11常用实验动物的给药途径和方法.docx

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11常用实验动物的给药途径和方法

经常运用试验动物的给药门路和办法

在动物试验中,为了不雅察药物对机体功效.代谢及形态的变更,常需将药物注入动物体内.因为试验目标.动物种类.药物剂型不合,给药门路和办法也多种多样.

一　经口给药法

（一）灌胃法

此法给药剂量精确,是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种经常运用给药办法.

1.白鼠灌胃法：

抓起小鼠,以左手拇指.食指固定头部,小指.无名指和掌心夹注尾巴,使腹部朝上,颈部拉直,右手持灌胃器,将灌胃针从鼠的吵嘴拔出口腔,从舌背沿上腭拔出食道.灌胃量0.2～0.5ml/10g.

胃管可用合适口径的硬质塑料管或磨去针头的8号打针针头弯成恰当的弧度制成.

留意,操纵时不要用力猛插,以免插破食道或误拔出器官造成动物逝世亡.

2.白鼠灌胃法：

左手戴上棉手套,用左手拇指和食指将大鼠头部固定,将大鼠

灌胃器沿腭后壁慢慢拔出食道.灌胃针拔出时应无阻力,若有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出,从新再插.灌胃器由打针器和特别的灌胃针组成.灌胃量10～20ml/kg

3兔.犬等:

灌胃一般要借助于启齿器.灌胃管进行.先将动物固定,再将启齿器固定于高低门齿之间,然后将灌胃管（经常运用导尿管代替）从启齿器的小孔拔出动物口中,沿咽后壁而进入食道.拔出后应检讨灌胃管是否确切拔出食道.可将灌胃管外启齿放入盛水的烧杯中,若无气泡产生,标明灌胃管被精确拔出胃中,未误入气管.此时将打针器与灌胃管相连,注入药液.

4.猪的胃内灌注法：

给猪下鼻饲管较艰苦,因猪的鼻翼与上唇结合形成吻突,鼻腔内高低鼻夹与鼻中隔通道极窄,只能经由过程F10－12号的导尿管,F14号以上的导尿管不克不及拔出,故一般均给猪采取经口入胃的灌胃办法.具体办法是,预先做好一矩形小木块,中央有一洞,让小猪咬住,将其固定,然后再由此洞下胃管.此种操纵较为轻便.

5.鸟类：

包含鸽.鸡等,经口灌胃给药,可由助手将其身材用毛巾裹住固定好.试验者用左手将动物向后拉,使其颈部竖直,用左拇指和食指将动物嘴撬开,其他三只手指固定好动物头部,右手取带有灌胃针头的打针器,将灌胃针头由动物舌后拔出食管.不要象其它动物灌胃时插的太深,如动物不挣扎,插针头又很顺遂,即可将药液经口或食管上端罐入胃内.罐入速度要慢.

（二）口吃法

口服给药是把药物混入饲料或溶于饮水中让动物自由摄取.此法长处是简略便利,缺陷是剂量不克不及包管精确,且动物个别间服药量差别较大.大动物在赐与片剂.丸剂.胶囊剂时,可将药物用镊子或手指送到舌根部,敏捷关杜口腔,将头部稍稍举高,便其天然吞咽.

二　打针给药法

打针给药剂量精确.感化快,是动物试验中经常运用的给药办法,给药时应留意针头的选择（鼠类：

4～5号,兔.猫.犬.猪.猴：

6～8号）.

（一）皮下打针法

打针一般拔取皮下组织松散的部位,大鼠.小鼠和豚鼠可在颈后肩肿间.腹部两侧作皮下打针;家兔可在背部或耳根部作皮下打针;猫.犬则在大腿外侧作皮下打针.以小白鼠为例,将小白鼠放在笼盒盖上,用左手小指和无名指捏住鼠尾,轻轻向后拉,用拇指和食指捏起背部皮肤,再用右手持打针器,右手将打针器的针头程度刺入背部皮下.针头可用5号针头.推送药液使打针部位隆起.拔针时,以手指捏住针刺部位,可防止药液外漏.

打针量：

大鼠为1ml/100g.小鼠为0.1～0.3ml/10g.

鸟类皮下打针平日拔取翼下部位,可打针0.3ml～0.5ml药液.鸽类皮肤弹性差,打针液有时从针口流出.

（二）皮内打针法

固定动物的办法和打针部位与皮下雷同.将打针部位脱毛.消毒,用左手拇指和食指压住皮肤并便之绷紧,在两指之间,用皮试针头紧贴皮肤表层刺入皮内,然后向上挑起并再稍刺入,当针头不克不及阁下摆动时,即标明针头在皮内,回抽无回流后,即可迟缓打针,皮肤概况消失白色桔皮样隆起,若隆起可保持一准时光,则证实药液确切打针在皮内.打针量：

小鼠为0.1ml/次/穿刺部位.

（三）肌肉打针法

肌肉打针一般选肌肉蓬勃,无大血管经由过程的部位.大鼠.小鼠.豚鼠可打针大腿外侧肌肉;家兔可在腰椎旁的肌肉.臀部或股部肌肉打针;犬.猴等大型动物选臂部打针.打针时针头宜垂直敏捷刺入肌肉,回抽针栓如无回血,即可打针.

小鼠：

可二人合作,一人一手抓住小鼠头部皮肤,另一手抓住尾巴.另一人取连有4号针头的打针器,将针头刺入后腿外侧肌肉.打针量：

不超出0.1ml.

也可一人操纵,办法是左手单手掌握小鼠,并见将小鼠右脚趾拉放于左正面,用左手无名指压住.将针头刺入右腿外侧肌肉.

家兔：

将家兔用小动物手术台固定,打针部位可选择大腿肌肉.例如家兔股四头肌打针法：

在家兔腿部两侧四头肌部位皮肤,用2%碘酒消毒,再用75%酒精擦去碘质,分离在股四头肌部位打针药液1ml和2ml,作药物局部刺激性试验.

鸟类：

禽鸟类肌肉打针常拔取胸肌或腓肠肌肌肉打针,办法同大.小鼠.

（四）腹腔打针法

给大鼠.小鼠进行腹腔打针时,以左手固定动物,便腹部向上,为防止伤及内脏,应尽量便动物头处于低位,便内脏移向上腹,右手持连有5号针头的打针器从下腹两侧向头部偏向刺入,掌握针头与腹部的角度不宜太小,不然易误入皮下.针头亦不宜刺入太深或太近上腹部,以防止毁伤内脏.将打针器沿45°角斜向穿过腹肌进入腹腔,此时有失?

感,回抽无回血或尿液,即可注入药液.

兔.犬等动物腹腔打针时,可由助手固定动物,便其腹部朝上,试验者即可进行操纵.其地位:

家兔下腹部近腹中线阁下两侧lcm处,犬脐后腹中线两侧边1～2cm处进行腹腔打针.

（五）静脉打针法

1． 小鼠：

常采取尾静脉打针.打针时,先将小鼠固定在吐露尾部的固定器内,尾

2． 大鼠:

将小鼠固定在吐露尾部的固定器内,露出尾巴,用10ml试管盛45℃～50

℃的温水浸润1～2分钟或用75％酒精棉球重复擦拭使血管扩大,并使表皮角质软化,可明显见到三根暗红色的尾静脉.选择较明显的一条,在尾下1/4处,以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧,用中指从下面托起鼠尾,右手持打针器,使针头尽量采纳与尾部平行的角度（小于30度）进针,刺入,针头在尾静脉内平行推动少许,左手的三指捏住尾巴,并连针头和鼠尾一路捏住,以防大鼠运动将针头脱出.注入药液,如无阻力,暗示针头己进入静脉.打针后把尾部向打针侧曲折,或拔针后随即以干棉球按住打针部位以止血.

留意：

大小鼠尾静脉打针部位应尽量选在鼠尾下1/3处,此处皮薄,血管较易注入,经常运用鼠尾阁下两侧两根尾静脉,因其地位较固定,轻易注入.背侧尾静脉因为其地位轻易动,固一般罕用.腹正面是动脉,不采取作静脉打针.

大鼠舌下静脉打针：

将大鼠用40mg/kg戊巴比妥钠腹腔打针法麻醉,用鼠板固定大鼠,当大鼠进入麻醉状况后,用止血钳将大鼠舌头稍微拉出,露出舌下正中小静脉,用左手持止血钳固定舌尖部,右手持连有4号针头的打针器,在舌下静脉近中部向舌头基底部偏向进针,刺入舌下静脉血管,使针头与血管平行.慢慢向前推动,当进针顺遂时,暗示针头已进入舌下静脉,可以慢慢推注药液.打针完毕将针头抽出,用干棉球榨取打针部位止血.   

3． 家兔:

一般采取耳缘静脉打针.打针时先将家兔用固定盒固定,拔去打针部位的

毛,用酒精棉球涂擦耳缘静脉,并用手指弹动或轻轻揉擦兔耳,使静脉充血,再涂上一薄层凡士林,此时可清晰见到充血的耳缘静脉,然后用左手拇指和食指压住耳根端,待静脉明显充盈后,右手取连有41/2号针头的打针器,针头从接近耳尖部刺入静脉,顺血管平行偏向深刻1cm,放松对耳根处血管的榨取,左手拇指和食指,移至针头刺入部位,将针头和兔耳固定,然后向外略抽一下打针器,若有血液回流,即可注入药液.或当针头拔出血管后不必回抽,针头在血管推动顺遂,捎推打针液,即能天然注入,皮下不起液泡,即证实药液注进血管.打针后,拔出针头,用纱布或脱脂棉榨取止血.

留意：

（1）如打针处组织变白,变厚,或打针时推注阻力大,暗示针头未拔出血管,应

拔出针头重插.兔耳中央的是动脉,兔耳内缘的静脉因毛多皮厚,故不宜作静脉打针用.

（2）打针针头的号码代表针头内径的粗细.打针部位的组织坚韧宜用粗针头,以免曲折.折断;如组织优柔或血管渺小,宜用细针头,以免毁伤组织.

4． 犬:

后肢外侧小隐静脉打针法：

小隐静脉在后肢胫手下1/3的外正面浅表皮下,由前侧向后走向.将狗固定侧卧,把打针部位毛剪去,先用碘酒,后用酒精擦抹消毒皮肤.助手用手紧握股部,榨取血管,使静脉不回流,此时可见到充血的小隐静脉,右手持连有51/2号或5号的打针器,将针头向血管旁皮下先刺入,尔后与血管平谋杀入静脉.如进针顺遂,回抽针栓有回血,放松对静脉近端的榨取,将针头顺血管再刺进稍许.然后一手固定针头,一手将药液徐徐注入静脉.留意要很好固定静脉,因为静脉只隔一层皮肤,浅而易滑动,打针时针头不成刺入过深,偏向必定要与血管平行.

前肢内侧头静脉打针法：

前肢内侧头静脉在前肢内正面皮下,靠前肢内侧外缘走向,比后肢外侧小隐静脉还粗一些,而血管比较轻易固定.是以经常运用作静脉打针及取血用.打针办法与前述后肢外侧小隐静脉打针法雷同.

舌下小静脉打针法：

此法较便利有用,用于补注麻醉药或紧迫打针药物等用.打针前将麻醉的狗嘴打开,用舌钳  包着纱布把舌头拉出,并翻向背侧,即可见到清晰的舌下小静脉,可找一根较粗的作静脉打针用.将舌头尽量拉出,左手拇指榨取舌下静脉根部,见到充血舌下静脉,用连4号针头的打针器与血管平行插进静脉.回血,推动药液.打针完毕将针头抽出,立刻用干棉球榨取止血,或用止血粉止血.因舌下小静脉四周都是软组织,且血管散布很丰硕,故应选择41/2号以下的细号针头,打针完毕要实时有用止血.

5．豚鼠:

可采取前肢皮下头静脉.后肢小隐静脉打针或耳缘静脉打针.

6． 猴:

猴常在后肢小隐静脉.皮下静脉或股静脉打针,打针办法与犬静脉打针法基底细

同.

7．猪:

可在耳静脉.颈静脉打针.

8．蟾蜍胸淋巴囊打针法

取蟾蜍一只,一手抓住蟾蜍身材,固定四肢,使腹部朝上;另一手持（4～7号针头）将针头拔出口腔,经由过程下颌肌肉而刺入,打针药液后拨出针头,因为下颌肌内压缩使针孔闭合,可防止药液漏出.打针量每只0.25～1.Oml.

三　其它门路给药法

除上述较经常运用的给药门路外,还有其他一些给药办法,如呼吸道给药.皮肤给药.脑内给药.直肠内给药.关节腔内给药等等.

   1.呼吸道给药：

呈粉尘.气体及蒸气或雾等状况的药物或毒气,均须要经由过程动物呼吸道给药.如试验时给动物乙醚作吸入麻醉,给动物吸入必定量的氨气,二氧化碳等不雅察呼吸,轮回等的变更;给动物按期吸入必定量的SO2.用锯末烟雾制造慢性气管炎动物模子等,特别在毒理学试验中运用更为普遍.

   2.皮肤给药：

为了判定药物或毒物经皮肤的接收感化.局部感化.致敏感化和光感感化等,均需采取经皮肤给药办法.如兔和豚鼠常采取背部必定面积的皮肤脱毛后,将必定的药液涂在皮肤上,药液经皮肤接收.

3.脊髓腔内给药：

此法重要用于锥管麻醉或抽取脑脊液.

家兔椎管内打针办法：

将家兔作天然俯卧式,尽量使其尾向腹侧愚昧,用剪毛剪将第七腰椎四周被毛剪去,用3％碘酊消毒,尔后用75％酒精将碘酊擦去.在兔背部髌骨脊连线之中点稍下方摸到第七腰椎间隙（第七腰椎与第一骶骨之间）,拔出腰椎穿刺针头.当针到达椎管内时（蛛网膜下腔）,可见到兔的后肢跳动,即证实穿刺针头已进入椎管.这是不要再向下刺,以免毁伤脊髓.固定好针头,即可将药物注入.

4.脑内给药：

此法经常运用于微生物学动物试验,将病原体等接种于被检动物脑内,然后不雅察接种后的各类变更.

5.直肠内给药：

此种办法经常运用于动物麻醉.兔直肠内给药时,常采取灌肠的胶皮管或用14号导尿管代替.

6.关节腔内给药：

此法经常运用于关节炎的动物模子复制.

7．脚掌打针法：

（1）小鼠：

打针前小鼠应先麻醉.因前脚需用以取食,故仅能用后脚掌.针头刺入约5mm,即可推液,最大量为0.25ml.假如运用福氏完整佐剂,注入脚掌后,可使足掌部形成轻微肿胀.溃疡及坏逝世,动物行为艰苦,是以,若非试验必须,最好不要运用.其它试剂固然不致引起如斯强烈的反响,最好仅用一只后脚掌.

（2）豚鼠：

由助手固定好动物,使后脚掌面向操纵者.用棉签沾水将脚掌洗净,特别是脚趾之间,再用酒精棉消毒.其它同小鼠.针头刺入约5mm即可推液.最大量为0.25ml.