分子生物学实验常用试剂配制.docx

分子生物学实验常用试剂配制.docx

《分子生物学实验常用试剂配制.docx》由会员分享，可在线阅读，更多相关《分子生物学实验常用试剂配制.docx（9页珍藏版）》请在冰豆网上搜索。

分子生物学实验常用试剂配制

分子生物学实验常用试剂配制

（1）0.01MPBS缓冲液：

一袋粉制PBS缓冲液（中杉有售）加1000ml蒸馏水。

0.01M磷酸盐缓冲液（PBS）配制方法

称取8gNaCl、0.2gKCl、1.44gNa2HPO4和0.24gKH2PO4,溶于800ml蒸馏水中，用HCl调节溶液的pH值至7.4，最后加蒸馏水定容至1L即可。

（2）0.01M枸橼酸盐缓冲液：

一袋粉制枸橼酸盐缓冲液（中杉有售）加1000ml蒸馏水。

0.01mol/L柠檬酸盐缓冲液（CB，pH6.0，1000ml）：

柠檬酸三钠3g，柠檬酸0.4g。

（3）1mol/L的TBS缓冲液（pH8.0）：

在800ml水中溶解121gTris碱，用1N的HCl调至pH8.0,加水至1000ml。

（4）1‰DEPC水：

1mlDEPC加入1000ml新鲜三蒸水中，剧烈震荡20分钟使充分混匀，37oC至少放置2h或过夜，HIRAYAMAHV-50高压灭菌器高温高压30分钟降解DEPC，4℃保存。

（5）1%琼脂糖凝胶：

取琼脂糖0.2g置烧杯中，加入20ml的1×TAE缓冲液，封闭锥形瓶口，放入微波炉内加热，不时摇动，使附于瓶壁上的琼脂糖颗粒进入溶液，待琼脂糖全部熔化后取出摇匀，冷却至60℃左右，加入10mg/ml溴化乙锭（EB）1µl，EB的终浓度为0.5μg/ml，充分混匀。

将温热的凝胶倒入已经放好梳子的凝胶槽中，厚度约为3-5mm，注意不要有气泡，将凝胶放置室温待其自然凝固。

凝固后从胶槽中轻轻取出梳子。

（6）0.5mol/LEDTA缓冲液（pH8.0）：

700ml水中溶解186.1gEDTA·2H2O，用10mmol/LNaOH调至pH8.0，加水至1000ml。

（7）50×TAE缓冲液：

Tris碱242g，17.4mol/L冰乙酸57.1ml，0.5mol/LEDTA（PH8.0）100ml加蒸馏水至1000ml。

（8）30%储备胶溶液：

溶解29g丙烯酰胺和1gN,N’-亚甲基甲叉双丙烯酰胺于双蒸水中，搅拌至充分溶解后，定容至100ml。

过滤后于4℃避光保存。

（9）1.5mol/L（PH8.8）Tris-HCl缓冲液：

称取Tris18.2g，加入50ml水，用1mol/L盐酸调PH至8.8，最后用双蒸水定容至100ml。

（10）1.0mol/L（PH6.8）Tris-HCl缓冲液：

称取Tris12.1g，加入50ml水，用1mol/L盐酸调PH至6.8，最后用双蒸水定容至100ml。

（11）10%SDS：

电泳级SDS10g加双蒸水，68℃助溶，浓盐酸调PH至7.2，定容至100ml。

（12）10%过硫酸铵（AP）：

0.1gAP，加入双蒸水1ml，4℃保存一周。

最好现用现配。

（13）5×聚丙烯酰胺凝胶电泳缓冲液（PH8.3）：

在900ml双蒸水，加入Tris碱15.2g，待溶解后，加甘氨酸94g，最后加SDS5g，盐酸调PH值到8.3，定容至1000ml。

（14）2×SDS加样缓冲液：

1mol/LTris-HCL（PH=6.8）1ml，DTT0.308g，10%SDS4ml，溴芬兰0.02g，甘油2ml，定容至10ml。

置4℃避光保存或-20℃保存。

（15）转膜缓冲液：

双蒸水将甘氨酸2.9g，Tris5.8g和SDS0.37g溶解后，加甲醇200ml，最后定容至1000ml。

（16）0.01MTBS缓冲液：

一袋粉制TBS缓冲液加1000ml双蒸水。

（17）漂洗液（TBST缓冲液）：

20%Tween1.65ml，加1‰TBS缓冲液700ml。

（18）考马斯亮蓝G250染液：

90ml甲醇：

水（1：

1，V/V）和10ml冰乙酸的混合液中溶解G250马斯亮蓝0.25g，用Whatman1号滤纸过滤染液以去除颗粒状物质。

（19）考马斯亮蓝洗脱液：

90ml甲醇：

水（1：

1，V/V）和10ml冰乙酸的混合液。

（20）10×丽春红S染液：

丽春红0.2g，三氯乙酸3g，磺基水杨酸3g，加双蒸水至100ml。

临用前稀释10倍。

（21）丽春红S染液脱色液：

0.01MTBS缓冲液.

（22）封闭液：

脱脂奶粉（完达山牌）5g，加TBST100ml。

RT-PCR实验

注意事项：

1.由于本实验是检测细胞内mRNA，要防止RNA酶的污染，一旦污染会导致所检测的结果不准确，需要对实验所用材料、器皿等进行灭RNA酶处理。

2.实验中所用Eppendorf管、移液头的处理：

1‰DEPC水浸泡过夜，120℃高压蒸汽灭菌20分钟。

70℃烤箱内烤干备用；

3.实验中所用玻璃器皿的处理：

硫酸-重铬酸钾混合液中浸泡24小时，自来水充分冲洗，蒸馏水冲洗，1‰DEPC水浸泡过夜，120℃高压蒸汽灭菌20分钟；

4.实验中所用金属器皿清洗后，使用前一天经170℃干烤过夜；橡胶塞经清洗后，120℃高压蒸汽灭菌20分钟。

细胞总RNA的提取（TRIquikReagent法）

（1）取对数生长期的培养细胞，用0.25%的胰蛋白酶消化后离心，沉淀加入1.0ml的TRIquik，用枪头抽吸混匀后转移到无菌1.5mlEppendorf管中；

（2）将样品在室温放置5min，使得核酸蛋白复合物完全分离；

（3）向样品中加入0.2ml氯仿，盖好管盖，剧烈振荡15s，室温放置3-5min，使其自然分相；

（4）台式离心机上，12,000rpm，4℃离心10-15min。

样品会分成三层：

黄色的有机相，中间层和无色的水相，RNA主要在水相，把水相转移到新管中；

（5）在上清中加入等体积冰冷的异丙醇，混匀室温放置10-20min；

（6）台式离心机上，12,000rpm，4℃离心10min。

去上清。

离心前RNA沉淀经常是看不见的，离心后在管侧和管底形成胶状沉淀；

（7）加入1ml75%乙醇（用RNase-free的水配置）洗涤沉淀。

每使用1mlTRIquick至少加1ml75%乙醇；

（8）4℃7,000rpm离心5min，弃上清；短暂快速离心，用移液器小心吸弃上清；

（9）室温放置晾干（不要凉的过干，RNA完全干燥后会很难溶解，大约晾干1-2分钟左右即可），加入适量RNase-free水（根据实验需要加入30-100μl水），充分溶解RNA；

（10）RNA样品-70℃保存或继续下续实验。

总RNA的提取

1.上海生工生物技术有限公司UNIQ-10柱式Trizol法

（1）取组织100mg，迅速置于已用DEPC处理过的研钵中，在液氮中将组织研成细粉末，趁液氮尚未挥发光时，将粉末转移到1.5ml离心管中，加入1.0ml的Trizol，用枪头抽吸混匀；

（2）用1ml针筒，26-G号（φ4.5）针头抽吸匀浆液15-20次，以剪切基因组DNA，然后直接从针筒中将样品转移到无菌1.5mlEppendorf管中；

（3）加入100μl氯仿/异戊醇（24：

1），剧烈振荡混匀30秒；

（4）台式离心机上，12,000rpm，室温离心5分钟；

（5）将上清液（约450μl）小心转移到无菌1.5mlRNase-free离心管里，加入150μl无水乙醇，混匀；

（6）将上述溶液全部转移到套放于2ml收集管内的GenClean柱中，室温放置2分钟，8,000rpm离心1分钟；

（7）小心取出柱子，弃去收集管中的废液，将柱子放回收集管中，加入450μlRPESolution，10,000rpm，室温离心30秒；

（8）重复步骤7一次；

（9）小心取出柱子，弃去收集管中的废液，将柱子放回收集管中，10,000rpm，室温离心30秒；

（10）小心取出柱子，放入无菌RNase-free的1.5ml离心管里，在柱内膜的中央小心加入40μlDEPCH2O，55~80℃放置2分钟（室温放置产率约低20%左右）；

（11）8,000rpm，室温离心1分钟。

收集管内的溶液即为RNA样品，可立即使用或者-70℃保存。

2.Trizol法

（1）取组织100mg，迅速置于已用DEPC处理过的研钵中，在液氮中将组织研成细粉末，趁液氮尚未挥发光时，将粉末转移到1.5ml离心管中，加入1.0ml的Trizol，用枪头抽吸混匀；

（2）用1ml针筒，26-G号（φ4.5）针头抽吸匀浆液15-20次，以剪切基因组DNA，然后直接从针筒中将样品转移到无菌1.5mlEppendorf管中；

（3）加入200μl氯仿，剧烈震荡混匀30秒；

（4）台式离心机上，12000rpm，室温离心5分钟；

（5）将上清液（约450μl）小心转移到无菌1.5mlRNase-free离心管里，加入等体积的异丙醇，混匀后室温放置5分钟；

（6）台式离心机上，12000rpm，室温离心5分钟；

（7）小心移去上清液，防止RNA沉淀丢失；

（8）用70%酒精洗涤两次，每次700μl，12000rpm，室温离心2分钟；

（9）尽可能的吸走上清液，防止RNA丢失；

（10）室温下干燥3-5分钟，使酒精完全挥发；

（11）沉淀用30μlDEPC-H2O溶解，68℃放置10分钟；离心管中的溶液即为RNA样品，可立即使用或者-70℃保存。

RT-PCR

一、逆转录（RT）获得第一链cDNA

（1）每次RT反应中，按下表加入各组分：

总RNA

2μl

Primer（0.5μg/μl）

1μl

RNase-freeH2O

8μl

（2）轻轻混匀，离心3~5秒，70℃反应5分钟，然后迅速置于冰上5分钟；

（3）顺次加入如下组分：

5×ReactionBuffer

4μl

RNaseInhibitor（20U/μl）

1μl

dNTPMix（10mmol/L）

2μl

（4）轻轻混匀，离心3-5秒，25℃反应5分钟；

（5）加入：

M-MLV逆转录酶（20U/µ）l

1μl

（6）轻轻混匀，离心3-5秒，25℃反应10分钟，37℃反应60分钟，70℃10分钟终止反应，保存于-20℃备用或直接用于后续实验。

二、PCR反应

（1）50μlPCR反应体系：

10×PCRBuffer

MgCl2（25mmol/L）

5μl

3μl

dNTPMix（10mmol/L）

5μl

cDNA

4μl

SterilizedddH2O

30.5μl

FP

1μl

RP

1μl

TaqDNApolymerase（1U/μl）

0.5μl

总体积

50μl

（2）PCR反应条件：

（根据实验所需设定，不同的目的基因反应条件不同）

94℃

4分钟

1个循环

94℃

15秒

40个循环

58℃

30秒

72℃

90秒

72℃

10分钟

1个循环

4℃

10分钟

1个循环

（3）PCR琼脂糖凝胶电泳：

PCR反应结束后，取5μl反应产物与6×Loadingbuffer1μl混匀后，微量移液器加入1%的琼脂糖凝胶样品孔中，接通电极，使DNA在100V恒压下向阳极泳动15分钟；

（4）电泳结束后取出凝胶，于BiospectrumAC凝胶成像分析系统下照相并扫描分析。

Western印迹

1蛋白样品制备

1.1组织蛋白的提取

（1）将100mg组织块置于1-2ml匀浆器中球状部位，用干净的剪刀将组织块尽量剪碎；

（2）加1000μl细胞裂解液于冰上匀浆器中进行匀浆15次。

尽量匀浆要碎；

（3）取0.5ml的组织均浆液至一个1.5ml的EP管中；

（4）加1ml抽提试剂液混匀，4℃静置10分钟，4℃10000rpm离心5分钟；

（5）弃掉上下层的液体，管内留蛋白膜，开管口，室温10分钟，空气干燥；

（6）加2%的SDS500μl溶解后，100℃3分钟变性。

4℃12000rpm离心5分钟；

（7）取上清分装于200μl离心管中并置于-20℃保存。

1.2考马斯亮兰法检测蛋白浓度

（1）组织匀浆的制备：

将新鲜组织用冷生理盐水冲洗血迹，然后用滤纸吸干。

准确称取100mg，加100ml生理盐水，用玻璃匀浆器研磨组织，制备成10%的组织匀浆，3000转/分，离心10分钟，然后取组织匀浆上清再用生理盐水按1：

9稀释成1%的组织匀浆，或用生理盐水按1：

4稀释成2%的匀浆，待测；

（2）测定蛋白：

空白管

标准管

测定管

蒸馏水（ml）

0.05

0.615g/L标准液（ml）

0.05

样品（ml）

0.05

考马斯亮兰显色剂（ml）

3.0

3.0

3.0

混匀各管，静止10分钟，于595nm处，1cm光径，空白管调零，测各管OD值；

（3）计算蛋白浓度：

蛋白含量（g/L）=（测定管吸光度/标准管吸光度）×标准管浓度（g/L）。

1.3SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）

（1）将电泳用的玻片清洗干净后，固定在制胶槽上，用水检测制胶槽是否漏水。

若不漏即可制胶。

（2）制胶

1）凝胶的制备

分离胶（12%，5ml）

积层胶（5%，2ml）

ddH2O

1.6ml

0.4ml

30%Acr

2.0ml

0.33ml

Buffer

1.5mol/LpH=8.8

Tris-HCl1.3ml

1.0mol/LpH=6.8

Tris-HCl0.25ml

10%SDS

50μl

20μl

10%AP

50μl

20μl

TEMED

2μl

2μl

2）按上述方法配制12％分离胶，用5ml注射器吸取5ml迅速将分离胶溶液灌注到电泳仪两层玻璃板之间，留出积层胶空间，加水隔绝空气；

3）当水和胶之间有一条折射线时，说明胶已凝。

再等3分钟使胶充分凝固，倒去上层水并用滤纸将水吸干；

4）按上述方法配制5％的积层胶。

将剩余空间灌满积层胶然后将梳子插入积层胶中。

灌胶时也要使胶沿玻璃板流下以免胶中有气泡产生。

插梳子时要使梳子保持水平。

待到积层胶凝固后，两手分别捏住梳子的两边竖直向上轻轻将其拔出；

5）用水冲洗一下积层胶，将其放入电泳槽中；

（3）电泳

1）样品10µl+2×上样buffer10µl共20µl，4℃12000g离心10分钟。

取上清上样；

2）电泳：

积层胶时用80V恒压电泳，待溴酚兰前沿进入分离胶后，电压改为120V继续电泳，总时间2小时左右。

电泳至溴酚兰达分离胶底部，关电源。

1.4转膜（半干转法）

（1）浸泡PVDF膜：

约剪一块与胶大小差不多的PVDF膜浸于无水甲醇溶液中15秒；浸于去离子水中3分钟；浸于转移缓冲液中3分钟。

将Whatman滤纸剪的比PVDF膜略小一些，也浸入转移液中。

（2）切胶：

将胶卸下，蛋白Marker14-72KD所在凝胶部分行考马斯亮蓝染色，左上切角，在转移液中稍稍浸泡一下，置于洁净玻璃板上，按三次滤纸-胶-膜-三次滤纸的顺序制成三明治。

注意用玻棒逐出气泡，剪去滤纸与膜的过多部分。

（3）转膜：

将上述制好的三明治转移至半干转转膜仪上，负载电压25mv，时间45分钟。

1.5封闭

　　将膜从电转槽中取出，先用丽春红染色观察蛋白条带，再用去离子水和TBST将丽春红洗脱后，浸没于5％奶粉封闭液中缓慢摇荡一小时。

1.6杂交

（1）将膜置于1：

300的多克隆兔抗人Cx43抗体2ml或1：

1000稀释的抗β-actin单克隆抗体中4℃孵育过夜；

（2）用1‰TBST在摇床上摇动漂洗膜三次，每次15分钟；。

（3）将膜置于HRP标记的山羊抗兔IgG（1:

1000）2ml中室温轻摇孵育2小时；

（4）1‰TBST摇动漂洗膜三次，每次15分钟；

（5）ECL发光试剂盒显影、X片感光后显影定影。

清水冲净晾干。

1.7结果判定：

应用BiospectrumAC凝胶成像分析系统扫描、用凝胶定量软件QuantityOne测定各组目的蛋白和β-actin的积分灰度值。

数据处理时用各组积分灰度值除以内参照β-actin条带的积分灰度值获得相对积分灰度值的比值。

细胞基因组DNA的提取

动物组织/细胞基因组DNA提取试剂盒法

使用前先在漂洗液中加入无水乙醇，所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。

（1）细胞先用胰酶消化处理，再用预冷的PBS吹打成细胞悬液，取1×107个悬浮培养的细胞，然后12000rpm离心1min收集细胞。

尽量去除上清，加200μl溶液A，振荡至彻底悬浮；

（2）向悬浮液中加入20μl10mg/ml的RNaseA，55℃放置15min；

（3）加入20μl10mg/ml的蛋白酶K，充分混匀，55℃水浴消化。

消化期间可颠倒离心管混匀数次，直至样品消化完全为止。

消化完全的标志是：

液体清亮及粘稠；

（4）加入200μl溶液B，充分混匀；

（5）加入200μl无水乙醇，充分混匀，此时可能会出现絮状沉淀，不影响DNA的提取，可将溶液和絮状沉淀都加入吸附柱中；

（6）12000rpm离心1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中；

（7）向吸附柱中加入700μl漂洗液（使用前请先检查是否已加入无水乙醇），12000rpm离心1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中；

（8）向吸附柱中加入500μl漂洗液，12000rpm离心1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中；

（9）12000rpm离心2min，将吸附柱置于室温或50℃温箱放置数分钟，目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除，否则漂洗液中的乙醇会影响后续的实验；

（10）将吸附柱放入一个干净的离心管中，向吸附膜中央悬空滴加50~200μl经75℃水浴预热的洗脱液，室温放置5min，12000rpm离心1min；

（11）离心所得洗脱液再加入吸附柱中，室温放置2min，12000rpm离心2min，即可得到高质量的基因组DNA。