.941g；0.292gEDTA加超纯水溶解（约800ml），调节pH至6.0，定容至1L。
1×Tris/EDTA：
4.84gTris,3.72gEDTA,加超纯水溶解（约800ml）调pH至9.0,定容至1L（先加较多NaOH）。
3细胞通透液：
使用超纯水配制0.5﹪Tritonx-100，在100ml超纯水中加入0.5mlTritonx-100后轻轻搅拌，尽量不要产生气泡，直至溶解完全方可使用。
4封闭血清：
根据二抗来源选择封闭血清，一般血清来源于二抗来源形同。
血清浓度为10％,TBS配制，或者使用3﹪BSA配制10﹪封闭血清。
5抗体稀释液：
使用TBS配制3﹪BSA。
63﹪H2O2：
30﹪H2O2，超纯水配制。
7DAB显色液（试剂盒）配制：
1mlTBS中加50mlA液，50mlB液，充分混匀。
8荧光二抗的配制：
AlexaFlour488、594规格为2mg/ml,说明书建议使用浓度在2ug/ml-10ug/ml之间，所以建议稀释200-1000倍，本实验所使用浓度为5ug/ml，即稀释400倍。
二组织采集与处理
材料：
取不同时间点猪的睾丸组织观察精原干细胞的表达，新生小猪，3-5月龄,成年猪。
采集适龄猪睾丸组织，置于PBS中带回实验室，用PBS清洗若干次，将睾丸白膜去除，组织切成适宜大小，用苦味酸固定过夜，次日进行清洗（PBS）3-4次，每次30min,然后用70％酒精清洗3次，每次30min，储存于70％酒精备用。
包埋：
80％酒精--90％酒精—100％Ⅰ酒精--100％Ⅱ酒精各30min，无水乙醇：
二甲苯1:
12h，二甲苯Ⅰ，二甲苯Ⅱ依照所取组织大小确定处理时间，二甲苯：
石蜡1:
12h,石蜡Ⅰ1h,石蜡Ⅱ2h，包埋。
组织切片：
7um，37℃烤片5h。
三免疫组化（SP法，各种抗体稀释浓度附于后表）：
1脱蜡：
二甲苯Ⅰ、Ⅱ各5min。
复水：
100％乙醇Ⅰ、Ⅱ，90％乙醇,80％乙醇,70％乙醇各3min，超纯水清洗5min*3次。
2用超纯水配制0.5％的Tritonx-100,室温孵育10min，超纯水清洗3*5min。
3抗原修复：
柠檬酸钠缓冲液（0.1mol/L,pH=6）高压修复：
将玻片同修复液（1L烧杯）一起放入高压锅内，加热加压至125℃，修复5min，放气后降温至90℃时将烧杯拿出自然冷却至室温。
TBS清洗3*5min；
微波修复：
柠檬酸钠缓冲液加热煮沸，将玻片置入烧杯内，加热6min，停1min,重复3次，冷却；
煮沸修复：
Tris/EDTA（pH=9）置于1L烧杯中微波炉里加热至沸腾，水浴锅提前加热至99℃。
置入玻片修复10min.自然冷却。
TBS清洗3*5min
43％H2O2（试剂盒）孵育10min.，TBS清洗3*5min。
5封闭血清（试剂盒），封闭2h，勿洗。
6一抗稀释：
含3％BSA的TBS。
置于湿盒，4℃过夜。
7次日，取出湿盒，恢复至室温40min，TBS清洗3*5min。
8二抗（试剂盒）室温孵育30min，TBS清洗4*5min。
9辣根过氧化物酶（试剂盒）室温孵育30min，TBS清洗4*5min。
10DAB显色，用倒置显微镜严格控制显色时间，待背景染色浅，特异性染色深时，终止染色，TBS清洗2*5min。
11苏木精：
3min，清洗（流水冲一下）后，5%冰醋酸分化30秒（可短些），流水蓝化5min，脱水（70％,80％,90％,100％Ⅰ,100％Ⅱ酒精各1min），二甲苯透明1min，中性树胶封片。
四免疫荧光染色（各种抗体稀释浓度附于后表）:
1脱蜡：
二甲苯Ⅰ、Ⅱ各5min。
复水：
100％乙醇Ⅰ、Ⅱ，90％乙醇,80％乙醇,70％乙醇各3min，超纯水清洗5min*3次。
2用超纯水配制0.5％的Tritonx-100,室温孵育10min，超纯水清洗3*5min。
3抗原修复：
柠檬酸钠缓冲液（0.1mol/L,pH=6）高压修复：
将玻片同修复液（1L烧杯）一起放入高压锅内，加热加压至125℃，修复4min，放气后降温至90℃时将烧杯拿出自然冷却至室温。
TBS清洗3*5min；
微波修复：
柠檬酸钠缓冲液加热煮沸，将玻片置入烧杯内，加热6min，停1min,重复3次，冷却；
煮沸修复：
Tris/EDTA（pH=9）置于1L烧杯中微波炉里加热至沸腾，水浴锅提前加热至99℃。
置入玻片修复10min.自然冷却。
TBS清洗3*5min
4封闭血清（10％），使用TBS稀释，封闭2h，勿洗（置于湿盒）。
5一抗稀释：
用含3％BSA的TBS稀释后置于湿盒，4℃过夜。
6次日，取出湿盒，恢复室温40min，TBS清洗3*5min。
7荧光二抗：
含3％BSA的TBS稀释，37℃（提前打开烘箱），30min，避光（以后都注意），TBS清洗4*5min。
第一次使用加Tween20（0.05％）的TBS清洗，二，三，四次使用TBS，每次5min。
8DAPI：
室温10min,TBS稀释，TBS清洗一次即可。
980％甘油缓冲液封片，荧光显微镜观察。
五免疫双荧光染色（各种抗体稀释浓度附于后表）：
1脱蜡：
二甲苯Ⅰ、Ⅱ各5min。
复水：
100％乙醇Ⅰ、Ⅱ，90％乙醇,80％乙醇,70％乙醇各3min，TBS清洗。
2用超纯水配制0.5％的Tritonx-100,室温孵育10min，超纯水清洗2*5min。
3抗原修复：
柠檬酸钠缓冲液（0.1mol/L,pH=6）高压修复：
将玻片同修复液（1L烧杯）一起放入高压锅内，加热加压至125℃，修复4min，自然降温至90℃，放气，将烧杯拿出自然冷却至室温；
微波修复：
柠檬酸钠缓冲液加热煮沸，将玻片置入烧杯内，加热6min，停1min,重复3次，冷却；
煮沸修复：
Tris/EDTA（pH=9）加热至沸腾，水浴锅调至99℃.置入玻片修复10min.自然冷却。
TBS清洗3*5min
4封闭血清（10％），TBS稀释，封闭2h，勿洗。
5一抗稀释：
使用含3％BSA的TBS稀释，两种抗体混合稀释，如要配制50ulTHY1-PLZF抗体，则用50ul抗体稀释液中加1ulTHY1和1ulPLZF。
置于湿盒，4℃过夜。
6次日，取出湿盒，恢复室温40min，TBS清洗3*5min。
7荧光二抗：
含3％BSA的TBS稀释，两种抗体混合稀释，如需要400ul双荧光二抗，则在400ul抗体稀释液中分别加入1ul488和594，37℃，30min，避光，TBS清洗4*5min。
第一次使用加Tween20（0.05％）的TBS清洗，二，三，四次使用TBS，每次5min。
8DAPI：
室温10min,TBS稀释，TBS清洗一次即可。
980％甘油缓冲液封片，荧光显微镜观察。
各种抗体适合修复方法及稀释比例（猪，羊）
种属
抗体
稀释比例
（SP法）
荧光
修复液
修复方法
猪
PGP9.5（5月）
1:
1000
1:
500
柠檬酸钠缓冲液
高压
VASA（5月）
1:
400
1:
400
Tris/EDTA
煮沸
GPR125（3,5月）
1:
100
1:
50
Tris/EDTA
煮沸
THY1（5天，10天，3月）
1:
100
1:
50
Tris/EDTA
煮沸
PLZF（10天，3月）
1:
100
1:
50
Tris/EDTA
煮沸
GATA4（10天，3月）
1:
100
1:
50
柠檬酸钠缓冲液
高压
DBA（10天）
1:
100
未作
柠檬酸钠缓冲液
微波
小鼠
LIN28
1:
200
未作
柠檬酸钠缓冲液
高压
VASA
1:
400
未作
Tris/EDTA
煮沸或高压
大鼠
PGP9.5（2周）
1:
1500
1:
1000
Tris/EDTA
煮沸
注意事项：
1组织处理时，组织快不能切太小，否则不能保证切片数量；不能切太小，否则透明时间和浸蜡时间不好把握。
切片厚度以5um或7um为佳，贴片需使用多聚赖氨酸包被的玻片，展片是要把握好展片温度，一般多聚甲醛与苦味酸固定的组织所用温度不同，苦味酸大概所需温度为45℃左右，多聚甲醛为42℃左右，展片后要在37℃烘烤4-6小时。
2包埋蜡温度不宜过高，以免烫坏组织，切片时易碎，透明时间要依据组织块大小准确把握。
3脱蜡要彻底，复水后使用超纯水将酒精清洗干净，TBS缓冲液和抗原修复液的pH值要准确，否则不利于抗原抗体复合物的形成。
4抗原修复后要自然冷却，切不可立即清洗，易造成脱片，H2O2浓度不能太高，孵育时间不宜太长，否则易脱片。
5血清封闭后勿洗，加一抗前使用离心机将一抗离心，加稀释液后，用枪反复吹打，一定要将一抗混匀。
6次日将湿盒从冰箱拿出后恢复至室温，如若使用了不同抗体，清洗时要分开清洗。
7二抗孵育完后可多次清洗以减少背景，免疫组化后苏木精复染要把握好时间，以免苏木精颜色过深影响免疫组化效果，免疫荧光染色一定要避光操作，孵育时可置于恒温烘箱中，清洗时可用锡箔纸包住染色缸。
作好免疫组化染色必须注意的问题
一、为达到免疫组织化学技术的要求，组织固定越新鲜越好。
在免疫组化最后结果的判断时，常可见到均匀一片的似非特异性染色的现象，经多方研究认为，它是一种假性非特异性的染色。
因为肿瘤组织中含有的抗原较易发生扩散弥散，肿瘤细胞无限制的生长和生长过速，导致肿瘤中间部分组织血液供给困难，造成缺血坏死，坏死细胞中的抗原由于机体的作用，可以被均匀地散布于细胞与细胞间的间质，这是抗原发生弥散的一种方式。
另一种抗原弥散的方式就是，由于组织没有及时的固定所引起的。
离体的组织不及时固定，组织就会自溶，抗原就会扩散，这是一非常普通的常识，但要做好却是极不容易。
标本从外科切除到浸入固定液需要经过一段时间，在这段时间里，有的抗原就可以发生扩散。
虽然已浸入了固定液，但标本较大，固定液的量又不足，当然由于固定液的渗透需要时间，当渗入到组织之中时，中间的细胞已发生了变化，抗原也随着发生扩散，这种现象在产酶多的器官是比较明显的，如胃癌，当切除后标本较大，虽然在手术室期间已放入了固定液，但固定液要透过肌层达到胃粘膜面起码需要几个小时的时间，当固定液发挥作用时，组织已经发生变化。
因此，这了达到免疫组织化学染色的要求，对于离体的组织尽量快的进行固定，有条件的应将其剖开，早取材，早固定。
二、组织脱水必须彻底干净
组织块取材不能太大过厚，才能较好地完成脱水的过程。
如果取材太厚，在较短的时间内脱水不完全，将可引起一系列的问题，比如浸蜡不彻底，切片不好完成，切不完整。
由于先天不足，导致后来切片染色的脱落，造成染色的失败，或者由此反复操作，造成年人力物力的浪费，造成病理报告的延期发出等。
因此，对取材的要求是除了要求要有艺术性外，即平整、外观好看，还要求适中。
三、切片必须完整、均匀、平展、无邹折
应用于免疫组织化学染色的切片，对切片的质量要求较高，切片必须完整，平展、无汽泡，无邹折，这样有利在染色时的冲洗，有利于切片的牢固附贴。
如果切片不平展，免疫组化染色后，可出现染色不均匀的现象，颜色深浅不一， 不平。
如果切片有汽泡切片在烘烤时，由于汽泡的破裂影响了汽泡周围的组织，在其周围可观察到深浅不一的染色。
如果切片有邹折，免疫组化染色后，在邹折的地方有深浅不一的颜色，这是一种假阳性，容易引走混淆。
四、切片的附贴必须牢固，必须使用合适的粘贴剂。
免疫组织化学染色前的前期准备工作，就是必须对新的载玻片进行处理，新的载玻片表面看起来很干净，有人认为不需要进行任何的处理，都能够适合使用，这是一种错误的想法。
新出厂的载玻片，表面复盖着开一层油脂样的物质，如果不加以处理，对切片的附贴是极为不利的。
我们的做法是：
新的载玻片，放于玻璃清洗液中浸泡4小时甚至过夜，然后取出，经自来水彻底冲洗后，浸入酒精中达2小时以上，取出擦干备用或烘干也可。
然后再将载玻片浸入了－氨基－三乙氧基－GPR125（3,5月）1:
1001:
50Tris/EDTA煮沸
五、切片必须烘烤附贴牢固，既要经得起抗原修复时高温的作用而不使轻易脱片，又不至于破坏抗原。
应用于免疫组化染色的切片。
由于整个过程需经几个阶段的处理，如抗原修复时抗原修复液的沸腾且需持续十几分钟，PBS的反复冲洗，有的甚至于4℃冰箱中孵育达十几小时。
因此，对切片的质量要求很高，尤其是切片的附贴程度。
以往有人主张切片在60℃以下烘烤30-60分钟即可按此进行结果是切片掉片严重，切片松动率占100%。
切片究竟烘烤多长时间才合适，既不脱片和适合各项要求，又不至于破坏抗原。
几组实验［］诊断P173认为，切片在60℃的恒温干燥箱中烘烤2-5小时最为合适。
这是因为：
抗原可耐受如此的温度，病理科一般使用的石蜡，其熔点在60℃左右，组织浸蜡时，浸蜡箱中的温度，一般都调在65℃左右，组织在这样温度中要浸泡2小时以上，才能达到彻底地浸蜡。
组织中的抗原已经受了65℃的温度考验，保存下来的抗原，都已具有耐热性。
另外，经上述时间烘烤出来的切片，附贴牢固，抗原保存好，染色成功率达100%，保证了病理诊断的及时性和准确性。
特需要注意的是，不管是应用于诊断的切片还是研究用的切片，烘烤后应尽快进行染色。
如果切片切完后，迟迟不进行染色，存放于室温中或工作冰箱中，切片中的抗原将会随着时间的延长而逐渐消失，甚至出现假阴性。
原则上是新鲜切片，即行染色，染多少张切多少张，这样才能尽可能的保存表达更多的抗原。
六、切片脱蜡必须干净，否则将会影响免疫组化染色的最后结果。
蜡不溶于水，不与其它的临床使用的抗体相融合。
它只能靠特用的试剂，处理足够的时间，才能将其除去。
如果脱蜡不干净，少许蜡存留于切片上，将会引起许多弊病，如染色不均匀，阳性物时隐时现，真假难辨，背景染色增加等。
为了解决上述的问题，切片在染色前必须彻底脱蜡，目前用于脱蜡的试剂主要是二甲苯，因它脱蜡力强，脱蜡时间较短。
较受使用者的青睐。
脱蜡的时间要根据季节，室温和试剂的新鲜谋面是在不同。
如果在夏天，室温较高，脱蜡试剂也新鲜，则脱蜡时间不需很多，3-5分钟就已足够。
如果在冬天，室温较低，脱蜡试剂也较陈旧，则脱蜡时间需要延长，10-20分钟或更长。
总之，操作时应根据不同的季节，不同的室温，不同的试剂来决定，脱蜡的时间，原则上是要彻底，干净，完全地脱去切片上的蜡。
为了做到这一步，切片在脱蜡前的加温将有助于完成上述的要求。
比如：
当天切的切片，烧烤2小时后进行染色，切片带有温度进行脱蜡这将可加速脱蜡的过程，如果预先切好烤好的切片，在染色前，还必须对切片进行加温10-20分钟，然后再行脱蜡，这样脱蜡速度加快，效果魁伟更好。
七、必须彻底抑制内源性过氧化物酶的活性，才能降低背景的染色。
在各种组织中都含有很多的内源性过氧化物酶，尤其在红细胞，中性粒细胞，单核细胞嗜酸性细胞，出血的组织坏死的组织等等。
含有这种酶的各细胞和组织如果在染色前不对其进行处理和抑制，它们将会在DAB底物的显色时，与HRP一样催化底样，使之显色，使之生成与阳性物一样的黄棕色，造成混乱。
为止，在免疫组化染色前，都必须对内源性过氧化物酶进行抑制。
当然，对它们进行彻底的消除是不行的，因为抑制太厉害，对抗原也会有相同的抑制作用。
氢在抑制内源性过氧化物酶时，也要注意对抗原的保护抑制也只能对它们中的大部分在DAB显色后，显示出淡黄*色，这就足以与真正阳性物的区别。
抑制剂常用的是0.3%的H2O2，也可将其称为1%H2O2，因为市售的H2O2的浓度为30%，按其净含量则为0.3%，如果按其溶液的用量则为1%。
关于H2O2的使用，有的使用是单纯的H2O2稀释溶，有的使用是H2O2甲醇混合 物。
根据实验，认为H2O2甲醇较适合于大多数的情况，因为除了H2O2外，甲醇对各种酶，都有钝化的作用，因此H2O2甲醇的双重作用效果较好。
陈尚平等认为在多数情况中，用甲醇H2O2已经获得令人满意的结果。
八、须适当合理地使用封闭试剂
为了减少背景产生的非特异性染色，在免疫组化染色的过程中，在加入一抗孵育前，常常加入非免疫动物血清，以减少背景的染色，陈尚季等认为：
抗体是高度的电荷分子，可能与带有相应电荷的组织成分无特异性地结合（如胶原）。
由于这种非特异性结合，将导致标记的部分局部化（轭合物）和胶原的假阳性染色。
要用一种不相干的抗体居先处理，可能减少和标记的抗体无特异性结合。
以往，血清的使用有很多，如：
小牛血清，马血清，山羊血清，绵羊血清，兔血清，浓度也有很多种，如：
1%.2%.或1：
5、1：
10、和1:
20.
必须选择合适的抗体以及对作适当的保存和配制。
九、选择合适的抗体
至今为止，应用于临床的常用抗体有几十种，在这当中又可分为两种类型。
1.浓缩型抗体
根据近几年来使用的情况认为，它有许多优点，但也有许多不足之处：
①可作为各种疾病检测的常备抗体。
在各单位的常规活检诊断中，有常见的病例，也有罕见的病例，尤其是后者，有时很长时间才遇到一例，这就给抗体的应用和备用提出了更高的要求，如除了常用的抗体外，还需备用一些较为罕见病例的抗体。
这样才能解决临床的诊断问题，如临时购买，则需较长的时间，这样就会延误诊断。
实践证明：
浓缩型抗体，可作为常备检测抗体。
当购买抗体后，根据检测病例的数量，在无菌的条件下，将抗体分成小包装，然后用蜡膜封起来，于－30℃的低温冰箱中保存，临用时取出一支，用指温促其回升至室温，然后用PBS稀释即可使用，这种抗体可保存3年左右。
②成本低，价格较便宜。
它与即用型的抗体相比较，价格要便宜好多，如以某公司2002年-2003年的CK为例，浓缩型的抗体0.1ml，价格260元，该抗体可稀释为5000ml，以每张切片所需抗体为50ul计，可标记100例，每例一抗体所需2.6元，而即用型抗体1.5ml，价格150元，可标记30例，每例一抗体需5元。
③需要稀释抗体，手续较为复杂。
对于新购入的浓缩型的抗体，使用时必须将稀释为工作液，才能使用，对于从未用过的抗体，还必须实验其实际的稀释度，因为各种抗体，厂家都做了相应的稀释度的实验，但这是大概的稀释度，要使抗体真正适合于本单位的稀释度，就必须对抗体的稀释度进行实验，如1:
100.1:
75.1:
50.1:
25等，如果结果在1：
50上是最佳结果，这就是最佳的稀释点，如果在这范围内找不出最佳稀释点，则应继续实验直到找出最佳稀释点为止。
④需要配置各型号的微量加样器，以利于量取精确的抗体量。
⑤需要具备一定的英语水平，因为浓缩型的抗体多为进口试剂，其使用书都以英文为主，其中涉入抗体的来源，适应让稀释对什么组织或细胞可起反应等。
2.即用型抗体。
近几年来，免疫组化技术应用的推广，即用型抗体的应用越来越受到人们的欢迎，根据几年来的使用，认为它有许多优点和不足：
①使用方便。
对于初学者来说，它是一种最好的抗体，不管什么样的病例和切片，只要有抗体，不需要自己摸索稀释度，拿起试剂瓶一滴即可，极不方便。
②对于不具备或基本不懂免疫组化技术的人，只要按照说明书的方法使用，也能获得理想的结果。
③不需要配置多种昂贵的微量加样器。
现今的微量加样器，如为进口货，贵者多达两千多元。
而即用型抗体无需再行稀释，即买即用，无需配备其余器械。
④特别适合于基层单位。
基层单位，无需多大的投资，就能开展免疫组化的工作，这对于提高诊断的准确率，极有好处。
⑤价格较浓缩型抗体贵。
⑥即用型抗体不可作为常备贮存抗体。
即用型抗体，一般有效期为一年。
如果用量大的单位，对于3ml一个包装的抗体，一年需要用几支，这对抗体来说，不会造成浪费。
但如果为较小的单位，一年中标记的病例较少，购买抗体时也尽量选小包装的抗体，如1.5ml。
如果碰上罕见的病例，有时一年也标记不了几例，这样就应采用浓缩的了。
即用型的抗体，有效期为一年，但真正购买到的抗体使用期就不可能为一年，因为抗体从生产商到销售商的手里，需要一定的时间，如果运气好的话，你购买到的抗体，是刚交到销售商的手里，那么，使用的时间可能长些，但如果在销售商的手中滞留了一段时间，抗体的有效使用期就可能不会太长，五个月、六个月或者三个月。
如果在有效的时间内不能使用完。
稍为超过一些时间还可以，如果时间过长，就应当丢弃，因为会影响标记的质量。
有人抱怨，刚买的抗体标记很好，后来就渐渐不好了。
这是因为随着时间的延长，抗体的活性会逐渐失去生物活性，导致了标记质量的下降。
（2）抗体的适应症。
在众多的抗体中，按它们的实际使用范围，把它们分为两个类：
1.适合于冰冻切片，涂片，细胞培养片。
2.适合于石蜡切片，冰冻切片，涂片和细胞培养片。
（3）选择合适的单克隆或多克隆抗体。
抗体除了分为上述的两个类外，从其克隆的高度讲，也有单克隆和多克隆之分。
1.单克隆抗体，在目前临床常用的抗体当中，大部分都是单克隆抗体。
这要归功于生物技术的不断提高。
在早些时候，应用于临床的抗体，大多数为多克隆抗体。
2.多克隆抗体，在临床应用的抗体中，还有少部分的抗体为多克隆抗体。
（4）抗体的加入。
这看似很简单的问题，如果处理不好也可导致不同的结果，如果应用自动免疫组织化学染色仪，将程序输入即可，如为手工操作，就必须注意以下的问题：
1.当PBS冲洗完毕后，在加入抗体，如一抗，二抗或三抗。
必须将存留于切片上的多余的PBS摔干，但不能让切片干涸，切片干涸，往往可产生非特异性染色，切片上PBS存留过多，将会稀释加入的抗体，影响加入抗体的浓度，同时也将影响最后的结果，如假阴性等。
2.加入的抗体以一滴为佳。
当擦干组织块周边多余的PBS后，切片保持着一定的湿润度，此时加入另外的抗体为最佳时候，滴入抗体以一滴50ul为好，加入后，轻微地摇匀地覆盖于切片上，使最后的结果稳定均衡，不至于有的地方有反应，有的地方无反应。
3.切片没擦好将会影响加入抗体的质量，切片没冲洗干净，没擦试好，当加入抗体后，它可缩于切片的一边，此时你为了使加入的抗体能够完全地覆盖整个切片，便会使劲地加入抗体，此时的结果是，抗体依然滑向一边，或者完全露出，这不光没达到目的，还浪费抗体，正确的做法就是彻底地用PBS冲洗，摔干切片擦干切片周边的PBS，再滴入一滴抗体轻轻摇匀即可。
（5）选择合适的孵育时间。
第一抗体的孵育时间，有较多的使用范围，应用于临床检测抗体的孵育时间。
一般室温下孵育在30-60分钟，120分钟，对于研究性质的抗体孵育时间，也可按照上述的时间，但也有人提出于4℃冰箱中过夜孵育，根据我们的经验一般不主张于4℃冰箱中过夜，原因是：
1.长时间的孵育可以使一些非特异性的物质沉淀下来，或者被吸附，造成背景的染色。
2.目前销售的抗体，纯度较高，特异性较强，不需要长时间的孵育，也能够结合得很好。
3.长时间的孵育，较容易引起切片的脱落，造成染色的失败。
4.长时间的孵育，不利于临床病理报告的发出。
十、连接抗体的选用必须正确，否则可造成假阴性的现象。
免疫组化染色方法较多，如ABC法，SP法和EV二步法等，如果使用的是SP法，或者ABC法，这时就必须要仔细地选择好连接抗体，第一抗体有单克和多克隆炎分，连接抗体则要根据选用的抗体来进行，例如：
第一抗体选用的是单克隆鼠抗人**抗体，连接抗体也要选择相应的免抗鼠IgG，这样才能连接上（目前生产厂家已生产出混合型抗体，即既适合于单克隆抗体，也适合于多克隆抗体
升级会员 