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最新发酵工程实习指导书优秀word范文22页
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发酵工程实习指导书
篇一：
发酵工艺综合实习指导书
发酵工程综合实验指导讲义
综合实验一土壤中稀有放线菌的分离和纯化及抗生菌的体外抗菌鉴定一土壤中稀有放线菌的分离和纯化1实验目的
了解采集土样的要求和方法，掌握由土壤中分离稀有放线菌的基本原理和操作技术，学习并掌握土壤稀释法和微生物的纯培养技术。
2实验原理
筛选放线菌是新抗研究的重要课题之一。
迄今为止，已发现的抗生素有80%皆来自于放线菌。
放线菌主要存在于土壤中，并在土壤中占有相当大的比例。
一般地，放线菌在比较干燥、偏碱性、含有机质丰富的土壤中数量居多。
通常，随着地理分布、植被及土壤性质的不同，放线菌的种类、数量和拮抗性也各不相同。
土壤是微生物的大本营，其中的放线菌多以链霉菌为主，因此人们通常将除链霉菌以外的其它放线菌统称为稀有放线菌。
若以常规方法进行分离，得到的几乎全部是链霉菌。
然而，当采用加热处理土样、选用特殊培养基或添加某种抗生素等方法时，均可提高稀有放线菌的获得率。
由土壤中分离放线菌的方法很多，其中包括稀释法、弹土法、混土法和喷土法等，本实验主要采用稀释法，并通过选用特殊培养基的方法，来获得少量稀有放线菌。
3仪器和材料
（1）培养基：
葡萄糖天门冬素琼脂，精氨酸琼脂，高氏1号琼脂，以上每种培养基皆用500ml三角瓶分装250ml。
（2）灭菌物品：
牛皮纸袋，培养皿，1ml、5ml吸管，250ml三角瓶分装90ml无菌水（含30粒玻璃珠），18×180mm试管分装9ml无菌水，牙签，玻璃刮铲，18×180mm试管中分装10ml1‰K2Cr2O7母液。
（3）其它：
采土铲，细目筛，药勺，称量纸，试管架，小天平，记号笔。
4试验步骤
（1）采土：
选择适宜采样地点。
用采土铲去除表土，取5～10cm深处的土壤约150g左右，装入无菌牛皮纸袋中，并注明采样日期、地点、土壤类型、植被和采样人姓名等。
（2）土样预处理：
新鲜土样应适当风干，并喷施小剂量杀虫剂以防培养过程中虫卵发育的影响。
（3）制备平板：
每组取10套无菌培养皿，将冷却至50℃左右的各培养基，分别倒入平皿，每皿约15～20ml。
每种培养基中需加入20ppm的K2Cr2O7溶液。
在皿盖上注明培养基种类及组号。
（4）制备土壤稀释液：
每组称取10g土样，放入90ml无菌水中，得到土壤原液。
手摇15～20min后，静置1min。
再用无菌吸管取1ml上清液，置于9ml无菌水中，充分混匀，则得到10稀释液。
依此类推，制备10、10稀释液（一般地，较肥的土壤使用10～10稀释液，而瘦土则使用10～10稀释液）。
（5）铺平板：
用1ml无菌吸管分别取0.1ml10～10稀释液，置于培养基平板中央。
然后，再用无菌的玻璃刮铲均匀涂布，静置10min。
每1稀释度3个重复，每1种培养基10套平板。
并注明各稀释度。
（6）培养及观察：
将各平板置于28℃恒温箱中倒置培养14天。
要求分别在第2天、7天和14天进行观察，并根据菌落大小、气生菌丝有无、气生菌丝和基质菌丝的颜色及可溶性色素有无等培养特征，选择单菌落放线菌进行纯培养，同时在平板背面的相应位置上作好标记。
（7）纯培养：
及时将选定的单菌落接入高氏1号琼脂斜面，每个菌株接1支斜面。
必要时，中间可加1次划线分离培养，然后再转斜面。
5结果与讨论
将实验结果填入下表。
－3
－5
－2
－4
－2
－3
－4
－3
－5
思考题
1、在分离土壤放线菌时为什么要选用多种培养基？
2、在培养基中添加K2Cr2O7有何作用？
二抗生菌的体外鉴别
1实验目的
了解抗生素产生菌体外筛选法的原理，学习并掌握抗生菌的鉴别方法。
2实验原理
由土壤中分出的放线菌需进一步鉴别是否为需要的抗生菌。
首先应根据筛选目的确定试验模型，然后利用培养基平板进行拮抗性测定。
常用的方法有琼脂块法和滤纸片法。
其主要依据是扩散原理，即观察在抗生菌周围是否会出现明显的抑菌圈。
抑菌圈的大小和透明度则表明了该菌株抗菌活性的强弱。
本实验选用了这两种方法。
3仪器与材料
（1）培养基：
500ml三角瓶中分装300ml黄豆饼粉琼脂，18×180mm试管分装4ml黄豆饼粉浸汁，300ml三角瓶分装150ml细菌培养基，150ml三角瓶分装50ml马铃薯培养基。
（2）试验菌：
枯草芽孢杆菌（Bacillussubtilis）大肠杆菌（Escherichiacoli）金黄色葡萄球菌（Staphlococcusaureus）深红酵母（Ruodotorularubra）
（3）待测菌株：
琼脂培养物：
将融化的黄豆饼粉琼脂倒入无菌培养皿，制成平板。
用记号笔在平皿背面画一直线，将平皿一分为二，分别注明待测菌株的编号。
并按照编号将待测菌株密集划线接入平板。
同法接入华美链霉菌（Streptomycessplendens）和金霉素链霉菌（Streptomyces
aureofaciens）作为对照菌，28℃下培养7天
发酵液：
将待测菌株和对照菌分别接入黄豆饼粉培养液，作好标记，28℃下振荡培养7天。
（4）灭菌物品：
培养皿，打孔器，镊子，圆滤纸片，15×150mm试管分装5ml无菌水，1ml吸管，无菌漏斗。
（5）其它：
接种用具，游标卡尺，记号笔，摇床。
4试验方法4.1琼脂块法
（1）分别取枯草芽孢杆菌、大肠杆菌和金黄色葡萄球菌各1支，加入5ml无菌水制成菌悬液，备用。
（2）取9套无菌培养皿，向每套培养皿中分别加入1ml试验菌悬液，然后加入约12ml冷却至45℃左右的细菌培养基，迅速在实验台上摇匀，制成指示菌平板。
每1种指示菌3个重复，并注明指示菌及测定菌株的位置。
（3）用无菌打孔器将待测菌株和对照菌的黄豆饼粉琼脂培养物切块，每种培养物9块。
（4）用无菌接种针，将待测菌株和对照菌琼脂块分别移入各指示菌平板的相应位置上，菌面朝上，间隔均匀摆放。
（5）静置20min后，放入恒温箱，37℃下培养18～24h。
（6）用游标卡尺测量抑菌圈直径，并观察抑菌圈的透明程度和边缘整齐程度。
4.2滤纸片法
（1）向深红酵母菌斜面中加入5ml无菌水，制成菌悬液。
（2）向已冷却至45℃左右的马铃薯培养基中加入0.5ml深红酵母菌悬液，摇匀后，倒3个指示菌平板，并在平皿背面标明测定菌株的位置，备用。
（3）过滤各测定菌株的发酵液。
（4）用无菌镊子取无菌的圆滤纸片，蘸取各测定菌株的发酵滤液，放入指示菌平板的相应位置上，每1测定菌株3个重复。
（5）静置20min后，28℃下培养2天。
（6）用游标卡尺测量抑菌圈直径，并观察抑菌圈的透明程度和边缘整齐程度。
5结果
将实验所得结果填入下表，抑菌圈直径以mm来表示。
思考题
1、为什么在移入琼脂块和滤纸片后不立即保温培养？
2、抑菌圈小是否就意味着菌株的抑菌活性差？
为什么？
实验进度安排
第一天：
设备准备，土壤采样，培养基准备第二天：
培养基准备，分离稀有放线菌体第三天：
土壤稀释法和微生物的纯培养第四天：
琼脂块法筛选，滤纸片法筛选培养第五天：
实验结果观察总结报告撰写综（来自:
WwW.:
发酵工程实习指导书）合实验二玉米淀粉液化、糖化及酒精发酵1实验目的及要求
要求学生掌握用酶法从淀粉原料到水解糖的制备原理及方法，淀粉水解糖酒精发酵方法。
掌握粗淀粉含量和还原糖、酒精含量的化学测定方法。
2实验原理
发酵过程中，有些微生物不能直接利用淀粉，因此，当以淀粉为原料时，必须先将淀粉水解成葡萄糖，才能供发酵使用。
一般将淀粉水解为葡萄糖的过程称为淀粉的糖化，所制得的糖液称为淀粉水解糖。
发酵生产中，淀粉水解糖液的质量，与生产菌的生长速度及产物的积累直接相关。
可以用来制备淀粉水解糖的原料主要有薯类（木薯、甘薯）淀粉、玉米淀粉、小麦淀粉、大米淀粉等，根据原料淀粉的性质及采用的水解催化剂的不同，水解淀粉为葡萄糖的方法可分为酸解法、酸酶结合法和酶解法。
实验室中常采用酶解法制备淀粉水解糖。
酶解法是指利用淀粉酶将淀粉水解为葡萄糖的过程。
酶解法制葡萄糖可分为两步：
第l步是利用α-淀粉酶将淀粉液化为糊精及低聚糖，使淀粉的可溶性增加，这个过程称为液化；第2步是利用糖化酶将糊精或低聚糖进一步水解，转变为葡萄糖的过程，在生产上称为糖化。
淀粉的液化和糖化都是在酶的作用下进行的，故也称为双酶水解法。
利用酒精酵母将可酵糖转化为酒精的过程称为发酵。
2.1酶法液化原理
淀粉的酶法液化是以α-淀粉酶为催化剂，该酶作用于淀粉的α-1,4糖苷键，从内部随机地水解淀粉，从而迅速将淀粉水解为糊精及少量麦芽糖，所以也称内切淀粉酶。
淀粉受到α-淀粉酶的作用后，其碘色反应发生如下变化：
蓝→紫→红→浅红→不显色（即碘原色）。
酶法液化以生产工艺不同分为间歇法，半连续和连续式；液化设备有：
管式、罐式、喷射式。
加酶方法有：
一次加酶、二次加酶、三次加酶。
根据酶制剂的耐温性分为中温酶法、高温酶法、或中温酶和高温酶混合法。
本实验采用：
中温酶法，间歇式，罐式，二次加酶法。
2.2酶法糖化原理
淀粉的糖化是以糖化酶为催化剂，该酶从非还原末端以葡萄糖为单位顺次分解淀粉的α-1，4糖苷键或α-1，6糖苷键。
因为是从链的一端逐渐地一个个地切断为葡萄糖，所以称为外切淀粉酶。
淀粉糖化的理论收率：
因为在糖化过程中，水参与反应，故糖化的理论收率为111.1％。
（C6H10O5）n+H2OnC6HO6
16218180
淀粉糖化实际收率的计算：
收率?
糖液量（L）?
糖液葡萄糖含量（%）
?
100%
投入淀粉量?
原料中纯淀粉含量
转化率?
糖液量（L）?
糖液葡萄糖含量（%）
?
100%
投入淀粉量?
原料中纯淀粉含量?
1.11
淀粉转化率：
淀粉-葡萄糖转化率是指100份淀粉中有多少份淀粉被转化为葡萄糖。
淀粉转化率的计算：
DE值：
用DE值表示淀粉水解的程度或糖化程度。
糖化液中还原性糖以葡萄糖计，占干物质的百分比称为DE值。
DE值计算：
DE值?
还原糖含量（%）
?
100%
干物质含量（%）
还原糖用裴林氏法或碘量法测定，浓度表示：
葡萄糖g/100ml糖液；干物质用阿贝折光仪测定，浓度表示：
干物质g/100g糖液。
影响DE值的因素：
糖化时间：
最初糖化时，糖化速度快，DE值显著上升；但24h后，当DE值达到90％以上时，糖化速度显著放慢。
液化DE值与糖化DE值的关系：
液化程度应控制适当，太低或太高均不利。
原因是液化程度低，则粘度大，难操作；同时，由于液化程度低，底物分子少，水解机会少，影响糖化速度；液化程度低，易发生老化；但液化超过一定程度，则不利于糖化酶与糊精生成络合结构，影响催化效率，造成糖化液的最终DE值低。
故应在碘试本色的前提下，液化DE值越低，则糖化液的最高DE值越高。
一般液化DE值应控制在12-18％。
酶制剂用量与糖液DE值的关系：
糖化时间与糖化酶用量关系表
为加快糖化速度，可以提高酶用量，缩短糖化时间。
但酶用量太高，反而使复合反应严重，最终导致葡萄糖值降低。
在实际生产中，应充分利用糖化罐的容量，尽量延长糖化时间，减少糖化酶用量。
2.3酒精发酵原理
以淀粉为原料，采用酸水解、酸酶结合水解或酶水解方法，可以将淀粉转化为葡萄糖等可酵糖。
利用酒精酵母胞内的酒化酶系，葡萄糖被转化为酒精即酒精发酵。
以生产工艺不同，酒精发酵可分为间歇式、半连续式、连续式过程，各种过程又可以细分为多种形式。
本实验采用酶法糖化、一次添加间歇式方法进行酒精发酵。
3实验仪器、设备和材料
（1）1000ml烧杯
（2）真空过滤装置（3）烘箱（4）量杯（5）量筒（6）分光光度计（7）水浴锅（8）滴定管（9）电炉（10）白瓷板（11）三角瓶（12）阿贝折光仪（13）玉米粉（14）α-淀粉酶（15）糖化酶（16）pH试纸（17）酒精活性干酵母（18）酒精蒸馏装置及酒精计4实验步骤
4.1淀粉水解糖的制备4.1.1淀粉的液化
配制30％的淀粉乳，调节pH值至6.5，加入氯化钙（对固形物0.2％），在3个1000ml烧杯中分别加入淀粉乳700ml并分别加入液化酶12U/g淀粉、16U/g淀粉、20U/g淀粉，在剧烈搅拌下，先加热至72℃，保温15min，再加热至80℃~90℃（视酶的特性而定），并维持30min，以达到所需的液化程度（DE值：
15-18％），碘反应呈棕红色。
液化结束后，观察液位，再升温至100℃，保持10-15min，以凝聚蛋白质，改进过滤。
记录液化时间。
4.1.2淀粉的糖化（糖化酶用量对糖化的影响）
液化结束后，迅速将料液用盐酸将pH调至4.2-4.5，同时迅速降温至60℃。
将液化醪混匀后均分为3份，分别加入糖化酶320U/g淀粉、400U/g淀粉、480U/g淀粉，60℃保温，每隔2小时，取样做酒精实验。
当用无水酒精检验无糊精存在时，即为糖化终点，记录糖化时间，同时将料液pH调至4.8-5.0，并将料液加热至80℃，保温20min．然后将料液温度降至60-70℃，开始过滤。
4.1.3过滤
将烧杯内的料液冷却至60-70℃；趁热采用真空过滤（也可用滤布压滤），热水洗涤（60-70℃）滤饼；过滤结束后，洗净过滤的有关设备。
量取糖液体积；取样分析还原糖浓度。
4.2酒精发酵
4.2.1酒精酵母的活化：
称取2g蔗糖，溶于100ml经煮沸并冷却的水中，加入1g活性干酵母于培养箱中30℃活化2hr，备用。
4.2.2清糖液发酵：
将4.1方法制备的淀粉水解糖调整浓度为15%左右，于500ml三角瓶中加入该糖液200ml，用无菌吸管取5ml活化酵母，摇匀，密封三角瓶，置入培养箱中于32℃发酵24hr后得到发酵成熟醪，蒸馏，测定酒精含量。
4.2.3混合醪发酵：
（1）液化：
称取2份各50g玉米粉，置于500ml三角瓶中，混匀，记下液面刻度，加入α-淀粉酶（酶用量为4U/g淀粉原料）进行液化，得到糊化醪。
液化温度为85℃，液化时间为30min，然后冷却至58~60℃，保温。
（2）糖化：
在糊化醪中分别加入糖化酶200U/g淀粉原料和400U/g淀粉原料，在58~60℃保温糖化30min得到糖化醪。
（3）发酵：
将糖化醪冷却至30℃，用无菌吸管接入活化酵母液5ml，摇匀，密封容器，置入培养箱中于32℃发酵50hr左右后得到发酵成熟醪，蒸馏，测定酒精含量。
5实验分析项目和方法5.1淀粉原料含水量的测定5.1.1原理
样品中的水分受热后产生的蒸汽压，高于空气在电热干燥箱中的分压，水分便从样品中挥发出来。
样品干燥的速度取决于这个压差的大小，在此条件下失去的主要是试样中的游离水。
试样的水分一般是指在100℃左右直接干燥的情况下，所失去的总量。
在此条件下失去的重量不仅是水分，还有微量的挥发性物质。
5.1.2仪器与设备
（1）分析天平
（2）称量瓶（3）干燥器（4）电热恒温干燥箱
5.1.3测定步骤准确称取约2克试样，置入经100-l05℃干燥恒重后的称量瓶中，在100-105℃烘箱中干燥3-4小时，取出，置入干燥器中冷却至室温，称重。
再于相同温度下干燥1小时左右，同上操作，直至恒重。
计算
水分（%）?
W1?
W2
?
100%
W1?
W0
式中W0：
称量瓶重（g）W1：
干燥前试样与称量瓶重（g）W2：
干燥后试样与称量瓶重（g）5.1.4说明
（1）原料的水分测定一般需采用100-105℃烘箱中直接干燥，其结果较为准确。
对生产过程中的水分快速测定，可采用更高温度下干燥（如120-140℃）或红外灯下干燥，以缩短分析时间。
（2）测定水分时，称量恒重指试样连续两次干燥后，称量之差不超过2mg。
5.2淀粉原料中粗淀粉含量的测定5.2.1原理
（C6H10O5）n+nH2O淀粉经酸或水解生成葡萄糖：
nC6H12O6
所生成的葡萄糖用斐林试剂测定。
斐林试剂由甲、乙液组成。
甲液为硫酸铜溶液，乙液为氢氧化钠与酒石酸钾钠溶液。
平时甲、乙液分别贮存，测定时甲、乙液等体积混合。
混合时，硫酸铜与氢氧化钠反应，生成氢氧化铜沉淀：
2NaOH+CuSO4=Cu（OH）2↓+Na2SO4
所生成的氢氧化铜沉淀与酒石酸钾钠反应，生成酒石酸钾钠铜络合物，使氢氧化铜溶解：
COOKCu（OH）2+
COOHCOONa
=
COOCOONaCOOK+2H2O
酒石酸钾纳铜络合物中二价铜是一个氧化剂，能使还原糖中羰基氧化，而二价铜被还原生成一价的氧化亚铜沉淀：
COOK2COONa
+
42OH
+2H2O=2COOKCOOH
+4+Cu2O↓
（红色）
2OH
COONa
反应终点用次甲基蓝指示剂显示。
因次甲基蓝氧化能力较二价铜弱，故待二价铜全部被还原后，过量一滴还原糖立即使次甲基蓝还原，溶液蓝色消失以示终点：
4+2OH
（CH3）2N
S
次甲基蓝（蓝色）
HN
+HCl
（无色）
N（CH3）2
+H2O=
+（CH3）2Cl-N
COOH4+CH2OH
（CH3）2N
5.2.2试剂
篇二：
发酵工程实验实验指导书
发酵工程实验指导书
（201X版）
宁波大学海洋学院
201X.09
发酵工程实验指导书
目录
实验一乳酸菌的分离与初步筛选实验
实验二
实验三
实验四
实验五
实验六
乳酸菌的初步鉴定实验乳酸菌菌种保藏实验乳酸菌的培养与发酵实验乳酸菌发酵产物的分析与测定
发酵罐操作训练
发酵工程实验指导书（201X版）
实验一乳酸菌的分离与初步筛选实验
一、实验目的及要求
1、掌握从环境样品中分离所需微生物的一般操作2、掌握平板划线分离菌种的原理和操作方法3、掌握利用透明圈法获得单菌落菌株的原理。
二、实验原理
自然样品中存在混杂的微生物，通过选择性培养基及样品稀释使形成细胞分散液，再通过固体培养基在合适的培养条件下培养形成单菌落，由此得到分离的纯培养菌株。
乳酸菌最基本的代谢特性是发酵产酸，待分离样品在合适的培养基和培养条件下，乳酸菌在特定设计的培养基中由于生长产酸产生溶钙形象，从而在培养基中产生透明圈，透明圈直径大小可反映菌落生长产酸量的大小，而不是乳酸菌或不产生酸积累的细菌不能产生透明圈。
三、实验器材
1、待用分离样品（腌菜，各种泡菜，酸奶，植物汁液，等）；2、培养基：
MRS培养基或改良乳酸菌分离培养基；无菌水；
3、器皿与设备：
培养皿、移液管、试管、三角瓶、接种环、涂布棒、超净工作台、天平、采样瓶，
培养箱，等。
四、方法和步骤1、分离样品的采集采样须知：
结合乳酸菌菌种特性（文献资料查阅），获取乳酸菌在自然界或相关产品等的分布规律，设计样品采集范围。
采集样品经适当保存或立即处理。
2、菌种的分离
称取样品5g或5ml?
加到45ml无菌水的三角瓶中（30℃恒温处理20分为佳）?
充分震荡后（含玻璃珠）使其自然沉淀?
用1ml移液管吸取上清菌悬液1ml至9ml无菌水试管中?
依次进行10倍稀释至10-4~10-5?
用移液管吸取1mL菌悬液至含碳酸钙的MRS培养基平板中，涂布均匀?
30℃恒温培养2~3天?
观察菌落，分别挑取生长良好的含透明圈的可疑乳酸菌单菌落，分别移接至普通乳酸菌培养基的斜面试管，菌种编号，30℃恒温培养1~2天，长菌后在4℃冰箱保存待用。
五、实验结果
1、在培养平板中观察各菌落生长情况，仔细观察可疑乳酸菌的菌落形态，大小，色泽，透明圈等
特征，运用所学微生物知识初步确定其属于哪个菌属。
2、记录，选取，并标记，斜面移接和培养，待用。
六、思考题
1、阅读文献资料后设计你的采样方案并说明理由？
目的是最大可能筛选分离得到乳酸菌。
2、产酸性微生物分离筛选的一般步骤？
写作实验报告
附培养基配方及制备方法
含碳酸钙的MRS培养基（分离实验），除去碳酸钙即得斜面培养基。
配方如下：
蛋白胨10g，牛肉膏10g，葡萄糖20g，酵母膏5g，柠檬酸氢二铵2g，MgSO4.7H2O0.58g，MnSO4.4H2O0.25g，乙酸钠5g，吐温-801mL，CaCO320~30g，琼脂15g，蒸馏水1000mL，pH6.8。
（液体培养基则不加琼脂）。
（注：
目前已有合成的MRS培养基）
配制方法：
将各成分按配方比例溶解，冷却至50℃，以盐酸、或醋酸或氢氧化钠调节pH为6.8
３
发酵工程实验指导书
左右，分装三角瓶，按量加入1.5%琼脂，121℃灭菌20min，备用。
CaCO3分开灭菌用时加入。
乳酸菌生长培养基或斜面保存培养基，成分同MRS培养基配方（去除CaCO3）。
发酵工程实验指导书（201X版）
实验二乳酸菌的初步鉴定实验
一、实验目的
1、了解菌种初步鉴定基本方法2、掌握乳酸菌鉴定的基本方法二、实验原理
对实验一得到的经初步判定为乳酸菌的纯培养物，进一步通过其形态或生物学特性进行分析或测定，根据乳酸菌鉴定相关手册加以比较，初步鉴定得出分离菌株的种属类型。
三、实验器材
显微镜，简单染色液（美蓝、结晶紫、碱性复红，等），95%乙醇，。
其它同实验一
四、方法与步骤1、菌落形态观察：
在固体培养基中培养后形成的菌落，观察形态（如菌落大小，边缘形状，隆起程度，等）；并作好记录。
2、细胞形态观察：
通过简单染色法或革兰氏染色法观察细胞形态，或G+及G-特点。
方法：
简单染色法流程涂片→干燥→固定→染色→水洗→干燥→镜检
革兰氏染色法流程涂片→干燥→固定→染色（初染→媒染→脱色→复染）→镜检。
其它：
生理生化鉴定或PCR分子鉴定（待用）建议增加碳源利用实验（试纸条）
五、实验结果与分析1．菌落形态观察结果。
2．细胞形态观察结果。
六、问题（作业）：
乳酸菌的基本生物学特性？
５
篇三：
发酵工程实验指导书201X
发酵工程实验指导书
辽宁石油化工大学环境与生物工程学院主编
《发酵工程》实验指导书
实验学时：
24学时
适用专业：
生物工程
生物技术是当前优先发展的高新技术之一，本课程是为了和生物工程专业理论教学相配合，通过实践教学，培养学生对生物工程专业知识的具体实际应用的能力。
发酵工程实验是以实验操作为主的技能课程，是生物工程专业学生的必修课，是在学生学习了《生物化学及实验》、《微生物学及实验》等专业基础课及专业实验课的基础上开设的，课程目的在于通过本课程的实验训练，使学生对整个微生物生产过程有一个全面的认识和理解，既可培养他们实际操作的技能，又可达到提高他们理论联系实际能力的目的。
通过学习，使学生能掌握发酵工程常用的实验方法和常见的发酵工程设备，为以后的学习和科研工作打下良好的基础。
本实验指导书包括：
实验一、细菌增殖曲线的测定（6学时）实验二、土壤中放线菌的分离与纯化（6学时）
实验三、发酵菌株的初筛
实验四、枯草芽孢杆菌的紫外线诱变选育（6学时）（必做）
实验五、淀粉酶的固态发酵（6学时）
实验六、发酵过程中糖的利用（6学时）
实验七、玉米淀粉液化和糖化（6学时）
实验八、淀粉酶的固定化生产（6学时）
实验九、摇床培养确定酵母菌体的培养和营养条件（6学时）（必做）
实验十、小型连续发酵实验（6学时）
实验十一、甜酒酿的制作（6学时）
备注：
实验一至实验七为基础实验，实验八至实验十一为设计性和综合性实验，除必做实验外，其他可选做。
实验总时间为24学时，包括设计实验、准备实验、进行实验、书写实验预习及最终报告及所需仪器药品清单等。
实验一发酵菌株的初筛一、实验目的与要求
目的：
1、从已
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