整理硕士研究生分子生物学实验讲义.docx
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整理硕士研究生分子生物学实验讲义
1.环境总经济价值的构成
环境影响的经济损益分析，也称环境影响的经济评价，即估算某一项目、规划或政策所引起的环境影响的经济价值，并将环境影响的经济价值纳入项目、规划或政策的经济费用效益分析中去，以判断这些环境影响对该项目：
规划或政策的可行性会产生多大的影响。
对负面的环境影响估算出的是环境费用，对正面的环境影响估算出的是环境效益。
1）规划实施对环境可能造成影响的分析、预测和评估。
主要包括资源环境承载能力分析、不良环境影响的分析和预测以及与相关规划的环境协调性分析。
D.可能造成轻度环境影响、不需要进行环境影响评价的建设项目，应当填报环境影响登记表
2）按发布权限分。
环境标准按发布权限可分为国家环境标准、地方环境标准和行业环境标准。
（3）环境影响评价中应用环境标准的原则。
（3）专项规划环境影响报告书的内容。
除包括上述内容外，还应当包括环境影响评价结论。
主要包括规划草案的环境合理性和可行性，预防或者减轻不良环境影响的对策和措施的合理性与有效性，以及规划草案的调整建议。
（6）环境影响评价结论的科学性。
（5）公众意见采纳与不采纳的合理性；
3）按行业分。
国家污染物排放标准分为跨行业综合性排放标准和行业性排放标准。
分子生物学实验讲义
（硕士研究生试用）
山西医科大学
基础医学院
生物化学与分子生物学实验室
2010.6
实验一动物组织蛋白质的提取
【目的要求】
1．掌握动物组织蛋白质的提取方法。
2．了解动物组织蛋白质提取的原理。
【实验原理】
由于蛋白质种类很多，性质上的差异很大，即或是同类蛋白质，因选用材料不同，使用方法差别也很大，且又处于不同的体系中，因此不可能有一个固定的程序适用各类蛋白质的分离。
但多数分离工作中的关键部分基本手段还是共同的，大部分蛋白质均可溶于水、稀盐、稀酸或稀碱溶液中，少数与脂类结合的蛋白质溶于乙醇、丙酮及丁醇等有机溶剂中。
因此可采用不同溶剂提取、分离及纯化蛋白质。
蛋白质在不同溶剂中溶解度的差异，主要取决于蛋白分子中非极性疏水基团与极性亲水基团的比例，其次取决于这些基团的排列和偶极矩。
故分子结构性质是不同蛋白质溶解差异的内因。
温度、pH、离子强度等是影响蛋白质溶解度的外界条件。
提取蛋白质时常根据这些内外因素综合加以利用，将细胞内蛋白质提取出来，并与其它不需要的物质分开。
但动物材料中的蛋白质有些以可溶性的形式存在于体液（如血浆、消化液等）中，可以不必经过提取直接进行分离。
蛋白质中的角蛋白、胶原及丝蛋白等不溶性蛋白质，只需要适当的溶剂洗去可溶性的伴随物，如脂类、糖类以及其他可溶性蛋白质，最后剩下的就是不溶性蛋白质。
蛋白质经细胞破碎后，用水、稀盐酸及缓冲液等适当溶剂，将蛋白质溶解出来，再用离心法除去不溶物，即得粗提取液。
【试剂器材】
1．实验小鼠
2．0.9%NaCl
3．动物组织蛋白裂解缓冲液
Tris50mM
NaCl150mM
EDTA0.5mM
DTT1mM
TritonX-1001%
去氧胆酸钠0.5%
SDS0.1%
4．PMSF/异丙醇储备液100mM（174mg/10ml）于-20℃储存
5．-20℃储存的冰块
【操作步骤】
1.颈椎脱臼处死小鼠，75%酒精擦拭皮肤，剪开腹部，剪切肝脏组织，称取0.6g，置于含预冷0.9%NaCl（6mL）的平皿中。
2.在平皿中剪碎肝脏组织，并转移到匀浆器中。
3.在预冷的裂解缓冲液中添加PMSF/异丙醇储备液（20µL/2mL）。
4.迅速将2mL预冷的裂解缓冲液加入匀浆器中，冰浴条件下充分研磨。
5.将组织研磨液转移到1.5mL的离心管中，于4℃离心（14000rpm，10min）。
6.离心完毕吸取上清液转移至一新的1.5ml离心管中，即为组织蛋白粗提取液。
7.所获蛋白提取液可保存于-20℃用于后续实验或用考马斯亮蓝等方法进行蛋白质浓度测定后保存备用。
【注意事项】
在整个制备过程中使组织始终处于冰浴状态，以防蛋白质的降解。
实验二蛋白质的定量（Bradford法）
【目的要求】
掌握考马斯亮蓝（CoomassieBrilliantBlue）法测定蛋白质含量的原理和方法。
【实验原理】
考马斯亮蓝法测定蛋白质浓度是利用蛋白质与染料结合的原理，定量测定微量蛋白质浓度，具有快速、灵敏的特点。
考马斯亮蓝G-250存在两种不同的颜色形式：
红色和蓝色。
当染料与蛋白质结合后由红色转变成蓝色形式。
蛋白质与G250的结合是通过范德华力实现的，并且在一定浓度范围内二者的结合显色符合朗伯-比尔定律。
结合后的产物在595nm处具有最大吸收峰，通过对溶液的光吸收测定可获得与其结合蛋白质的量。
【试剂器材】
1.考马斯亮蓝试剂：
考马斯亮蓝G-250100mg溶于25mL甲醇中，加入800mL蒸馏水，再加入100mL85％磷酸，用蒸馏水稀释至1000mL，滤纸过滤。
2.标准蛋白质溶液（1mg/mL）：
牛血清白蛋白100mg，加0.9％NaCl至100mL。
3.试管及试管架，吸管。
4.比色计。
【操作步骤】
一、标准曲线的制备：
取5支试管，编号，按下表操作
编号1号液2号液3号液4号液5号液
标准蛋白质溶液（mL）0.20.40.60.81.0
（1mg/mL）
0.9％NaCl（mL）0.80.60.40.2－
蛋白质浓度2004006008001000
（μg/mL）
另取6支试管，编号为0～5，按下表操作
编号012345
1号液2号液3号液4号液5号液
不同浓度蛋白质溶液（mL）－0.10.10.10.10.1
0.9％NaCl（mL）0.1－－－－－
考马斯亮蓝试剂（mL）555555
蛋白质含量（μg）020406080100
混匀各管，室温下静置10分钟，于595nm处进行比色。
二、绘制标准曲线：
以A595nm为纵坐标，标准蛋白质含量为横坐标，在坐标纸上绘制标准曲线。
三、测定未知样品蛋白质浓度：
测定方法同上，取适量未知样品，使其测定值在标准曲线的直线范围内。
根据所测定的A595nm值，在标准曲线上查出其相当于标准蛋白质的量，从而计算出未知样品的蛋白质浓度。
【注意事项】
1．在考马斯亮蓝试剂加入后的5－20分钟内测定光吸收，因为在此段时间内颜色最稳定。
2．测定中，蛋白—染料复合物会有少量吸附于比色杯壁上，实验证明此复合物的吸附量是可以忽略的，测定后可用乙醇将比色杯洗干净。
实验三SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳
【目的要求】
1.了解并掌握SDS-PAGE电泳原理及方法。
2.掌握垂直板电泳的操作方法。
【实验原理】
十二烷基硫酸钠（SDS）—聚丙烯酰胺凝胶（PAGE）电泳可根据蛋白质分子大小的差别分离蛋白质，并可测定蛋白质的相对分子量，其原理主要与电泳过程中存在的特殊物理效应有关：
1．凝胶的分子筛效应：
聚丙烯酰胺凝胶是在催化剂的作用下聚合而成的具有网状立体结构的微孔凝胶，蛋白质颗粒在电场中通过此凝胶时，会受到阻碍。
大分子蛋白质受到的阻力大，电泳速度小，而小分子蛋白质受到的阻力小，移动快，因而最终在凝胶中得以分离。
2．电荷效应：
SDS是一种表面活性剂，在蛋白样品和PAGE凝胶中加入SDS，则能与蛋白质分子上的疏水基团结合，使蛋白质表面覆盖一层SDS分子。
由于十二烷基硫酸根带有大量负电荷，且电荷量远远超过蛋白质分子原有的带电量，因而掩盖了蛋白质分子本身的电荷差别，使各种SDS-蛋白质复合物都带有均等密度的负电荷，分子之间的电荷差异消失。
3．变性效应：
SDS同时还破坏了蛋白质中的非共价键，导致蛋白质变性，使SDS-蛋白质复合物在溶液中呈现相似的形状。
因此，蛋白质在SDS-PAGE凝胶中的电泳迁移率不再受蛋白质原有电荷和形状的影响，而主要取决于分子量的大小。
在进行SDS-PAGE电泳时，同时使用蛋白质分子量标准样品，则可以在电泳完毕后根据标准分子量大小得知样品蛋白质的相对分子量。
4．凝胶对样品的浓缩效应：
SDS-PAGE使用一种不连续的缓冲系统，即分为低浓度的浓缩胶和较高浓度的分离胶，配制这两种凝胶所用缓冲液的pH值和离子强度也不相同。
电泳时，样品中的SDS-蛋白质复合物首先经过浓缩胶，体积得到极大的浓缩，然后再经过分离胶被分离。
SDS-PAGE凝胶已经成为实验室常用的蛋白质分离方法，通常被用于蛋白质制品纯度的鉴定和蛋白质分子量的测定。
【试剂器材】
1．30%凝胶贮备液 称取30g丙烯酰胺和N，N′-亚甲双丙烯酰胺0.8g，用去离子水配制成100ml的溶液，过滤，贮存于棕色瓶中，4℃冰箱保存。
2．10%凝胶贮备液 称取10g丙烯酰胺和N，N′-亚甲双丙烯酰胺0.5g，用去离子水配制成100ml的溶液，过滤，贮存于棕色瓶中，4℃冰箱保存。
3．10%SDS 用去离子水配制，贮存于室温中。
4．1%TEMED（N,N,N’,N’-四甲基乙二胺）。
5．10%过硫酸铵 用去离子水在临用前配制。
6．Tris-甘氨酸电泳缓冲液（pH8.3）：
Tris 6.0g
甘氨酸 28.8g
10%SDS溶液 10ml
用蒸馏水定容至 1000ml
7．1.5mol/LpH8.8Tris-HCl缓冲液 称取Tris181.5g，加适量蒸馏水溶解，用浓HCl调节pH值至8.8，加蒸馏水至1000ml。
8．0.5mol/LpH6.8Tris-HCl缓冲液 称取Tris60.6g，加500ml蒸馏水溶解，用浓HCl调节pH值至6.8，加蒸馏水至1000ml。
9．0.05mol/LpH8.0Tris-HCl缓冲液 称取Tris6.1g，加500ml蒸馏水溶解，用浓HCl调节pH值至8.0，加蒸馏水至1000ml。
10．2×样品缓冲液：
蔗糖4g
溴酚蓝2mg
10%SDS溶液2ml
5%β－巯基乙醇0.5ml
0.05mol/LTris-HCl（pH8.0）2ml
用蒸馏水定容至10.0ml
11．0.25%考马斯亮蓝R250 将2.5g考马斯亮蓝R250溶解于450ml甲醇中，再加入450ml蒸馏水和100ml冰乙酸，混匀，过滤除去颗粒物质。
12．洗脱液 将50ml甲醇和75ml冰乙酸溶解于875ml蒸馏水中，混匀。
13．预染蛋白质分子量标准:
117kD、90kD、49kD、35kD、26kD、19kD共6种蛋白质
14．电泳槽、电泳仪、扫描仪、染色缸、摇床、一次性手套、微量加样器等。
【操作步骤】
1．制备凝胶
（1）准备玻璃板，洗净、晾干。
按电泳槽使用说明装好，按下表配制12%分离胶溶液和5%浓缩胶溶液：
表3-1：
浓缩胶与分离胶的配制
溶液成分12%分离胶溶液（ml）5%浓缩胶溶液（ml）
30%凝胶贮备液 4.0－
10%凝胶贮备液 －2.5
1.5mol/LpH8.8Tris-HCl2.5－
0.5mol/LpH6.8Tris-HCl－1.25
10%SDS 0.10.05
1%TEMED 0.80.4
蒸馏水2.50.75
10%过硫酸铵0.10.05
总体积10.05.0
（2）小心将分离胶注入准备好的玻璃间隙中，并为浓缩胶留有空间。
轻轻在顶层加入几毫升去离子水，以阻止空气中的氧对凝胶聚合的抑制作用。
（3）凝胶聚合后，倒掉上层水，用滤纸吸干凝胶顶端的水。
（4）按表3-1配制浓缩胶，注入分离胶上端，插入梳子，应小心避免产生气泡。
2．点样
（1）待测蛋白样品的制备：
若样品为水溶液，且蛋白质含量大于10mg/ml，可将待测液与样品缓冲液等体积混匀，100℃加热3min。
（2）浓缩胶聚合后，拔去梳子，将凝胶放入电泳槽中；在上、下槽中加入电泳缓冲液。
（3）将样品混合液、标准蛋白按次序加入梳孔中。
3．电泳
起始电压为8V/cm，当染料进入分离胶后，将电压调至15V/cm，继续电泳至溴酚蓝到达分离胶底部，关闭电源。
4．染色
取下凝胶，将凝胶浸泡于考马斯亮蓝染色液中，在摇床上室温缓慢摇动30～60min。
5．脱色
换洗脱液，于摇床上室温缓慢摇动1～2小时，其间更换1～2次洗脱液。
洗脱后的凝胶可以照像或干燥，也可置于含有20%甘油的水中密闭保存。
【注意事项】
1．SDS-PAGE电泳要求样品的离子强度尽量要低，如果离子强度过高，应经透析或离子交换除盐后再进行电泳。
2．丙烯酰胺试剂是一种神经毒素，可通过皮肤吸收，会因多次积蓄而中毒。
操作时应极其小心，需要带一次性手套。
3．上样量以10～15μl为宜，如果样品蛋白含量过少，为保证区带清晰，可增加上样量，同时应将样品缓冲液浓度提高二倍或更高。
4．溴酚蓝染料是指示剂，为电泳时可见的迁移标志物。
5．凝胶聚合的时间与温度有关，夏天聚合快，可置于冰浴中减慢聚合；冬天室温低，可放入温箱中加快聚合。
实验四蛋白质转印实验（半干式）
【目的要求】
1．掌握半干式蛋白质转印技术的基本操作。
2．掌握蛋白质转印后的检测方法。
【实验原理】
蛋白质印迹（Westernblotting）是将蛋白质电泳分离技术与免疫标记技术结合所形成的一种鉴定特异性抗原的方法。
蛋白质转印应先将含某抗原的蛋白混合物进行SDS-聚丙烯酰胺凝胶（SDS-PAGE）电泳，使各种蛋白成分根据分子量的不同分离开来；再通过电转移将各种蛋白成分转印到硝酸纤维素膜（NC）或PVDF膜上；通过特异试剂（抗体）作为探针，与膜上的相应抗原发生结合，再与酶标记的抗Ig抗体结合，洗涤后加入底物进行显色。
根据显色条带的位置和深浅，可以对抗原及其分子量或相对含量进行检测。
蛋白质的Western印迹技术结合了凝胶电泳的高分辨率和固相免疫测定的特异敏感等多种优点，可检测到低至1-5ng的靶蛋白。
本实验的主要目的是采用半干式电转移将SDS-PAGE凝胶电泳分离后的蛋白质从凝胶转移至固相支持材料上。
裁剪与凝胶一样大小的硝酸纤维素膜，用去离子水浸湿后，再浸入转移缓冲液内，随后取出进行转移（半干式电转移在室温操作，所需时间较短）；将凝胶及与之相贴的硝酸纤维素膜夹于事先用转移缓冲液浸泡过的滤纸之间，平放在电转仪上，负极在上，正极在下，凝胶在阴极端，薄膜在阳极端，转移方向从阴极到阳极；根据凝胶面积设置电流，室温下进行转移；转移结束，取出薄膜，丽春红染色检测转印效果。
【试剂器材】
1．半干式电泳转印槽
2．硝酸纤维素膜
3．滤纸
4．转移电泳仪
5．培养皿
6．万向旋转摇床
7．转印缓冲液
【操作步骤】
1．将电泳后的SDS-PAGE凝胶浸在转印缓冲液中，洗10min。
2．去掉浓缩胶，测量剩余胶的尺寸大小。
3．剪1张和胶大小一致的硝酸纤维素膜，用铅笔在膜的右下角做一个标记，用于定位。
剪6张和胶大小一致的滤纸（尺寸一定不能大于胶的尺寸，否则多出的部分会在胶的边缘接触，形成短路，导致转移不充分）。
4．将膜及滤纸在转印缓冲液中浸润10min。
5．将3张湿滤纸放到半干电转仪的底部平板电极上（负极），然后依次放置胶、硝酸纤维素膜、滤纸（3张），注意堆放整齐，同时注意每层之间避免气泡存在，一般可用试管碾压赶走气泡（注意：
一旦胶和膜接触，位于胶表面的蛋白就会结合到膜上，所以胶一定要一次成功，不要试图调整胶的位置，否则蛋白质色带可能会印上去，最后产生重迭影像）。
6．待所有的膜和胶都放好后，盖上转印仪的上盖，让上部的平板电极压紧由滤纸、膜、胶形成的三明治结构（注意正负极，转印结束后，才可以打开上盖）。
7．连接转移电泳仪，电流通常设为1mA/cm2左右。
8cmX7cm的胶通常使用100mA恒流转移。
大胶必须限制电流在0.8mA/cm2，防止电流过大，产生过多热量，影响转印。
转印时间如下表所示。
表4-1转印时间和蛋白分子量的关系*
分子量（MW）
转印时间
<20kDa
30分钟
20kDa~80kDa
60分钟
>80kDa
90分钟
*以8X7cm的迷你胶在100mA恒流的条件为例
8．转印结束，取出转印三明治，打开后依次取出转印膜及凝胶。
9．将转印膜浸入丽春红染色液中，观察是否有红色蛋白条带出现；转印后的凝胶可以进行考马斯亮蓝染色，看有无蛋白质残留；若电泳时加有预染标准蛋白质marker，则可在转印膜上看到相应色带，帮助确定转印成功，并可评估转印效率。
10．若继续进行免疫杂交实验，则用去离子水漂洗转印膜后可进行封闭。
【注意事项】
1.不要切去胶的一角以作标记，因为这样容易导致短路或转移不充分。
尽可能在电泳结束后就进行转印，防止样品在胶内弥散开来。
2.丙烯酰胺浓度越低，蛋白越容易转移下来。
所以应选择可以分离蛋白最低浓度的凝胶进行电泳。
梯度胶适用于转印一系列不同大小的蛋白，因为凝胶的孔与不同大小的蛋白匹配良好。
3.蛋白质结合到硝酸纤维素膜上主要是通过疏水键，对于常规使用效果非常好。
但对于小的多肽，建议使用小孔径（0.2μm）的膜。
4.PVDF膜比硝酸纤维素膜更疏水，在转印过程中结合蛋白更紧密，可以耐受更多的SDS。
目前，PVDF膜一般比硝酸纤维素膜需要更严谨的封闭条件，适用于蛋白测序。
尼龙膜通过疏水和静电相互作用结合，其SDS耐受度甚至高于PVDF膜，但也需要更严谨的封闭条件，主要建议用于Northern和Southern杂交。
实验五质粒DNA的提取（碱裂解法）
【目的要求】
1．掌握碱裂解法制备质粒DNA的原理和方法,进一步认识质粒DNA的性质。
2．初步掌握分子克隆基本操作技术。
【实验原理】
质粒（plasmid），是能在染色体外自我复制的稳定共生型遗传单位，主要存在于细菌、放线菌、真菌和某些动植物细胞中。
它能在细菌中垂直遗传，且保持稳定的拷贝数，赋予宿主细胞某些特殊的表型。
迄今为止从细菌中分离得到的质粒都是双链闭合环状DNA分子,大小为1kb～200kb。
在基因工程研究中，质粒是最常用的一种基因克隆载体，用于运载外源基因进入宿主细胞。
因此，质粒DNA的提取和纯化是分子生物学技术中的一项基础工作。
质粒DNA提取的关键是要与细菌染色质DNA分开。
常用的提取方法有煮沸法、碱裂解法、去污剂法、有机溶剂法和溶菌酶法等,不同方法各有利弊，应根据不同质粒的性质、不同宿主菌的特性及后继的纯化方法等多种因素综合加以选择。
一般以碱裂解法最为常用，因为它对细菌的裂解完全，对染色质DNA和蛋白质的变性充分，因而所提取的质粒DNA产量高、纯度高。
但如果碱变性时间过长，有可能会导致质粒DNA变性，导致随后的内切酶酶切困难。
碱裂解法提取质粒DNA的主要原理和步骤是：
1．接种含质粒的单个菌落到培养基中过夜培养。
随着细菌的生长,质粒DNA也随之自主复制。
必要时，可以在细菌生长后期在培养基中适量加入氯霉素，以抑制宿主细胞的蛋白质合成和染色质DNA的复制，细菌的数量不再增加，而质粒DNA的复制基本不受影响，从而大量扩增质粒DNA的拷贝数。
2．离心收集细菌。
3．加入强碱溶液裂解菌体，必要时可以适量加入溶菌酶。
此时大分子量线状的细菌染色质DNA和蛋白质发生变性，而闭合环状的质粒DNA多数仍不变性，处于自然状态。
4．几分钟后加入中和液，将pH值调至中性。
在高盐浓度条件下，大部分染色质DNA与蛋白质不能复性，交连成不溶性网状结构，在去污剂SDS的作用下形成絮状沉淀。
而质粒DNA分子量小，且为闭合环状结构，少数变性的质粒DNA也能够迅速复性，呈溶解状态。
5．离心，去除大部分细胞碎片、染色质DNA、RNA和蛋白质。
质粒DNA保留在上清中。
6．最后再用RNA酶消化，酚/氯仿抽提、透析和乙醇（或异丙醇）沉淀等方法进一步去除残余蛋白质和核酸，纯化质粒DNA。
【试剂器材】
1．LB培养基：
蛋白胨10g,酵母抽提液5g，NaCl10g,加蒸馏水至1000mL,用NaOH调pH至7.5,高压蒸汽消毒20min。
2．I号液：
50mmol/L葡萄糖，25mmol/LTris·Cl（pH8.0），10mmol/LEDTA（必要时在使用前加溶菌酶4mg/mL）
3．II号液：
0.2mol/LNaOH，含1%SDS（II号液必须在实验时新鲜配制）
4．III号液：
5mol/LKAc60ml，冰醋酸11.5ml，水28.5ml（含3mol/L钾，5mol/L醋酸，pH4.8）
5．RNase：
10mg/mL－20℃保存备用
6．TE：
10mmol/LTris﹒HCl（pH8.0），1mmol/LEDTA（pH8.0）。
高压灭菌20min，4℃保存备用。
7．STE：
0.1mol/LNaCl，10mmol/LTris﹒Cl（pH8.0），1mmol/LEDTA
8．酚/氯仿/异戊醇（25：
24：
1）
9．乙醇（无水乙醇、70%乙醇），-20℃保存备用
10．台式低温高速离心机
11．涡旋混合器（Vortex）
12．1.5mleppendorf离心管（灭菌）
13．移液器
【操作步骤】
1．培养：
在5ml含适当抗生素的LB培养液中接种含质粒的单个菌落，37℃，150rpm振荡培养过夜。
2．收菌：
取1-1.5ml培养液于1.5mlEpendorf管中，5000rpm离心3分钟，弃上清，收集细菌。
3．重悬：
弃上清，在沉淀中加入预冷的I号液100μl，vortex强烈振荡，充分悬浮菌体。
4．裂解：
加新鲜配制的II号液200μl，立即温和颠倒离心管5次，混匀。
置冰水浴中3-5分钟。
5．中和：
加入150μl预冷的III号液，立即温和颠倒混匀数次，混匀。
置冰水浴中3-5分钟。
6．沉淀：
12000rpm离心10分钟，取上清液置新Ependorf管中。
7．酚/氯仿抽提：
加入等体积的酚/氯仿/异戊醇（25：
24：
1），振荡混匀，12000rpm离心2分钟。
取上清液（小心不要吸到中间蛋白膜），转入另一个Eppendorf管中。
8．氯仿抽提：
加入等体积的氯仿，振荡混匀，12000rpm离心2分钟，取上清液转入另一个Eppendorf管中。
9．乙醇沉淀：
加入2倍体积的无水乙醇（或0.6倍体积异丙醇），混匀，室温放置10分钟。
4℃，12000rpm离心5分钟。
10．洗涤：
弃上清，沉淀用70%乙醇洗涤，4℃，12000rpm离心2分钟。
11．干燥：
弃上清，用消毒滤纸条小心吸净管壁乙醇滴。
将Eppendorf管倒置于滤纸上，室温蒸发乙醇10分钟。
12．溶解：
加入20μlTE（含无DNA酶的RNA酶20μg/ml），温和振荡2分钟。
置于－20℃冰箱保存。
实验六聚合酶链反应（PCR）体外扩增DNA
【目的要求】
掌握PCR的基本原理与实验技术。
【实验原理】
聚合酶链反应（polymerasechainreaction，PCR）是一种通过体外酶促反应大量、快速、选择性地合成目的DNA片段的核酸合成技术，具有高度特异性、操作简单、高效快速、灵敏度高等特点，是最常用的分子生物学技术之一。
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