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实验动物学复习题

1.人类疾病动物模型:

指医学研究中建立的具有人类疾病模拟性表现的动物实验对象和相关材料。

2.实验性动物模型:

根据科学研究的容,按照特定的要求对实验动物进行定向培养,所形成的的动物模型即是实验性动物模型,其中人类疾病动物模型的分类主要有:

诱发型动物模型、自发型动物模型、抗疾病动物模型、生物医学动物模型。

3.实验动物:

是指经人工培育,对其携带的微生物实行控制,遗传背景明确或来源清楚的,用于科学研究、教学、生产、检定以及其他科学实验的动物。

4.实验用动物:

是指所有用于科学实验的动物,包括实验动物、野生动物、经济动物、观赏动物。

5.近郊系动物:

又叫纯系动物,使采用用同胞兄妹或亲子交配,连续繁殖20代以上所培育出来的,遗传上达到高度一致的动物群,其基因纯合程度可达99.8%。

6.3R原则:

减少(Reduction)、优化(Refinement)和替代(Replacement),统称3R。

具体而言,“减少”就是尽可能地减少实验中所用动物的数量,提高实验动物的利用率和实验的精确度;“优化”即是减少动物的精神紧和痛苦,比如采用麻醉或其它适当的实验方法;“替代”就是不再利用活体动物进行实验,而是以单细胞生物、微生物或细胞、组织、器官甚至电脑模拟来加以替代。

(“3R法则”在发达国家已经普遍采用,并被许多国家列入了保护动物的法律及修正案中。

7.无菌动物:

运用现代科学技术,在体、外无任何可检测出的活的微生物和寄生虫的动物,来源于无菌手术剖腹取胎,饲养在无菌隔离器,人工喂乳或保姆带养培育而成。

8.SPF级动物:

又称为“无特定病原体动物”,体不存在特定病原微生物和寄生虫的动物,简称SPF动物,是指无传染病的健康动物。

(来自无菌动物或悉生动物,转移到屏障系统中饲养。

要在屏障系统环境设施中饲育繁殖和进行实验,要进行严格消毒、检疫、隔离,并定期剖腹净化。

9.隔离系统:

是以隔离器(Isolator)为主体及其附属装置组成的饲养系统。

用作饲养无菌动物和已知菌动物。

工作人员通过隔离器上组装的无菌手套进行操作,不直接接触动物。

送入隔离器的空气需经超高效过滤,洁净度达到100级,饲料、饮水、垫料、笼具等都应高压高温灭菌。

一切物品的移入均需通过灭菌渡舱,并事先包装消毒。

10.清洁级动物:

又称为最低限度疾病动物,体外不携带人畜共患的病原体或动物传染病病原的,不能带有体外寄生虫和大部分体寄生虫。

11.免疫缺陷动物:

在长期繁殖过程中,正常染色体的基因发生变异,出现遗传缺陷并且该种缺陷具有稳定遗传性状的品系动物,如无胸腺裸鼠、无巨噬细胞裸鼠等。

12.转基因动物:

是指将特定的外源基因导全动物受精卵或胚胎。

使之稳定整合于动物的染色体基因组并能遗传给后代的一类动物。

13.落下菌数:

落下菌数指在一定条件下(如需氧情况、营养条件、pH、培养温度和时间等)每克(每毫升)检样所生长出来的细菌菌落总数。

14.圆小囊:

15.全价配合饲料:

全价配合饲料除水分外,能完全满足动物营养需要的配合饲料。

这类饲料产品亦称为完全配合饲料,全日粮配合饲料.通常可根据动物种类,年龄,生产用途等划分为各种型号.此种饲料可以全面满足饲喂对象的营养需要,用户不必另外添加任何营养性饲用物质而直接饲喂动物,

1.简述大鼠的给药方法(给药途径、常用给药量及注意事项)

灌胃(ig):

左手将动物固定后,右手持装有灌胃针头的注射器,自口角进针,沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。

皮下注射(sc):

常在背部皮下注射。

一手固定动物,另一只手注射给药。

腹腔注射(ip):

左手固定动物,右手持注射器,从下腹部外侧,呈45度角刺入腹腔,进针约3~5mm。

肌注射(im):

多注射后肢股部肌肉。

如一人单独操作,以左手拇指和食指抓住小鼠头部皮肤,小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢,右手持注射器刺入后肢肌肉给药

尾静脉注射(iv):

将动物固定,鼠尾巴露在外面,用70%~75%的酒精棉球擦尾部,或将鼠尾浸入45~50℃温水中。

待尾部左右静脉扩后,左手拉着尾,右手进针

2.简述小鼠的给药方法(给药途径、常用给药量及注意事项)

答:

灌胃(ig):

左手将动物固定后,右手持装有灌胃针头的注射器,自口角进针,沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。

皮下注射(sc):

常在背部皮下注射。

一手固定动物,另一只手注射给药。

腹腔注射(ip):

左手固定动物,右手持注射器,从下腹部外侧,呈45度角刺入腹腔,进针约3~5mm。

肌注射(im):

多注射后肢股部肌肉,如一人单独操作,以左手拇指和食指抓住小鼠头部皮肤,小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢,右手持注射器刺入后肢肌肉给药

尾静脉注射(iv):

将动物固定,鼠尾巴露在外面,用70%~75%的酒精棉球擦尾部,或将鼠尾浸入45~50℃温水中。

待尾部左右静脉扩后,左手拉着尾,右手进针

3.实验动物和实验用动物的主要区别是什么?

现代生物学实验中,实验动物是指根据实验的需要,有目的、有计划地进行人工饲养、繁殖及科学培育而成的动物。

供科学研究、教学、生产、检测等方面使用的实验对象和材料。

实验动物必需具有明确的生物学特性和清楚的遗传背景,并且是在对其身上携带的微生物、寄生虫严格控制下培育和驯化出来的。

实验动物按遗传学分类有:

①近交系实验动物,即纯系动物;②封闭群动物;③杂交一代动物(F1代)。

按微生物控制程度分级有:

①一级,普通动物;②二级,清洁级动物;③三级,无特定病原体动物,即SPF动物;④四级,无菌动物,即GF动物。

有时我们也用一些野生动物、家畜、家禽和鱼类进行实验。

但由于它们或因遗传背景不清楚,或因其健康状况有差异,对刺激的敏感性不同、机体反应也不一致,造成实验结果重复性较差,实验结果可靠性也相对较差,因此不能被国际会议的认可,它们只能被称为实验用动物。

实验用动物不能与实验动物等同,实验动物可包括在实验用动物中,但在不十分严格的情况下,有时这二名词又互相通用。

4.试举三例说明实验动物编号的方法主要有哪些?

(一)颜料涂染

这种标记方法在实验室最常使用,也很方便。

经常应用的涂染化学药品有:

①、涂染红色:

0.5%中性红或品红溶液。

②、涂染黄色:

3~5%苦味酸溶液。

③、黑色:

煤焦油的酒精溶液。

④、涂染咖啡色:

2%硝酸银溶液。

标记时用毛笔或棉签蘸取上述溶液,在动物体的不同部位涂上斑点,以示不同。

编号的原则是:

先左后右,从上到下。

一般把涂在左前腿上的计为1号,左侧腹部计为2号,左后腿为3号,头顶部计为4号,腰背部为5号,尾基部为6号,右前腿为7号,右侧腰部为8号,右后腿计为9号。

若动物编号超过10或更大数字时,可使用上述两种不同颜色的溶液,即把一种颜色作为个倍数,另一种颜色作为十位数,这种交互使用可编到99号,假使把红的记为十位数,黄色记为个位数,那么右后腿黄斑,头顶红斑,则表示是49号鼠,余类推。

该方法对于实验周期短的实验动物较合适,时间长了染料易退掉;对于哺乳期的子畜也不适合,因母畜容易咬死子畜或把染料舔掉。

(二)烙印法

用刺数钳在动物耳上刺上,然后用棉签蘸着溶在酒精中的黑墨在刺号上加以涂抹,烙印前最好对烙印部位预先用酒精消毒。

(三)针刺法

用七号或八号针头蘸取少量碳素墨水,在耳部、前后肢以及尾部等处刺入皮下,在受刺部位留有一黑色标记。

该法适用于大小鼠、豚鼠等。

在实验动物数量少的情况下,也可用于兔、狗等动物。

5.小鼠、大鼠的最大安全采血量及最小致死采血量分别是多少?

单次采血量估计:

由于快速失血达15%以上动物容易出现失血性休克,多次少量采血则不容易出现类似的急性失血效应,通常推荐单次采血≤循环血容量的15%,24h多次采血时需将采血量合并计算,以便准确估计动物失血的后果。

【最大安全采血量】指一次采血不会引起动物死亡或者严重威胁其健康的采血量上限,通常为血容量的10-15%,或者体重的1%;

【最小致死采血量】指一次采血可引起动物死亡的最小采血量,通常为血容量的20%以上。

6.实验动物麻醉过量时,可以采取什么对策?

万一麻醉过量,应根据不同情况,积极采取措施,如施行人工呼吸,给予醒剂,或注射强心剂、咖啡因、肾上腺素、可拉明,也可静脉注射5%温热葡萄糖溶液。

7.家兔消化系统的组成如何?

有何结构为家兔独有?

胸腔构造与其它动物不同,胸腔中央由纵膈连于顶壁、底壁及后壁之间将胸腔分为左右两部,互不相通,纵膈由膈胸膜和纵膈胸膜两层纵膈膜组成。

肺被肋胸膜和肺胸膜膈开,心脏又被心包胸膜隔开。

因此,开胸后打开心包胸膜暴露心脏进行实验操作时,只要不弄破纵隔膜,动物不需要作人工呼吸。

猫、狗等其他动物开胸后一定要作人工呼吸,才能进行心脏操作。

家兔回肠与盲肠相接处膨大形成一厚壁的圆囊,称圆小囊,这是兔特有的。

消化系统包括:

口腔、咽喉、食道、胃、小肠(十二脂肠、空肠、回肠)、大肠(盲肠、结肠、直肠)、肛门。

此外,还有肝脏、胰脏等,消化腺分泌的消化液也参加消化家兔的小肠很长,约为体长的八倍,这和它的草食性是有关的。

8.家兔开胸后打开心包胸膜暴露心脏进行实验操作时,不需要人工呼吸的原因是什么?

胸腔构造与其它动物不同,胸腔中央由纵膈连于顶壁、底壁及后壁之间将胸腔分为左右两部,互不相通,纵膈由膈胸膜和纵膈胸膜两层纵膈膜组成。

肺被肋胸膜和肺胸膜膈开,心脏又被心包胸膜隔开。

因此,开胸后打开心包胸膜暴露心脏进行实验操作时,只要不弄破纵隔膜,动物不需要作人工呼吸。

猫、狗等其他动物开胸后一定要作人工呼吸,才能进行心脏操作。

9.屏障系统用来饲养什么级别的实验动物,并简述实验操作人员及物品出入该系统的流程及注意事项。

主要是用于SPF级动物的饲育。

有正压屏障构造、负压屏障构造(生物安全屏障系统)也有用层流架(正压/负压)或隔离器作SPF级屏障系统。

屏障系统设施,要求与外界隔离,空气经三级过滤净化后才进入屏障设施之,空气洁净度为10,000级。

除生物安全屏障系统为负压以外,通常应保持为正压,且不低于20-50Pa;出风口设有防空气倒流装置。

屏障系统设有清洁和污染走廊,进入系统的笼具、饲料、饮水、垫料、器械等一切物品都要经过严格的消毒灭菌,人员进入要经淋浴、更衣,使用专用的服装,进入的动物要有专用包装,也经严格的消毒处理。

系统的人员、物品和空气等采用单向固定的流通路线,有呼吸系统疾病和皮肤病的人员不能进入系统。

结构要求和进入系统的人、动物和物品的运行等与亚屏障系统基本相同,但要求更为严格。

1人员:

更衣-淋浴-更衣-清洁走廊-饲养室或动物实验室-污染走廊-洗刷消毒室--更衣--外部区域。

2物品:

包装-高压消毒(已包装消毒的可经传递窗,清结笼具经有消毒液的渡槽)-清结准备室-清洁物品储存室-饲养室或动物实验室-(污物经包装处理)污染走廊-外部区域。

3动物:

动物(带专用包装)-传递窗-检疫室-清洁走廊-饲育室或实验室-(实验后或生产供应)-(经包装)污染走廊-外部区域。

10.在做药物毒性实验时选择实验动物应注意的四个要点。

第一:

尽量选择急性毒性反应与人近似的动物

第二:

易于饲养,实验动物操作方便

第三:

繁殖生育力较强,数目较大能够保证供应

第四:

价格较低,易于获得动物。

1.请说明根据随机数据表如何将12只动物完全随机地分为3组。

设有小白鼠12只,试用随机数字表把它们分成两组。

先将小白鼠按体重依次编为1,2?

?

12号,然后在随机数字表(可用MicrosoftExcel“数据分析”工具中的“随机数发生器”产生随机数字表)任意确定一个起始点和走向。

假定自随机数字表第六行第一个数字开始,依横的方向抄录,得91、76、21?

?

84等16个。

现令单数代表A组,结果列入A组的动物共7头,列入B组的动物共5头,详见1表。

照上面的分配,两组数目不相等。

如要使它相等,须把A组白鼠减少一头改归B组。

应把哪一只白鼠改变组别呢?

一般采用的方法是仍在随机数字表第六行里继续抄录一个数字62,此数以7除之(因为归入A组的动物有7只故用7除之)得余数为6,于是我们把A组的第六个(即第11号白鼠)改归给B组,经过这样调整以后,两组白鼠编号的分配如下:

A组13781012

B组2456911

2.实验动物标准化的主要研究容是什么?

对动物的质量,繁育条件,实验条件等方面规定的统一技术标准。

容:

实验动物遗传学质量控制、实验动物微生物学质量控制、实验动物设施环境标准化、实验动物饲料营养标准化实验动物微生物学质量控制.

通过微生物学的检测手段,根据微生物净化程度

我国把实验动物分为四个等级:

一级:

普通级动物二级:

清洁级动物三级:

SPF级动物(无特定病原体动物)四级:

无菌动物实验动物生产与动物实验环境

标准化普通级环境:

一级动物(普通级)

屏障系统:

SPF级亚屏障系统:

二级动物(清洁级)(亚屏障系统现已取消)隔离系统:

无菌动物

3.实验动物选择的基本要求如何?

1)从微生物学和寄生虫学标准去选择实验动物。

目的:

使实验研究处于没有或很少外源干扰的情况下进行,使实验结果正确可信。

按微生物学和寄生虫学标准选择:

普通级、清洁级、SPF动物、无菌动物

2)从遗传学的观点来选择实验动物:

近交系动物、突变系动物

3)从效果上来选择实验动物:

效果比较就是要与人比较,是否接近与人的条件。

一般说来实验动物愈高等,进化程度愈高,其功能、代、结构愈复杂,反应就愈接近人类。

如诱发性动物的高血脂症或动脉粥样硬化,猴的病变与人相似。

在不影响实验质量的前提下,应选择最易获得、最经济、最易饲养管理的动物。

如半数致死量测定---小鼠

选用解剖、生理特点符合实验目的要求的动物,减少操作难度,确保实验成功。

如:

大鼠没有胆囊,不能做胆囊功能的研究,适合胆总管插管,收集胆汁,进行消化功能研究。

豚鼠自身不能合成维生素C,可进行维生素C缺乏症研究。

豚鼠血管含补体丰富而且稳定,用于免疫学试验。

4.家兔在生物医学中的应用主要有哪些,他们都分别利用了家兔的那些生物生理学特点?

1.免疫学研究:

家兔的最大用处是产生抗体,制备高效价和特异性强的免疫血清。

免疫学研究中常用的各种免疫血清,大多数是采用家兔来制备的,广泛地用于人、畜各类抗血清和诊断血清的研制。

如:

(1)病原体免疫血清:

如细菌、病毒、立克次氏体等免疫兔血清等。

(2)间接免疫血清:

如兔抗人球蛋白免疫血清、羊抗免疫血清等。

(3)抗补体抗体血清:

如免疫豚鼠球蛋白免疫血清等。

(4)抗组织免疫血清:

如兔抗大白鼠肝组织免疫血清,兔抗大白鼠肝铁蛋白免疫血清等。

2.生殖生理和避孕药的研究:

利用家兔可诱发排卵的特点进行各种研究。

如雄兔的交配动作或静脉注射绒毛膜促性腺激素(80~100单位/只)均可诱发排卵,使兔人工授精后进行生殖生理学的研究。

也可用于避孕药的筛选研究。

注射某些药物或孕酮可抑制卵,家兔排卵多少可以卵巢表面带有鲜红色小点的小突起个数表示。

由于雌兔只能在交配后排卵,所以排卵的时间可以准确判定,同期胚胎材料很容易取得。

3.胆固醇代和动脉粥样硬化症的研究:

最早用于这个方面研究的动物就是家兔,如利用纯胆固醇溶于植物油中喂饲家兔,可以引起家兔典型的高胆固醇血症,主动脉粥样硬化症、冠状动脉硬化症。

家兔复制这类动物模型具有很多优点:

(1)比较驯服,容易饲养管理。

(2)对致病胆固醇膳食的敏感性高,兔对外源性胆固醇吸收率高达75~90%,而大白鼠仅为40%,对高脂血症清除能力较低,静脉注射胆固醇乳状液后,在家兔引起的持续的脂血症为72小时,而大白鼠仅为12小时。

因此造型时短、成型快。

家兔一般3个月左右即可成型,而狗需14个月,鸡需数月致年余,猴需六个月、一年甚至数年。

(3)家兔的模型有高脂血症、主动脉粥样硬化斑块、冠状动脉粥样化病变,与人类的病变基本相似。

而大白鼠和鸡模型与人类病变相比,

则差异较突出。

(4)用家兔造型比较经济便宜,比狗及猴等动物实验节省人力、物力和财力。

4.眼科的研究:

家兔的眼球甚大、几乎呈圆形,眼球体积约5~6cm2,重约3~4g,便于进行手术操作和观察。

因此家兔是眼科研究中最常用的动物。

同时在同一只家兔的左右眼进行疗效观察,可以避免动物年龄、性别、产地、品种等的个体差异。

如常用家兔复制角膜瘢痕模型。

在双眼角膜上,复制成左右等大、等深的创伤或瘢痕,用以观察药物对角膜创伤愈合的影响,筛选治疗角膜瘢痕的有效药物及研究疗效原理。

选用家兔要有色的,因为白色家兔的虹膜颜色是白色,和角膜浅层瘢痕的颜色相似,对比度不鲜明。

还可在眼前房移植脏器后,观察激素对脏器的作用;移植卵巢皮质,可观察药物对排卵的影响。

5.发热、解热和检查致热源等实验研究:

家兔体温变化十分灵敏,最易产生发热反应,发热反应典型、恒定,因此常选用家兔进行这方面的研究。

(1)给家兔注射细菌培养液和毒素可引起感染性发热:

如给家兔皮下注射杀死的大肠杆菌或乙型副伤寒杆菌培养液,几小时即可引起发热,并持续12小时;给家兔静脉注射伤寒一副伤寒四联菌苗0.5~2.0ml/kg,菌苗含量应不低于100亿/ml,注射后1~2小时,即见直肠温度上升1~1.5℃,持续3~4小时。

(2)给家兔注射化学药品或异性蛋白等可引起非感染性发热:

如皮下注射2%二硝基酚溶液(30毫克)15~20分钟后开始发热,1~1.5小时达高峰,升高2~3℃;皮下注射松节油(0.4毫升)后18~20小时引起发热,约24~36小时达到高峰,升高1.5~2.0℃;肌注10%蛋白胨1.0g/Kg,可在2~3小时引起发热,体温升高显著;皮下注射消毒脱脂牛奶3~5ml,通常3小时后体温升高1~1.5℃。

(3)药品生物检定中热原的检查均选用家兔来进行。

热原是微生物及其尸体或微生物代产物,其化学成分为菌蛋白、酯多糖、核蛋白或这些物质的水解物。

如大肠杆菌提取的热原0.002微克/公斤,即能使家兔发热,因此,兔广泛应用于制药工业和人、畜用生物制品等各类制剂的热原质试验。

6.微生物学研究:

家兔对许多病毒和致病菌非常敏感,适用于各种微生物学的研究,如对过敏、免疫、狂犬病、天花、脑炎等的研究。

7.心血管和肺心病的研究:

家兔颈部神经血管和胸腔的特殊构造,很适合作急性心血管实验,如直接法记录颈动脉血压、中心静脉压,间接法测量冠脉流量、心博量、肺动脉和主动脉血流量等。

不适合复制

心血管和肺心病的各种动物模型。

如结扎家兔冠状动脉前降支复制实验性心肌梗塞模型;以重力牵拉阻断冠脉法复制家兔缺血性濒危心肌模型;通过选择阻断冠状动脉左室支位置的远近及牵拉重力的大小,可调整心肌梗塞的围及程度,故亦可复制心源性休克或缺血性心律紊乱型;静注乌头硷100~150mg、盐酸肾上腺素50~100μg/Kg,可诱发家兔心律失常;静注1%三氯化铁水溶液,每次0.5~4ml,每周2~6次,总剂量为25ml,注完后45天可形成肺心病;小剂量三氯化铁(11ml)加0.1%氯化镉生理盐水溶液雾化吸入,连续10次,雾化停止后10天可形成肺水肿。

也可采用兔耳灌流,离体兔心等方法来研究药物对心血管的作用。

8.皮肤反应实验:

家兔和豚鼠皮肤对刺激反应敏感,其反应近似于人。

常选用家兔皮肤进行毒物对皮肤局部作用的研究;兔耳可进行实验性芥子气皮肤损伤和冻伤烫伤的研究;化妆品对皮肤影响的研究,耳朵侧特别适宜皮肤的研究。

9.急性动物实验:

常选用家兔作失血性休克、肠毒素赶走的休克、微血管缝合、离体肠段和子宫的药理学实验、阻塞性黄疸实验、兔眼球结膜和肠系膜微循环观察实验、卵巢和胰岛等分泌实验以及进行离体兔耳和兔心的各种分析性研究等。

10.遗传性疾病和生理代失常的研究:

如进行软骨发育不全、低淀粉酶血症、维生素A缺乏、脑小症、动脉硬等研究。

同时也广泛应用于研究药物的致畸作用或其他干扰正常生殖过程的现象。

11.进行各种寄生虫病与畸形学的研究,

进行各种人用和畜用生物制品中的毒素、类毒素和病毒素皮肤反应试验,以及制品的效价试验、安全试验,进行化学工业上的急性和慢性毒素试验等。

5.比较SPF级与无菌实验动物在生物学特点、饲养管理等方面的异同。

无特定病原体(SpecificpathogenFree,SPF)动物是指机体无特定的微生物和寄生虫存在的动物,但非特定的微生物和寄生虫是容许存在的。

一般指无传染病的健康动物,空气洁净度要求一万级,是目前国外使用最广泛的实验动物,它的来源,既可来自无菌动物繁育的后裔,亦可经剖胎取后,在隔离屏障设施的环境中,由SPF亲代动物抚育。

它不带有对人或动物本身致病的微生物,但不能排除可经胎盘屏障垂直传播的微生物。

饲养时在温度恒定的屏障系统中,空气经过中效过滤,正压通风进入饲养

环境中的一切物品如饲料,垫料,饮水,笼具等,实验用品等均要求经过严格的灭菌处理,工作人员进入系统操作必须穿戴有消毒过的衣帽,鞋,手套,口罩等,饮水除用高压消毒外,还可采用ph2.5-2.8的酸化水或过滤净化水。

(一)形态学改变

1.消化系统:

主要变化在肠道

⑴无菌动物肠道肌层薄,更为特异的是盲肠肥大,比普通动物要大5-6倍。

无菌豚鼠的盲肠可达体重的1/3。

主要是由于肠壁薄、力低而增大。

由于盲肠膨大,肠壁菲薄,常因盲肠扭转或肠壁破裂而死亡。

如给无菌动物注入梭状芽孢杆菌则可缩小盲肠体积。

⑵肠粘膜绒毛增多。

⑶肝脏重量下降。

2.循环系统:

心脏相对缩小。

3.血液系统:

白细胞增加。

普通动物白细胞总数波动围大,无菌动物白细胞数值恒定。

4.网状皮系统:

脾脏缩小,无三级滤泡,网状皮细胞功能降低。

(二)生理学改变

1.免疫功能:

由于网状皮系统、淋巴组织发育不良,淋巴小结缺乏生发中心,产生丙种球蛋白的能力很弱(在检查无菌动物的无菌性时,血清丙种球蛋白阴性可以作为无菌的一个辅助证据),又因为体无微生物和寄生虫,血中无抗体,血清杀菌力低,吞噬细胞噬菌力也低,因此对微生物感染异常敏感,某些病原性弱和必须经腹腔或颅脑接种才能感染普通动物的微生物很容易感染无菌动物。

2.生长率:

无菌条件下对不同种属影响不同。

无菌鸟类生长率高于同种的普通鸟类;无菌大小鼠与普通鼠差不多;无菌豚鼠和无菌兔生长率比普通者慢。

因肠无菌,不能帮助消化纤维素以提供机体所需要的营养。

3.生殖:

无菌条件对动物的生殖影响不大。

大鼠和小鼠因出生无感染身体较好;无菌豚鼠及兔比普通者繁殖力低,可能因大盲肠之故。

4.代:

血中含氮量少,肠管对水的吸收率低,代周期比普通动物长。

5.营养:

与动物品种有关,豚鼠和兔的肠道长,故有影响。

无菌动物肠道上皮细胞更新率比一般动物低,肠壁的物质交换也较慢。

无菌条件下的各种动物通过胆汁排泄代产物的速率均减慢;如切除无菌动物的盲肠,则无菌动物与普通动物的差异缩小。

无菌豚鼠和无菌兔在切除盲肠后,其生殖率增加。

关于盲肠增大的原因,曾进行过许多研究,尚无明确结

果。

推测可能是因为饲料中的有毒物质刺激盲肠,使其增大加长、弹性减少。

正常情况下饲料中的毒性物质可被肠道菌分解。

无菌条件对兔及豚鼠的盲肠产生的影响最大,Sabourdy曾称量过无菌豚鼠的盲肠(连同肠容物),结果盲肠相当于豚鼠体重的1/3。

6.寿命:

无菌大鼠和小鼠比普通者长寿。

(一)无菌动物的饲料

无菌动物的饲料水必须符合下列要求:

1.没有活的微生物和寄生虫或虫卵,因此,必须经过充分的灭菌,一般多用高压灭菌。

有条件可用60钴照射灭菌,效果好,而且营养成份破坏少,保存时间长。

根据我们研究证明采用1.5-2.5Mrd60钴γ线照射的饲料灭菌效果显着,能保持无菌状态达4个月以上;营养成份破坏较高压灭菌法显着少,如维生素B243.7%、E17.5%、C8.5%、蛋白质11%、胱氨酸17.5%、赖氨酸14等;饲喂LACA小鼠和裸鼠后效果良好。

值得推广应用。

2.必须补充因高压灭菌而破坏的营养成份,如:

维生素B1、维生素C、泛酸等。

补充的营养成份用滤菌器过滤后加入饲料或饮水中饲喂。

为了减少营养成份的破坏,最好用放射线灭

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