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《生物技术一》实验教案

蚌埠医学院

《生物技术一》实验教案

 

2010/2011学年第二学期

 

选用教材医用生物化学实验(自编,3版)

生物化学实验(上海交通大学出版社)

授课教师夏俊

职称教授

授课专业2009级生物科学本科

教研室检验系生物化学与分子生物学

 

蚌埠医学院教案

2010-2011年度第二学期

教师姓名:

职称:

系(部):

生物科学系教研室:

实验中心

授课对象:

08生物本科专业生物班级授课时间:

2011年3月4日

课程

名称

中文

实验动物技术1

选用教材

现代生物学技术与探索性实验

授课

时数

5

章节及

内容

实验动物技术

授课

地点

406

教学目的

与要求

目的要求

1、了解实验动物选取、饲喂和处理方法(大、小鼠的日常饲养管理)

2、了解实验动物的编号和分组原则

3、掌握动物的抓取与保定技术

4、掌握实验动物常用的给药技术

 

教学重点

与难点

重点:

实验动物的随机分组方法。

难点

实验动物的抓取和保定技术

实验动物常用的给药技术

教学方法

讲述法、讨论法、示教法

教具使用

随机数字表、实验动物

教学过程及时间分配

主要教学内容

教学方法

一、了解实验动物选取、饲喂和处理方法(大、小鼠的日常饲养管理)

(一)实验动物的选取

(二)实验动物的日常饲喂与处理方法--大小鼠的日常饲养管理

二、实验动物编号和分组原则

(一)实验动物的编号

实验动物的分组

(一)、分组原则

随机分组

(二)建立对照组

自身对照组

平行对照组

三、实验动物的抓取与固定技术

(一)实验动物的抓取固定方法

1.小鼠抓取固定方法

2.大鼠抓取固定方法

3.兔的抓取固定方法

四、实验动物给药途径及方法

(1)皮下注射

(2)皮内注射

(3)腹腔注射

(4)静脉注射

a.兔

b.小白鼠和大白鼠

学生操作

1、大鼠和兔子的随机分组操作。

2、小鼠、大鼠、兔子的抓取和固定,要求每位同学熟练掌握

3、实验动物给药:

灭菌生理盐水

5分钟

讲述法

讲述法

10分钟

15分钟

讲述法

示教法

10分钟

讲述法

巡回指导

巡回指导

35分钟

示教

巡回指导

35分钟

教学过程及时间分配

主要教学内容

教学方法

30分钟

小鼠(每人1只):

皮下注射0.1ml、腹腔注射0.2ml、尾部静脉注射0.2ml

大鼠(每组1只):

皮下注射0.5ml、腹腔注射2ml.

兔子(每组1只):

耳缘静脉注射0.5ml。

巡回指导

30分钟

30分钟

布置作业或思考题

参考书籍与常用网址

 

课后小结

 

蚌埠医学院教案

2010-2011年度第二学期

教师姓名:

职称:

系(部):

生物科学系教研室:

实验中心

授课对象:

08生物本科专业生物班级授课时间:

2011年3月4日

课程

名称

中文

实验动物技术2

选用教材

现代生物学技术与探索性实验

授课

时数

5

章节及

内容

实验动物技术

授课

地点

406

教学目的

与要求

目的要求

1、掌握实验动物的麻醉方法

2、掌握实验动物的采血方法

3、掌握实验动物的处死方法

 

教学重点

与难点

重点:

1、实验动物的麻醉方法

2、实验动物的采血方法

3、实验动物的处死方法

教学方法

讲述法、示教法

教具使用

实验动物,大小鼠固定器,家兔固定器

 

教学过程及时间分配

主要教学内容

教学方法

一、掌握实验动物的麻醉方法

1.麻醉方法

(1)全身麻醉

①吸入麻醉法

②注射麻醉法

(2)动物局部麻醉方法

2.常用的麻醉药

(1)常用局部麻醉剂

(2)常用全身麻醉剂

3.使用全身麻醉剂的注意事项

二、掌握实验动物的采血方法

1.注意事项

2.常用实验动物的采血方法

三、掌握实验动物的处死方法

1.大鼠和小鼠的处死方法

2.狗、兔、豚鼠的处死方法

学生操作

1、小鼠、大鼠和家兔的麻醉方法

小鼠吸入乙醚麻醉

大鼠、家兔先乙醚诱导麻醉再注射20%的氨基甲酸乙酯麻醉

2、小鼠、大鼠、家兔的采血方法

 

10分钟

讲述法

10分钟

讲述法

5分钟

讲述法

讲述法

5分钟

示教法

10分钟

讲述法

10分钟

示教法

10分钟

巡回指导

45分钟

45分钟

巡回指导

教学过程及时间分配

主要教学内容

教学方法

小鼠断尾采血和尾静脉采血;大鼠尾静脉采血;家兔耳静脉采血、耳动脉采血或心脏采血

3、小鼠、大鼠和家兔的处死方法

小鼠颈椎脱臼法、击打法或吸入乙醚麻醉处死;大鼠颈椎脱臼法处死;家兔空气栓塞法或急性失血法处死

小鼠每人一只;大鼠每组一只;家兔每组一只

课堂小结

40分钟

巡回指导

10分钟

布置作业或思考题

参考书籍与常用网址

 

课后小结

 

蚌埠医学院教案

2010-2011年度第二学期

教师姓名:

职称:

系(部):

生物科学系教研室:

实验中心

授课对象:

08生物本科专业生物班级授课时间:

2011年3月4日

课程

名称

中文

现代生物学技术

选用教材

现代生物学技术与探索性实验

授课

时数

5学时

章节及

内容

实验二:

胎鼠细胞原代培养

授课

地点

教学目的

与要求

1、熟悉无菌操作技术,强化无菌操作概念,并为细胞传代培养、细胞纯

化和冷冻保存等实验鉴定基础。

2、理解并掌握细胞原代培养原理。

3、掌握独立进行细胞原代培养操作方法与过程。

以小鼠胎儿为材料,学

习细胞原代培养中常用组织块培养法和消化培养法。

教学重点

与难点

重点

无菌操作技术,原代培养的操作过程。

掌握组织取材、剪切、细胞分离、

混匀、接种和器械使用等操作要领。

难点

掌握动物细胞培养中的无菌操作技术细节和注意事项。

教学方法

讲授法、演示法、设问启发法、讨论法、图表法。

教具使用

多媒体课件、激光笔等

教学过程及时间分配

主要教学内容

教学方法

复习旧课:

(略)

2~3分钟

新课导言:

细胞培养概念和意义

细胞培养是生物学和医学研究中最常用的手段之一。

分为原代培养和传代培养两种。

原代培养是直接从生物

体获取组织或器官的一部分进行培养。

由于培养的细胞

刚刚从活体组织分离出来,故更接近于生物体内的生活

状态。

这一方法可为研究生物体细胞生长,代谢,繁殖

提供有力的手段,同时也为以后传代培养创造条件。

举例:

细胞各种生理活动如增殖的研究

讲授新课:

实验九:

胎鼠细胞原代培养

2分钟

一、实验目的要求

讲授

1、以小鼠胎儿为材料,学习细胞原代培养中常用的组织

块培养法和消化培养法;

2、掌握组织取材、剪切、细胞分离、混匀、接种和器械

使用等操作要领;

3、掌握动物细胞培养中的无菌操作技术,并为下一步细

胞传代培养、细胞纯化和冷冻保存等实验提供材料。

二、主要器材与试剂

培养箱(调整至37℃),培养瓶、平皿、吸管、移液管、

手术器械、血球计数板、离心机、水浴箱(37℃)

10分钟

三、实验原理

(一)细胞培养的分类

启发式提问

细胞培养是生物学和医学研究中最常用的手段之一。

分为原代培养和传代培养两种。

(二)细胞原代培养的原理

原代培养:

是直接从生物体获取的细胞、组织或器官的

一部分进行培养;由于刚从活体组织分离出来,故更接

近于生物体内的生活状态。

这一方法可为研究生物体细

胞生长,代谢,繁殖提供有力的手段,同时也为以后传

代培养创造条件。

(三)胰酶消化法原理

将动物机体的各种组织从机体中取出,经各种酶(常

用胰蛋白酶)、螯合剂(常用EDTA)或机械方法处理,

分散成单细胞,置合适的培养基中培养,使细胞得以生

存、生长和繁殖,这一过程称原代培养。

25分钟

四、内容与操作

(一)组织块直接培养法

1、将孕鼠拉颈椎致死,取胎鼠带入超净台内。

2、超净台内,将孕鼠子宫剪开取胚胎。

3、用小镊子撕破胎膜,取出胎鼠,用PBS洗涤3次。

4、将胚胎转移到另一装有PBS的平皿中,用手术剪将其

剪成小块(1mm3),再用PBS液洗三次。

5、将组织块转移到培养瓶,贴附瓶壁。

翻转此壁朝上,

将培养液加至瓶中,培养液勿接触组织块。

6、37℃静置3-5小时,轻轻翻转培养瓶,使组织浸入培

养液中(勿使组织漂起),37℃继续培养。

(二)、酶消化分离细胞培养法

原理:

在组织块培养法基础上,经各种酶(常用胰蛋白

酶与胶原酶)处理,分散成单细胞,置合适的培养基中

培养。

1、将孕鼠拉颈椎致死,取胎鼠带入超净台内。

2、超净台内,将孕鼠子宫剪开取胚胎。

3、用小镊子撕破胎膜,取出胎鼠,用PBS洗涤3次。

4、将胚胎转移到另一装有PBS的平皿中,用手术剪将其

剪成小块(1mm3),再用PBS液洗三次。

5、视组织块量加入5-6倍0.25%胰酶液,37℃中消化

20-40分钟,每隔5分钟振荡一次,使细胞分离。

6、加入3-5ml培养液以终止胰酶消化作用。

7、静置5-10分钟,使未分散的组织块下沉,取悬液加入

到离心管中。

8、1000rpm,离心10分钟,弃上清液。

9、加入培养液l—2ml(视细胞量),血球计数板计数。

10、将细胞调整到5×105/ml左右,转移至25ml细胞培

养瓶中,37℃下培养。

80分钟

(三)操作

演示

学生分组,进入无菌操作室具体操作。

教师巡视指导

五注意事项

1、操作前,提前将操作间和超净工作台内紫外灯打开,

消毒杀菌30分钟。

2、进操作间前要洗手,进入超净台后手要用75%酒精或

0.2%新洁尔灭擦试。

试剂等瓶口也要擦试。

3、点燃酒精灯,操作在火焰附近进行。

4、手不能在开盖的消毒物品上方活动。

5、凡在超净台外操作的步骤,各器皿需用盖子或橡皮塞,

以防止细菌落入。

六、思考题

1、比较组织块培养法和消化培养法获得原代培养物的效

果和优缺点。

2、观察原代培养细胞中的细胞类型,并根据以往的知识

初步分析哪类细胞属于成纤维样细胞,哪类细胞属于上

皮样细胞

布置作业或思考题

1、比较组织块培养法和消化培养法获得原代培养物的效果和优缺点。

2、观察原代培养细胞中的细胞类型,并根据以往的知识初步分析哪类细胞属于成纤维样细胞,哪类细胞属于上皮样细胞。

 

参考书籍与常用网址

1、章静波,《医学细胞生物学实验指导》,人民卫生出版社,2007.6

2、翟中和,《细胞生物学》(第三版),高等教育出版社,2007.8

3、生物谷

 

课后小结

 

蚌埠医学院教案

2010-2011年度第二学期

教师姓名:

职称:

系(部):

生物科学系教研室:

实验中心

授课对象:

08生物本科专业生物班级授课时间:

2011年3月4日

课程

名称

中文

选用教材

现代生物学技术与探索性实验

授课

时数

5

章节及

内容

实验三人类外周血淋巴细胞染色体标本的制备

授课

地点

F座层流室及实验室

教学目的

与要求

要求学生学会人类外周血淋巴细胞染色体的制备方法

教学重点

与难点

重点:

人类外周血淋巴细胞染色体的制备方法

难点:

实验原理

教学方法

讲述法、板书

教具使用

教案、讲稿、粉笔

教学过程及时间分配

主要教学内容

教学方法

【导言】

2分钟

 

2分钟

 

5分钟

 

5分钟

 

15分钟

 

90分钟

1分钟

目前染色体的研究几乎深入到生物学科的每一个领域,因为染色体是把细胞生物学与分子生物学联系起来的重要桥梁,所以在遗传学研究中工者在医学研究中被广泛重视及应用。

今天我们就来学习如何制备人类的染色体标本。

【板书】实验三人类外周血淋巴细胞染色体标本的制备

【实验目的】

初步掌握人类外周血细胞染色体标本的制备方法。

【实验原理】

1)低渗处理分裂细胞可使CS展开;

2)PHA可使淋巴细胞转化为淋巴母细胞,并进行mitosis;

3)秋水仙素可使分裂的细胞停止在中期;

4)标本的空气干燥法使细胞和CS展平。

【器材及药品】

1.5ml无菌注射器(7号针头),培养瓶、离心管、吸管、预冷载玻片等。

2.超净工作台,恒温培养箱,天平,离心机、显微镜等。

3.试剂:

1)RPMI-1640

2)小牛血清(BSA)

3)植物血凝素(PHA)

4)肝素钠(肝素)

5)抗菌素:

青霉素100U/ml、链霉素100U/ml

6)秋水仙素(秋水仙碱)

7)低渗液:

0.075MKCl

8)Carnoy固定液:

甲醇∶冰HAC(3∶l),现配现用。

9)Giemsa染色液:

1份原液和9份PBS,现配现用。

10)磷酸缓冲液(PBS):

1/15MNa2HPO4、1/15MKH2PO4等体积混和。

【操作步骤】

1.采血 1~2ml

2.接种 0.2~0.3ml

3.恒温培养 37℃ 72h 终止前2~4h 秋水仙素一滴

4.收集细胞 1000rpm 8~10min 弃上清

5.低渗处理 37℃低渗液6~8ml 细胞打匀 37℃水浴低渗25~30min

6.预固定 Carnoy固定液1ml 细胞打匀 1000rpm 8~10min

7.第一次固定 弃上清 固定液6~8ml 细胞打匀 静置15~20min 1000rpm 8~10min

8.第二次固定 重复上一步操作

9.制细胞悬液 弃上清 留适量固定液 0.5~1ml

10.滴片 Slide冷冻 2~3滴 轻吹散 过火

11.染色 Giemsa染液染色10~15min 细水洗去多余染液 晾干

12.镜检 低倍镜 油镜

五【学生操作】

【作业】

1.将分散良好的标本观察人类染色体的形态、结构特点。

讲述法

 

讲述法

布置作业或思考题

1为了获得较好的分裂相供以后核型分析,在实验操作过程中应注意那些问题?

参考书籍与常用网址

1《遗传学》(第二版).,刘祖洞

2《细胞生物学与医学遗传学实验指南》蔡绍京第二军医大学出版社

课后小结

1总体教学效果较好,讲解实验过程仔细并强调注意事项,使学生较好的掌握了实验原理和步骤。

2要进一步锻炼学生的动手能力,特别是关于无菌操作的过程和注意事项。

 

蚌埠医学院教案

2010-2011年度第二学期

教师姓名:

职称:

系(部):

生物科学系教研室:

实验中心

授课对象:

08生物本科专业生物班级授课时间:

2011年3月4日

课程

名称

中文

选用教材

现代生物学技术与探索性实验

授课

时数

5

章节及

内容

实验三人类染色体核型分析

授课

地点

F座实验室

教学目的与要求:

1、掌握核型分析的基本过程&方法

2、掌握核型的书写

3、初步掌握镜下人类非显带核型分析方法

教学重点与难点:

重点:

1、核型分析的基本过程和方法

2、镜下人类非显带染色体核型分析方法

难点:

镜下人类非显带染色体核型分析方法

教学方法:

设问启发讲述演示

教具使用:

黑板粉笔&挂图

教学过程及时间分配

主要教学内容

教学方法

【复习理论课】

5分钟

【新课导入】

3分钟

 

【讲授新课】

2分钟

10分钟

 

20分钟

 

50分钟

 

20分钟

10分钟

复习人类染色体相关内容,人类染色体的结构,数目及其分组情况。

导言:

当人类染色体异常时,就会导致染色体疾病的发生,在临床上我们通常通过人类外周血细胞制的染色体标本来观察,那么我们如何观察和判断人类染色体的核型呢?

【板书】实验一人类染色体核型分析

一实验目的

二实验原理

1染色体核型

2核型分析

3核型表达式

4丹佛体制

三实验步骤

1染色体数目分析

2形态结构分析

3核型照片剪贴

4染色体测量

四学生动手操作

巡视指导

五结果观察并绘图

六总结&讨论

七布置预习实验二

 

提问

 

设问

启发

 

讲述

 

演示讲述

 

示教

启发

布置作业或思考题

1、绘制人类非显带染色体快速线条图

2、正常人非显带核型照片剪贴

参考书籍与常用网址

1.细胞生物学与医学遗传学实验指南蔡绍京第二军医大学出版社,2002

2.医学遗传学原理孙开来译科学出版社,2001

网站:

1、www.ncbi.nlm.nih,gov/dmim

2、www.sanger,ac.uls

课后小结

 

蚌埠医学院教案

2010-2011年度第二学期

教师姓名:

职称:

系(部):

生物科学系教研室:

实验中心

授课对象:

08生物本科专业生物班级授课时间:

2011年3月4日

课程

名称

中文

探索性实验

选用教材

现代生物学技术与探索性实验

授课

时数

5

章节及

内容

实验四荧光原位杂交

授课

地点

教学目的

与要求

【目的与要求】

1.通过实验了解常用荧光原位杂交技术的种类和基本原理;

2.初步掌握原位杂交技术的操作方法和步骤;

3.了解荧光原位杂交方法的应用。

教学重点

与难点

教学重点、难点:

初步掌握原位杂交技术的操作方法和步骤;

教学方法

讲述,示教等

教具使用

 

教学过程和时间分配

主要教学内容

教学方法

一、荧光原位杂交技术(FluorescenceinsituhybridizationFISH)是近几年来发展起来的一项新技术,它是基于Southernblot原理,在同位素标记探针进行原位杂交基础上发展起来的。

二、FISH技术原理与方法

三、FISH探针

(一)、FISH探针的标记 

(二)FISH的探针类型

四、内容与操作

布置作业或思考题

(1)通过实验总结荧光原位杂交实验的技术关键。

(2)实验中会不会出现假阳性,为什么?

 

参考书与常用网址

王延华,分子杂交理论与技术(第2版)科学出版社,2009年,北京。

贝蒂(BeattyBarbara)(作者),王瑛(译者),张诗武(译者),荧光原位杂交技术,天津科技翻译出版公司;第1版(2003年)

课后小结

 

蚌埠医学院教案

2010-2011年度第二学期

教师姓名:

职称:

系(部):

生物科学系教研室:

实验中心

授课对象:

08生物本科专业生物班级授课时间:

2011年3月4日

课程

名称

中文

探索性实验课程

选用

教材

现代生物学技术与探索性实验

授课

时数

5学时

英文

章节

内容

组织切片技术

-----HE染色

授课

地点

教学目的

与要求

1、了解组织石蜡切片法的原理与整个过程。

2、了解组织切片HE染色的原理与整个过程步骤。

3、初步掌撑石蜡切片技术。

4、初步掌握HE染色技术。

5、了解组织切片的方法。

教学重点

与难点

【重点】:

1石蜡切片技术与HE染色的原理。

2石蜡切片技术的技巧掌握。

【难点】:

石蜡切片技术的技巧掌握。

教学方法

讲授、演示、示教、讨论、总结。

主要词汇

•取材、固定、脱水、透明、浸蜡、

•包埋、石蜡切片、水化、HE染色。

教具使用

石蜡切片机、水浴锅、显微镜、多媒体教学设备等。

 

教学过程及时间分配

主要教学内容

教学方法

新课导入

5分钟

讲授新课

10分钟

 

20分钟

 

设问:

什么方法能够看到组织的细微结构,导入石蜡切片的概念。

讲述石蜡切片的应用范围。

实验三石蜡切片与HE染色技术

一、实验目的要求

强调需要初步掌握石蜡切片与HE染色技术。

二、主要器材与试剂

三、实验原理

细胞核内的染色质主要是脱氧核糖核酸(DNA),DNA的双螺旋结构中,两条链上的磷酸基向外,带负电荷,呈酸性,很容易与带正电荷的苏木精(硷性染料)以离子键或氢键结合而染色。

苏木精在碱性染料中呈蓝色,所以细胞核被染成蓝色。

细胞浆内主要成分是蛋白质,在染液中加入醋酸使胞浆带正电荷(阳离子),就可被带负电荷(阴离子)的染料染色。

伊红是一种化学合成的酸性染料,在水中离解成带负电荷的阴离子,与蛋白质的氨基正电荷(阳离子)结合而使细胞浆染色,细胞浆、红细胞、肌肉、结缔组织、嗜伊红颗粒等被染成不同程度的红色或粉红色,与蓝色的细胞核形成鲜明的对比。

伊红是细胞浆的良好染料。

四、内容与操作

取材、材料越新鲜越好,一般不超过死后24小时。

活体应选择病变部与可疑病变部切取,切取时要由表及里,有浅入深并包括周围正常组织一部分。

切取组织块大小,以1.5×1.5×0.3厘米为宜,最厚不宜超过0.5厘米。

组织块病变一面应平整光滑,另一面可不平整,以便包埋时辨认。

特殊材料应根据器官的结构特点切取。

管状,囊状和皮肤组织应注意垂直切取(横切)。

带有薄膜的组织,要防止切时薄膜分离和脱落。

启发

 

PPT课件讲授

 

PPT课件讲授

 

教学过程及时间分配

主要教学内容

教学方法

 

80分钟

80分钟

 

30分钟

做好标记。

固定、固定的目的是迅速将组织细

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