临床标本采集注意事项.docx
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临床标本采集注意事项
标本采集注意事项
13血液标本采集
13.1器材与消耗品准备
针头(双向无菌针头或蝶针)、持针器、真空管(血标本管和血培养管)、70%酒精棉球、10%的碘酒或洗必泰溶液(用来消毒血培养瓶瓶盖表面)、医用纱布、弹力绷带或带子、创可贴。
13.2病人体位设置
13.2.1住院病人:
可以根据病人身体状况选择尽可能能使病人舒适的体位,例如平卧位、端坐位。
13.2.2门诊病人:
必须安排能使病人手臂充分伸展暴露静脉利于穿刺的椅子,并带有扶手和靠背,以防止病人在采血过程中晕倒滑落。
采血时,应注意:
a)要求病人将后背尽可能舒服的靠在椅背上;
b)如果条件允许,在病人手臂下放一个棉垫;
c)尽量使病人的肩部到腕部维持成一条直线;
d)确保病人采血时口中无其它不相关物品的存在(如食物、饮料等)。
13.3止血带的应用
13.3.1扎止血带的目的:
为了使静脉回流受阻,从而使血管充盈、暴露,易于穿刺,除非它会干扰检测结果(如乳酸),否则的话必须使用。
13.3.2如果止血带的时间超过1分钟,则会引起局部血液浓缩,影响标本检验结果的准确性,例如,止血带的时间超过1分钟,Hb浓度增高3%(0.4g/dL),超过3分钟,Hb浓度增高7%(0.9g/dL);如果止血带包扎时间过长且未进行穿刺时,应该松开止血带,等两分钟后再重新扎上。
13.3.3止血带的位置:
位于穿刺部位上方4-6cm处。
13.4嘱病人握紧拳头。
13.5选择穿刺部位:
13.5.1选择前臂较粗静脉(从外侧至内侧依次为头静脉、贵要静脉、肘正中静脉)和手背静脉,这些静脉分布在皮下浅层,肉眼观察较清晰,且较固定。
13.5.2由于贵要静脉伴随有臂动脉和中间神经,因此,只有当难以选择其它静脉时,才考虑该静脉。
13.5.3不推荐采用腕部静脉进行穿刺,因为腕部皮下静脉伴随有很多肌腱和神经通过,不易穿刺且很容易使神经受损。
13.5.4在没有得到医生许可的情况下,一些有潜在药物影响的四肢静脉不可采(如静脉炎、血栓症、组织坏疽、瘢痕部位、乳房切除术、血肿、引流管、深静脉置流管、皮肤病等)。
13.6戴手套:
抽血前重新更换无菌手套。
13.7消毒:
13.8一般血标本采集消毒方法:
13.8.170%酒精棉球以穿刺点为圆心向外画同心圆进行皮肤消毒。
13.8.2待空气自然干燥,避免皮肤表面的酒精进入针筒内造成溶血。
13.9血培养标本采集消毒方法:
13.9.1皮肤消毒前,先检查血培养瓶有无损坏或超过保质期,用70%酒精消毒血培养瓶橡皮塞并待其自然干燥;
13.9.2用蘸有安儿碘或洗必泰消毒液棉签,以穿刺点为圆心,以约5cm直径画圈进行皮肤消毒,作用时间30s-60s。
注意消毒过的地方不能重复涂抹,在涂抹的过程中棉签必须也要同时旋转;如果病人手臂皮肤不够干净,则需重新擦拭;在洁净后不要触摸已消毒的穿刺部位。
13.9.3若消毒后因静脉暴露不明显而需要通过手指触摸重新定位时,找准位置后应对穿刺部位皮肤再次进行消毒处理。
13.10静脉穿刺程序
推荐使用真空采集系统进行血标本采集。
13.10.1一般血标本静脉采集:
a)双手握住双向针两端的针套并反向拧开,除去白色针套,暴露双向针后端(带弹性胶套的一端)。
将双向针后端按顺时针方向拧入持针器中,彩色针套仍保护针头前端,避免细菌污染。
b)拔除彩色针头护套,暴露双向针前端。
c)握住持针器,使针头斜面向上,沿静脉走向使针头与皮肤成30度角斜行快速刺入皮肤,当有进入腔静脉的落空感时停止穿刺。
d)在可见回血双向针的中部透明回血腔内,可以立即清晰看到回血,表明针头穿破静脉壁进入静脉腔。
e)将真空采血管标签向下置入持针器中,左手食指和中指卡住持针器后端的凸缘,拇指推向采血管底,将采血管推到持针器顶端,使双向针后端针尖穿透采血管胶塞。
f)当管内真空耗净,血流便停止,此时用左手拇指和中指捏住试管下部,用食指推持针器的凸缘,使管塞脱离采血针后端的针头,然后将试管从持针器取出。
g)在取下采血管的同时,立即将该采血管颠倒混匀5-8次,使试管内预置的添加剂与血样充分混匀,但不可以剧烈晃动以免造成标本溶血。
13.10.2血培养标本的采集:
a)持穿刺针按常规方法刺入静脉,另一头刺入血培养瓶内,利用瓶内真空抽取血标本,每瓶采血量8~10ml;
b)以BD公司血培养系统为例,血培养瓶外观和种类对照如下:
蓝色瓶盖――需氧培养瓶;
黄色瓶盖――厌氧培养瓶;
红色瓶盖――真菌和分支杆菌培养瓶。
c)建议每套血培养同时接种至需氧瓶和厌氧瓶,有利于微需氧菌和厌氧菌的检出。
当厌氧菌感染不能除外的病人,如腹部手术合并感染的病人,必须同时做厌氧菌血培养。
但如果不能满足推荐的采血量时,应首先满足需氧瓶;
d)血液接种到培养瓶后轻轻颠倒混匀,以防血液凝固;
e)填写化验单时,一定要记录每瓶的采血时间和部位。
13.11采血顺序:
血培养管-血凝管-血清管-肝素管-EDTA管-糖酵解抑制剂管
以BD真空管为例,BD真空管按头盖颜色不同来区分内加的添加剂,其真空采血管种类、临床用途及其采血顺序如下图所示:
各真空采血管采血量分别为:
浅绿色真空管
黄色分离胶真空管
红色真空管
浅绿色PST管
绿色真空管
紫色真空管
灰色真空管
黑色真空管
2.7mL
5.0mL
3.0mL
4.0mL
4.0mL
2.0mL
2.0mL
2.4mL
注:
1各管采足血后均应立即颠倒混匀5-10次;
2由于真空较低,量少、半注满的抽血试管比全注满的抽血试管速度较慢。
13.11血液抽取不顺利时的情况分析及处理办法
a)改变位置,移动针头(它可能不在血管内)
进针太浅,将针头再向前推进进入静脉,见回血后停止推进。
进针太深以至穿透血管壁,则将针稍微向后退一点,见回血后停止退针。
b)调整针头角度
由于血管弹性差而使血管壁紧贴针的斜面,从而堵住针孔,可通过调整针角度解决
c)松开止血带:
可能是止血带在阻碍血液的流动
d)尝试更换一支真空管,可能这是一支没有真空的试管。
e)重新定位静脉,可能在穿刺时静脉滑行使针没能刺进,在不退针的情况下调整针头穿刺重新定位的静脉。
f)静脉弹性差,扎紧止血带以使静脉充盈,如果仍未成功,则拔出针头,重新选择静脉穿刺。
g)同一采血员静脉穿刺两次仍未成功时,如有可能,则换一个采血员尝试重新选择静脉进行采集。
13.12松开止血带
当血液顺利的从血管内流入采集管时立即将止血带松开并移去。
13.13放置无菌纱布
针头拔出后快速用一块洁净的无菌纱布按在穿刺点上止血,按压并观察一段时间以确保有无皮下出血或血肿形成,血肿的形成不仅能导致难看的皮肤颜色改变和影响以后的静脉穿刺、而且能压迫相应区域的神经并可能造成神经损伤。
13.14移去并处理针头
建议采用专业设计的利器盒(桶)盛放弃置的污染针头,其它污染品弃于医疗废物桶内。
13.15用绷带包扎手臂
13.16标记标本管并记录采集时间
a)检验科技术人员在原始样本采集完成后需在样本上注明患者唯一标识,如姓名、性别、年龄或出生日期及确认号码等。
b)检验科技术人员亦可使用本单位HIS系统打印出来的条形码。
c)检验科技术人员需在检验申请单上注明样本采集时间。
d)若是黄色分离胶真空管,则需及时离心以增加原始样本的稳定性。
13.17标本的处理
若样本不能及时送检,则应按照《检验项目一览表》中的标本采集及保存要求保存样本。
14原始样本采集要求
14.1空腹采血
在检测项目表中,若无特殊注明,都为空腹采血。
空腹是指患者在采血前10-12小时需禁食,但可以饮水。
若样本为黄色分离胶真空管,需即时离心。
14.2糖耐量试验、胰岛素释放试验、C-肽释放试验
14.2.1病人准备:
a)采血前3日每日进食碳水化合物量不低于250-300克;
b)采血前3日停用影响检测的药物(如:
咖啡因、口服避孕药、水杨酸盐等);
c)在采血前10-12小时需禁食,但可以饮水。
14.2.2标本采集:
a)清晨抽空腹血后,口服75克葡萄糖,于服糖后0.5、1、2、3小时各取血1次(共5次)。
b)每次抽血时留相应时间小便一同送检。
14.2.3标本类型:
血糖专用抗凝管采血。
14.2.4标本量:
2ml。
14.2.5标本保存:
采血后1小时内分离血清并及时冷藏送检或2-8℃保存。
14.3血液学诊断的样本要求
14.3.1涂片要求:
四张血片,六张骨髓片,怀疑白血病则涂八张骨髓片。
血片注明“PB”,
骨髓片注明“BM”,骨髓片还需注明骨髓部位。
14.3.2请提供病人相关信息。
14.3.3血常规结果。
14.4微生物检测标本采集方法
14.4.1总则:
用于细菌培养的标本收集时应注意无菌操作;病人在采集标本做该项目检测时至少停用抗生素一周以上,如有需要先进行增菌培养;如为棉拭置于无菌运送管;各种穿刺液、体液置于无菌抗凝管。
注意:
需要开展以下检验项目的单位请提前通知我中心,以便送上所需培养基,同时在采样后马上接种送检,如不能及时送检应置于37℃环境中培养。
14.4.2下呼吸道分泌物(痰液):
嘱患者早上起床后用清水漱口,不要刷牙,深咳出第一口痰,吐在无菌瓶中及时送检或接种在血平板上,(置37℃过夜后)送检。
14.4.3尿液(中段尿):
在医护人员指导或协助下,以无菌手段采取中段尿约3ml入无菌试管内及时送检或接种在血平板上,(置37℃过夜后)送检。
14.4.4粪便:
a)取一小块(1cm左右)有粘液、脓血部分粪便置于无菌可盖紧塑料盒中。
b)如为稀水便,可取2ml直接收集于塑料盒中及时送检或分别接种于SS和麦康凯平板上,(置37℃过夜后)送检。
14.4.5眼、耳、鼻、咽拭子:
将棉拭子沾取少许无菌生理盐水(如沾取的太多,可在无菌生理盐水瓶壁上挤去多余的水分),然后采取可疑部位的分泌物放置无菌小瓶直接送检或接种于血平板上(置37℃过夜后)送检。
14.4.6脓液:
对采集标本的部位应先用生理盐水清洗表面污染菌,对皮肤粘膜也应充分消毒。
用沾有生理盐水的棉拭子沾取脓液,要尽量多取一些放置无菌小瓶直接送检或接种于血平板上,(置37℃过夜后)送检。
14.4.7血液:
14.7.1无菌条件下采血培养;
14.7.2应尽量在未使用抗菌素前采血;
14.7.3如已使用抗菌素,应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血;
14.7.4假如病人每天静脉滴注抗菌素时,应该在病人第二天使用抗菌素之前采血培养;
14.7.5如果病人每8小时用药一次,应该在病人第二次用药之前采血,尽量避过抗菌素在体内浓度的高峰期;
14.7.6在抽取一定量血液(成人采血5-10ml,小儿采血2-3ml)后,另换一无菌针头,消毒接种瓶口后将血液接种于瓶内,轻轻摇匀;
14.7.7从抽血到接种入血培养瓶,动作要快,防止血液凝固(置37℃过夜后)送检。
14.8穿刺液:
胸腹水、心包积液、关节腔液、鞘膜积液在无菌操作抽取标本后(对易自凝标本可添加抗凝剂)放置无菌密封瓶送检或接种于血平板,(置37℃过夜后)送检。
14.9胆汁:
由专科医生以无菌方法取胆汁10ml注入无菌试管,直接送检或接种于血平板上,(置37℃过夜后)送检。
14.10脑脊液:
以无菌方法取脑脊液3-5ml,置于无菌密封管或接种于血平板上(置37℃过夜后)送检。
14.11生殖器官标本:
阴道、子宫颈及前列腺等生殖器分泌物应由医师采集,病人在采集标本做该项目时至少停用抗生素一周以上,收集于无菌试管内送检。
支原体、衣原体、淋球菌检测各需单独的拭子,如同时检测三项,至少需要三根拭子。
14.11.1支原体(解脲、人型)培养+药敏
a)支原体对干热抵抗力差(室温可保存8小时,4℃可保存24小时),标本采集后应尽快接种于支原体运输培养基中送检。
b)男性:
用生理盐水局部清洗后用无菌男性拭子沾取灭菌盐水少许深入尿道口内2-2.5cm处取分泌物,将拭子按无菌操作洗于支原体运输培养基中送检。
c)前列腺液亦可用棉拭子尽量多的沾取后洗于支原体运输培养基中。
d)中段尿可直接送检。
e)女性:
用沾取少许无菌生理盐水的棉拭子取宫颈管内口1-2cm处单层柱状上皮细胞,取样拭子不可碰阴道壁,将拭子按无菌操作洗于支原体运输培养基中送检。
14.11.2淋球菌培养+药敏
a)男性尿道炎急性期患者可用沾有少许生理盐水的无菌拭子取脓性分泌物。
b)非急性期病人,可用无菌细小棉拭子沾取少许生理盐水轻轻插入尿道2-4cm深处,转动拭子然后取出。
c)女性患者先用无菌棉拭子擦去宫颈口分泌物,再用另一沾有生理盐水的棉拭子插入宫颈口内1cm处旋转,取出分泌物。
d)采标本后马上把棉拭子插入淋球菌运输培养基中送检,培养基常温下不超过24小时送检。
14.11.3衣原体抗原检测:
a)男性患者将拭子插入尿道2-4cm,停留3-5秒钟后旋转一周取出,将取样后的拭子放入无菌试管中送检。
b)女性患者在取样前先用另外的拭子或棉球将宫颈外的粘液抹去,再将取样拭子插入宫颈管内至棉花部分全部插入,旋转并停留20秒取出,不要碰到宫颈外及阴道壁,将取样后的拭子放入无菌试管内送检。
c)标本保存条件:
标本采集后室温保存即可,24小时内送检。
14.11.4念珠菌培养+药敏
a)标本采集:
怀疑阴道念珠菌感染需要做培养及药物敏感试验的患者用沾有生理盐水的棉拭子沾取大量豆腐渣样白带或可疑白带倒悬于无菌试管中送检。
b)标本保存条件:
标本采集后在2-8℃保存,24小时内送检。
14.5微量元素检测标本采集要求:
14.5.1全血铅测定
EDTA真空管
14.5.2血清铜锌钙镁铁测定
真空黄色分离胶管,即时离心。
14.5.3末梢血检测
a)微量元素样本极易被污染。
采集末梢血之前须仔细洗手,消毒。
b)铅测定:
吸取40μl末梢血或静脉血,分别置于盛有专用稀释液(0.36ml)的离心管中,盖紧离心管盖,充分混匀。
c)铜锌钙镁铁测定:
吸取20μl末梢血或静脉血,分别置于盛有专用稀释液(0.6ml)的离心管中,盖紧离心管盖,充分混匀。
d)样品暂不能检测时,可置冰箱内4-6℃保存一周。
14.6遗传学检测标本采集要求:
14.6.1标本采集:
a)染色体检查:
外周血(4ml肝素抗凝);
骨髓(3ml肝素抗凝);
淋巴组织(大于1cm3于1640培养液中);
羊水(15-20ml)。
b)FISH检测:
外周血(3ml肝素抗凝)或外周血涂片(3张),骨髓(3ml肝素抗凝)或骨髓涂片(3张),淋巴组织(大于1cm3于1640培养液中),或淋巴组织印片(3张),石蜡包埋组织切片(3张)
14.6.2标本保存:
标本采集后置于18-25℃保存,合格标本须于采集当天送至遗传实验室
14.6.3申请单填写:
请完整填写申请单,尤其是标本采集时间、性别、病史、临床诊断等。
14.7精液与前列腺液
14.7.1采集精液应在3~5天内勿排精
14.7.2排精后30分钟内保温送检
14.7.3不可用润滑剂或贮藏于避孕套内
14.8病理标本采集注意事项:
14.8.1需提供详细病人信息;
14.8.2采集时勿挤压,损伤组织,活检组织按要求采集,组织勿太少;
14.8.3标本应立即放入固定液(10%福尔马林缓冲液),固定液为标本体积的4-5倍;
14.8.4较大的标本应按规定切开后固定;
14.8.5结核标本需固定7-10天才能切开;
14.8.6如同一病人有两种或数种不同的组织活检,或在同一器官的不同部位取材标本必须要用分开的容器盛放;
14.8.7各种液体穿吸液的细胞检查标本应立即送检,不能立即送检者应离心,涂片2-4张(连同盛装液体的瓶)再按规定要求固定后送检。
14.9TCT样本采集
14.9.1将专用刷子平行插入子宫颈内,直到刷子最下面的刷毛暴露在子宫颈外为止;
14.9.2用手轻轻固定,避免刷子滑出,然后将宫颈刷向同一方向转3-5圈,不要太用力或转的太多,以免出血冲淡细胞并使用恰当的力度保证取到更多的细胞;
14.9.3经期不能取材;
14.9.4分泌物太多时要用干棉签擦干净后再取;
14.9.5宫颈糜烂严重的旋转不要超过3圈,以免出血;
14.9.6旋转时向同一方向,勿来回转动以免加大创伤引起出血。
14.10毒品检测标本采集
14.10.1标本类型:
新鲜随机尿液,不含任何防腐剂及其他杂质,(依据项目有时是血),标本量参照检测项目表;
14.10.2标本保存条件:
标本保存于干净的试管或容器中,于2-8℃冷藏保存,有效期为2天,于-20℃冷冻保存,有效期为1个月。
14.11基因或分子生物学诊断标本
14.11.1血液标本
a)样本类型:
EDTA或枸橼酸钠管。
b)样本量:
2mL,离心后取血清0.2mL送检。
c)血清标本-20℃下:
可保存1-2周。
-70℃:
可长期保存。
d)标本不宜反复冻融。
14.11.2分泌物
a)采集生殖道拭子标本,要求患者在采样前2小时不能排尿。
b)男性:
先清洁尿道口,将棉拭子深入尿道约2cm,同方向旋转3-5圈,停留5秒钟,取得分泌物(应略带黏膜)。
c)女性:
阴道:
用无菌生理盐水棉球洗去宫颈口分泌物,再用无菌棉拭子深入宫颈内,同方向旋转3-5圈,停留5秒钟,取得宫颈分泌物。
d)女性:
尿道:
用无菌生理盐水棉球洗净尿道口,再用无菌棉拭子深入尿道约2cm,同方向旋转3-5圈,停留5秒钟,取得分泌物(应略带黏膜)
e)将棉拭子置于无菌试管,将试管塞紧,密闭低温送检。
14.11.3高危型人乳头瘤病毒(HPV)检测
a)病人准备:
三天内不能作阴道冲洗或使用阴道内药物;24小时不能有性生活;非月经期采样检查。
b)放置阴道张开器,用专用取样刷置于子宫颈口于粘膜交界处逆时针转3圈,停留10秒钟。
c)将取样刷放于专用试管中,在切口处折断多余部分。
宫颈刷出物,尽量避免保存液在取样过程中溅出,否则标本量不够无法检测。
d)拧紧盖子,送检。
4℃可保存三周,-20℃可保存半年。
注:
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