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血液循环系统药物实验

第五章　血液循环系统药物实验

实验三十八强心药对离体蛙心作用观察

目的观察强心苷、咖啡因、肾上腺素对离体蛙心的作用，并掌握每种药物的作用特点。

实验材料

器材——生物机能实验系统、蛙心套管、试管夹、蛙板、大头针、蛙心夹、长滴管、铁支架、烧杯、长剌针、手术刀、眼科剪、虹膜镊、丝线等。

药品一一任氏液、0.04mg/mL毒毛旋花子苷K溶液、0.1%盐酸肾上腺素溶液、2%安钠咖溶液。

动物——青蛙（或蟾蜍）。

实验方法

将已插好蛙心套的离体蛙心（离体蛙心制作见后“附”）安装到生物机能实验系统上，记录一段正常曲线。

然后用下列药物逐次滴入套管内，每试完一种药物，即行吸出，更换任氏液，并反复用任氏液冲洗数次。

1．2%安钠咖液2~3滴。

2．0.1%盐酸肾上腺素溶液2~3滴。

3．0.04mg/mL毒毛旋花子苷溶液2~3滴。

注意事项

若有条件的话，可制成三个离体蛙心，分别连于生物机能实验系统上，然后向甲、乙、丙三个离体蛙心内分别加入上述三种药液，再进行记录。

实验记录

药物反应

描绘曲线图

用药前

安钠咖

盐酸肾上腺素

毒毛旋花子苷K

讨论题

1．根据描绘的曲线图（幅度、频率等），谈谈这三种药物对心脏的作用特点。

2．强心苷、咖啡因、肾上腺素对心脏的作用为何有差别。

附离体蛙心的制备：

1．斯氏离体蛙心的制备

取蛙一只，用探针由枕骨大孔插入，破坏大脑和脊髓后仰位固定在蛙板上，开胸并充剪开心包膜，分别结扎左、右主动脉，并在左主动脉下穿线打一松结备用。

在左主动脉靠心脏处剪一V形切口，将装有任民液的蛙心套管从主动脉经动脉球插入心室内（图38-1，套管从切口处插入，沿箭头所示方向前进，通过主动脉球后，套管转向左后方，此时用镊子将动脉球向套管移动的相反方向轻轻提起即可使套管通过房室瓣膜孔顺利进入心室，进入心室后，可见套管内液体会随心室搏动而上下移动）然后扎紧松结，并固定在套管小钩上，以免心脏滑脱。

并用吸管吸去套管内的血浆，换上任氏液。

剪断左、右主动脉，轻提起心脏，在静脉窦以下把其余血管一起结扎，在线结以下剪断，即成斯氏离体心脏标本。

图38-1斯氏离体蛙心制备

2．八木氏离体蛙心制备

取大蛙一只，破坏大脑及脊髓后，仰位固定在蛙板上，剪开胸部和心包，暴露心脏（图38–2）。

按以下顺序进行操作：

于两侧肺门处，找出左右前（上）腔静脉，分别结扎之；

结扎右主动脉；

于左主动脉及后（下）腔静脉下各穿一丝备用；

将静脉套管朝心脏方向插入后腔静脉，并结扎之，将动脉套管朝心脏方向插入左主动脉并结扎之，此时即构成一个人工循环系统，由动脉套管流出的滴数即可以代表心搏出量；

仔细地将心脏剪下以试管夹夹住套管，固定在万能支柱上，备用。

图38-2蛙心及其所连附的血管

左一腹面观右一背面观

1.心室2.左心耳3.右心耳4.主动脉干1.静脉窦2.窦耳孔3.左心耳4.右心耳

5.颈动脉弓6.体动脉弓7.肺皮动脉弓5.右前腔静脉6.后腔静脉7.右颈动脉弓

8.左前腔静脉8.右体动脉弓9.右肺皮动脉弓10.肺静脉

实验三十九强心药对在体蛙心脏的作用

目的熟悉在体蛙心实验操作，观察强心药对在体蛙心的作用。

实验材料

器材——蛙板、探针、外科剪、线、蛙心夹、眼科镊、生物机能实验系统、蛙心插管、保温瓶、滴管。

药品——1﹕1000氯化乙酰胆碱溶液、1﹕1000盐酸肾上腺素溶液（或1:

500硫酸阿托品溶液。

）

动物——青蛙（或蟾蜍）。

实验方法

用探针从枕骨大孔刺入将脑和脊髓破坏，然后将蛙仰卧于蛙板上，四肢蛙蹼用大头针固定，在胸骨沿正中线切开皮肤，用镊子和剪刀除掉胸骨的中间区，作成一小窗（以能暴露出心脏即可，胸骨毁坏过大会使内脏翻出，反而不佳），将心脏剥出胸骨外，再用小剪刀剪开心包膜，露出心脏，把蛙心夹轻轻家在蛙心夹上，连于生物机能实验系统上。

实验过程中要时时滴几滴任氏液于心脏，以防心脏干燥。

记录心脏的正常跳动曲线，并注意观察心室和心房收缩期的收缩及其协调性，房室间传导情况（心房率／心室率）；观察心率（次／分），收缩力强度（以振幅高度表示）。

然后用滴管将氯化乙酰胆碱溶液（1:

1000）滴加于心脏上1~2滴。

注意心脏收缩强度和心率受到某种程度的抑制。

再用滴管将盐酸肾上腺素溶液（1:

1000）或硫酸阿托品溶液（1:

500）滴加于心脏上1~2滴。

注意少时心脏收缩即增强和心率加快。

也可向下肢淋巴囊内注射毒毛旋花子苷K0.25mg，或铃兰酊0.5mL，或毒毛旋花子酊0.5mL。

将各药描记的曲线结果打印出来做为记录。

讨论题

1．讨论利用在体心脏和离体心脏观察强心药的作用各有何优缺点。

2．药物对在体心脏和离体心脏的作用有何差别？

为什么？

实验四十强心苷对离体衰竭蛙心的作用

目的通过实验了解强心苷对离体的衰竭蛙心的作用。

实验材料

器材一一蛙板、探针、外科剪、线、蛙心夹、眼科镊、生物机能实验系统、蛙心插管、保温瓶、滴管。

药品——3×10-4M哇巴因、低钙任氏液（含钙量为正常任氏液的10%）。

动物一一青蛙。

实验方法

制备斯氏离体蛙心。

蛙心套管内灌入任氏液1~2mL，记录正常心跳曲线，然后换入同量的低钙任氏液，观察心跳的变化。

待心跳减弱趋于恒定时，给3×10－4M哇巴因0.2~0.3mL，观察心跳曲线，与低钙所致心跳减弱情况曲线比较，观察哇巴因对衰竭的离体蛙心的作用。

在整个实验过程中应保持套管内液面高度不变。

注意事项

本实验最好用蛙。

因蟾蜍对强心的作用不敏感。

原因是蟾蜍体内有一种蟾蜍毒素，亦是一种苷类，使蟾蜍对强心苷具备相当大的耐受性。

不过对洋地黄制剂粗品（如洋地黄酊或浸剂）比对纯制剂敏感，对低钙造制的心衰，能起到强心作用。

20%洋地黄溶液的用量为0.3~0.6mL。

讨论题

强心苷对离体的衰竭蛙心的作用如何？

实验四十一离体兔心灌流实验

目的了解强心药对离体兔心的作用。

实验材料

器材一一下口瓶、恒压管、氧气瓶、铁支架、双凹夹、冷凝管夹、铁环、螺丝夹、滑轮、电热恒温水浴锅、蛇形管、兔心插管、蛙心夹、生物机能实验系统、烧杯、量杯、手术刀、剪、解剖镊子、木制管夹、温度计、石棉板、自动恒温装置一套、注射器。

药品——0.01%肾上腺素溶液、洋地黄毒苷溶液（稀释20倍、1mL含0.01mg）、5%氨茶碱溶液、任氏液。

动物——兔。

实验方法

取健康兔一只，击头部致死后，于胸正中线切开胸腔，暴露心脏。

切断肺根及上下腔静脉，在无名动脉之上切断主动脉，取出心脏，立即将心脏放在事先冰过的任氏液中，由于心脏自动收缩，将心脏内的血液洗出（亦可轻轻挤压心脏），再将套管由主动脉弓外向心插入、结扎。

然后用恒温（37℃）、恒压（50~60cm汞柱）的充分氧饱和的任氏液灌注兔心。

灌流液自主动脉注入冠状动脉，由下腔静脉流出。

将蛙心夹夹住心尖与生物机能实验系统相连，记录心收缩曲线。

由心内滴出的液体量，即为冠状动脉流量。

然后依次由心插管的侧方，皮管内注入下述药物。

1．0.01%盐酸肾上腺素溶液0.1mL（10µg）。

2．25%氨茶碱溶液0.2mL（5mg）。

3．洋地黄毒苷溶液（20倍稀释）0.1mL。

注意事项

1．灌流液必须有充分饱和的氧气，温度与体温相同，温度过高易致心室颤动反应。

2．插主动脉套管时，套管的管口应在冠状动脉开口的上面，不要插得太深，以免影响脉灌流。

讨论题

比较强心药对离体蛙心和离体兔心的作用。

实验四十二强心苷对温血动物在体衰竭心脏的影响

目的通过此实验加深对强心苷作用的理解，以便更好的用药于临床。

实验材料

器材——生物机能实验系统、兔手术台、气管插管、手术剪子、手术刀、注射器、针头、止血钳、腰椎穿刺针、骨剪、拉胸钩、细缝合针、肌力换能器。

药品——20%乌拉坦、20%戊巴比妥、毒毛旋花子苷K、生理盐水。

动物一一兔（或猫）。

实验方法

取兔一只称重，由腹腔注射20%乌拉坦（5mL/kg）进行麻醉。

见兔全身瘫软后，把它仰位固定在手术台上，剪开颈部正中皮肤，在甲状软骨下方分离出气管，做T字形切口，插入气管套管，以备连接人工呼吸器。

在右侧腹股沟处分离股静脉并插入静脉套管，结扎固定，以备给药或输液。

沿胸部正中线切开皮肤，用电烧灼器或刀背离断附着于胸骨上的肌肉，暴露胸骨（此时把气管套管与人工呼吸器相连接，进行人工呼吸）。

然后在剑突处用止血钳戳一小孔，用骨剪由小孔插入，沿中线将胸骨剪开，用拉胸钩将胸壁挂开，充分暴露心脏。

将心包膜作“十”字形切开缝于胸壁上，使心脏平悬于胸腔正中。

从此开始，要经常用温生理盐水润湿心脏。

用较细的缝针，迅速在心尖部穿一细线，连接肌力换能器，连于生物机能实验系统上，以记录心脏曲线。

先记录一段心脏正常活动曲线，然后用20%戊巴比妥钠2mL静脉注射，反复给药约5~7次，直至出现心衰为止（心脏收缩幅度明显变小）。

然后由股静脉注入毒毛旋子苷K60µg左右。

经1~3分钟强心苷可发挥正性肌力作用，心脏收缩幅度明显增大。

注意事项

1．术中应避免出血，尤其开胸骨时，且勿偏离正中线，以免损伤肋间动脉及乳内静脉。

2．呼吸道要保持通畅，要及时清理分泌物。

人工呼吸器的各种数据要调节适当，以保证通气量正常。

讨论题

强心苷对衰竭心脏与正常心脏的作用有何特点。

实验四十三强心苷对心脏活动的影响

目的通过心电图描记，观察和分析强心苷对心脏活动的影响，从而说明强心苷的治疗作用和毒性作用。

实验材料

器材一一心电图机及其全部附件、心电示波器、毛剪、兔手术台、细绳、注射器、针头。

药品一一毒毛旋花子苷K、L注射液。

动物一一兔。

实验方法

取兔一只，称重，不需麻醉（如用豚鼠，则须以20%乌拉坦5~6mL/kg腹腔注射麻醉），仰位固定于手术台上，分别在四肢皮下扎入一针头，并与心电图机的引导电极相连（红色-右前肢，黄色-左前肢，蓝色-左后肢，黑色-右后肢）。

调整心电图机标准电压1mv=10mm，纸速50mm/秒（因为动物心率较快，为使波形记录清楚，故可用50mm/秒速度记录为好），直接记录Ⅱ号导联心电图；或与心电示波器连接，在荧光屏上观察清晰的心电波。

先描记正常心电图波型，然后自耳静脉注入毒毛旋花子苷K0.20mg/kg，观察其心电图变化。

（要注意心率，P-R间期，T波及RT段变化等）。

追加毒毛旋花子苷K0.4mg/kg后，其心电图是否有改变。

实验记录

心电变化

用药前

iv0.20mg/kg毒毛K

iv0.40mg/kg毒毛K

心电

图型

P

P-R

Q-T

T

S-T

附1.兔正常心电参考数值（标准Ⅱ导联）

波型

间期（妙）

波幅电压（毫伏）

P波

0.031

向上0.075向下0.135

P-R波

0.068

QRS综合波

0.042

Q0.120R0.160（标准导联）S0.130

Q-T波

0.140

T波

0.065

向上0.210向下0.180

心率（次/分）

214-272（247）

2.兔正常及注射毒毛旋花子苷K后的心电图型

兔正常及注射毒毛旋花子苷K后的心电图型见图43-1，43-2。

图43-1兔正常心电图

图43-2注射0.2mg/kg毒毛K后，心电变化

讨论题

心电图波变化说明了什么问题。

强心苷在临床应用时应注意哪些问题。

实验四十四药物对大鼠左心功能与血流动力学的影响

目的学习血流动力学实验方法和大鼠左心室插管技术。

了解各种血流动力学参数及其评价药物对心功能影响的作用。

实验材料

器材一一多道生理记录仅（4~8道）、双线示波器（带照像装置）、压力换能器、直流放大器、PE-50聚乙烯管（也可用塑料管加热拉制成内径0.5mm，外径1mm的导管）、手术器械、烧杯、注射器（注：

如用微型计算机联机适时分析系统，则只需二路压力换能放大装置和—路微分装置，可不用多道生理仪和示波器）。

药品一一0.4％戊巴比妥钠、0.5％肝素生理盐水、0.001％异丙肾上腺索、0.002％硝苯啶。

动物一一大鼠。

实验方法

1．取体重200~250g雄性大鼠1只，称重，用0.4％戊巴比妥钠1mL/100g腹腔注射麻醉，背位固定，剪去颈部被毛。

将动脉插管充满肝素生理盐水。

2．颈部正中切开皮肤，分离左、右颈总动脉，从右颈总动脉插管进入左心室，用压力换能器测取左室压力，并经微分器和压力处理器获得±dp/dt和（dp/dt）p-1信号。

插管时根据荧光屏上血压波变为典型的室力压波来确定是否插入心室。

左侧颈总动脉插管连接另一压力换能器记录动脉血压。

一侧颈外静脉插管，准备给药用。

3．调整好定标值，动物稳定15分钟后记录给药的的各项指标。

4．从静脉插管中注入药物，记录给药后1、3、5、10、20分钟时的各项指标。

5．待各项指标基本恢复后给下一个药物，记录给药后不同时间的各项指标。

给药顺序：

①0.001%异丙肾上腺素1mL/kg，静脉注射；②0.002％硝苯啶1mL/kg，静脉注射。

6．定标及各项指标的测取：

（1）LVP曲线LVP定标敏度2.7mm/13.3kPa。

由于LVP的最低点可接近于零，这时（dp/dt）p-1将趋向于无穷大，结果无法处理。

如在放大LVP的载波放大器调零完成后再旋动载波放大器使基线拾高4mm（即相当于预先输入Δp=2.7kPa的压力），这样可保证在整个心动周期中的LVP信号都大于零。

一般LVEDP+Δp＝1.1~1.3kPa为宜，如用微型计算机适时分析则可直接计算Vpm和Vmax，不需（dp/dt）p-1信号，也不需输入Δp调整LVP输出信号。

从LVP曲线上可得LVSP和LVDP、LVP信号，经直流放大器放大10倍后再记录下来，可从中读取LVEDP。

（2）dp/dt曲线微分器时间常数1.0ms，高频滤波50Hz，调整微分器的标准三角波定标压力信号的幅度等同于LVP13.3kPa的幅度，（三角波从最低点到最高点时间为0.1s），这时微分器输出的矩形波定标信号为±133.3kPa/s（266.7kPa/s）调整矩形波幅度为5mm、10mm。

从该曲线上可测定+dp/dtmax（最大值），－dp/dtmax（最小值），t－dp/dtmax（曲线正向上升支起点至+dp/dtmax的时间）。

（3）（dp/dt）p-1曲线将压力处理器开关拨向（dp/dt）p-1档，其输出定标信号为反向双曲线。

按上述调整其标准三角波幅度，这时双曲线幅度为土10s-1，调整双曲线幅度为2mm，即10mm/100s-1。

曲线的最高点即实测左室肌最大缩短速度Vpm（亦称生理最大速度）。

由于为避免出现（dp/dt）p-1出现无穷大数值而输入Δp。

因此，实际曲线数值是（dp/dt）/（p+Δp），这时可将实测值乘以（1+Δp/p）；进行修正；若Δp〈〈p，也可不作校正。

（4）LVP－（dp/dt）p-1环LVP和（dp/dt）p-1电信号分别输入SBR-1型双线示波器的x轴和y轴以获取该环并摄影记录。

定标：

将定标三角波输入示波器x轴，（dp/dt）p-1双曲线输入至y轴作直流放大，调x轴增益使图形宽度为2.5cm，调y轴增益使定标图形右端垂直部分为1cm，此时y轴刻度即为20s-1/cm，然后将y轴增益衰减至1/4（即80s-1/cm），零负荷时的收缩成分最大缩短速度（Vmax）为环的正向降支之切线与y轴交点之读数。

（5）T值测取和计算从－dp/dtmax后20ms处开始的40ms时间内在对应时间的LVP曲线上读取LVP，并将其值取自然对数（1np），以x轴为1np，y轴为对应的时间t进行直线回归，这时的斜率即为T值。

根据上述方法测取，计算各给药前后的参数，进行分析评价。

注意事项

1．记录压力的管道系统不能留有任何气泡，否则记录就会失真而出现正弦波样波形。

同时管道系统也不能有渗漏和凝血现象，否则波形将变小，失真。

2．左心室插管不能太长（应为12~15cm），否则将因插管内阻尼大而使压力波失真。

3．在左心室插管插入颈总动脉后，应在荧光屏监视压力波的情况下缓缓向左室推进。

如出现低平波或波动消失，表明前端受阻，应将插管稍后退，恢复波动后再推进，千万不能在波动消失后继续往前插管，以免插破血管或心脏。

4．在进行插管时一定要把插管前端的血管拉直，以使插管能顺利推进。

5．左室插管在主动脉瓣口不易进入左室时（这时从插管可感到心脏跳动），可将插管稍退出，改变角度和方向或抖动插管向前推进，这样往往可顺利插入左心室。

讨论题

评价药物对心肌收缩性能的影响在此实验中应主要选用哪些指标？

评价对心肌舒张功能的影响应选哪些指标？

实验四十五心阻抗法测定药物对心脏泵血功能的影响

目的学习用无创伤性的心阻抗法测定心脏功能，观察药物对心输出量、血压和外周阻力等血流动力学参数的影响。

实验材料

器材一一多道生理记录仪（四道以上）、阻抗血流仪、人工呼吸机、压力换能器、心音换能器、电极带四条、动脉插管、气管插管、兔手术台、手术器械、注射器、烧杯。

药品一一3％戊巴比妥钠、0.5％肝素生理盐水、16％硫化钠、去甲肾上腺素、0.005％硝苯啶（50μg/mL）。

动物一一兔。

实验方法

1．取体重2~3kg家兔1只，称体重，用3％戊巴比妥钠1~1.5mL/kg耳静脉麻醉。

用剪刀围绕颈部和胸部剑突处环形剪毛，宽度约3~4cm。

然后在剪毛处用15％硫化钠把兔毛脱净。

背位固定动物。

2．股动脉手术用手在股三周处摸到动脉搏动处，平行切开皮肤，用血管钳沿肌纤维走行方向向深部分离，可见并行的股动脉和股静脉，动脉颜色较浅，弹性大，并可摸到搏动。

作动脉插管连接压力换能器记录股动脉血压。

3．颈部正中切口离切开气管后作气管插管维持人工呼吸。

4．于颈部和胸部脱毛处各环绕1对电极，每对电极之间间隔约2cm，各电极位于同一平面与胸部垂直。

将外侧两根电极（El、E4）与阻抗血流仪的红线相连（供给高频电流），内侧两根电极（E2、E3）与黑线相连（检测阻抗）。

量取E2至E3间的距离。

5．在心脏搏动明显处安放心音换能器用于记录心音图。

6．连接心电图导线，记录心电图

导联。

7．阻抗微分和血压信号定标：

将阻抗血流仪Z0定标调至30Ω，dz／dt矩形波定标信号调至20mm，这时定标值为1Ω秒-1/10mm。

将压力放大器选择开关放在平衡档，调整压力放大器左右平衡旋钮，逐步调定零点，然后将选择开关拨至测量，调整增益为13.3kPa/20mm，即0.7kPa/mm。

8．将心电图

导联，阻抗微分图、心音图和血压波同步记录在多道生理记录仪上，纸速100~200mm/s。

每次记录同时读取Z0值。

9．待动物血压稳定后，间隔5分钟记录2次给药前的各项指标，然后耳缘静脉注射去甲肾上腺素0.5mL/kg。

记录给药后1、3、5、10、20min的各项指标。

10．待各项指标基本恢复后，给0.005％硝苯啶（50μg/kg）。

各项指标测取：

从阻抗微分曲线上测取微分最大值（dz/dtmax），左室射血时间（LVET）。

如阻抗微分曲线上特征点不明显可从心音图上测取LVET（dz/dt曲线上B-X间距，或PCG上S1-S2间距）。

从血压曲线上测取收缩压（SAP）和舒张压（DAP）。

测取心电图10个R-R间期，用于计算心率。

注意事项

1．颈、胸部脱毛要干净，并使电极与皮肤接触良好。

2．要防止动脉插管内凝血，插管不要太长，并减少进入动脉插管的血液，以使血压波尽可能反映实际情况。

3．由于呼吸被可影响阻抗微分曲线和血压曲线，记录时应暂停人工呼吸以便记录到平稳的曲线。

讨论题

1．心阻抗法中，心输出量测量值与哪些因索有关？

2．为什么心脏收缩时间间期可评价心脏的收缩功能？

实验四十六利多卡因的抗心律失常作用

目的学习毒毛花苷G（哇巴因）致豚鼠实验性心律失常模型的制备方法，观察利多卡因的抗心律失常作用。

实验材料

器材——大白鼠手术台1个、止血钳、手术剪、眼科镊、医用缝合线、静脉插管、生物机能实验系统、注射器（1mL，5mL）、6号针头、小动物电子秤、恒速灌流器。

药品——20%乌拉坦溶液、0.002%毒毛花苷G溶液、0.5%利多卡因溶液、生理盐水。

动物——豚鼠。

实验方法

取体重300~350g豚鼠2只，称重、标记、随机分为两组，两组均腹腔注射2%乌拉坦溶液0.6mL/100g，麻醉后背位固定于手术台上，剪开颈部正中皮肤，分离颈外静脉（或股静脉）并插管，与恒速灌流器相连。

将针形电极插入豚鼠四肢皮下，监视并记录Ⅱ导联心电图。

实验组由颈外静脉（或股静脉）注射0.5%利多卡因0.1mL（5mg/kg），对照组颈外静脉（或股静脉）注射生理盐水0.1mL/kg。

3min后恒速静脉灌注毒毛花苷G溶液3μg/min，然后分别计算引起两只豚鼠室性早搏（VP）、室性心动过速（VT）、室颤（VF）和心跳停止的毒毛花苷G的用量。

比较两组所用毒毛花苷G剂量的差别。

观察利多卡因是否提高毒毛花苷G的用量。

实验记录

记录两组室性早搏（VP）、室性心动过速（VT）、室颤（VF）和心跳停止的毒毛花苷G的用量。

组别

室性早搏（μg）

室性心动过速（μg）

室颤（μg）

心跳停止（μg）

实验组

对照组

注意事项

1．毒毛花苷G所致豚鼠心律失常，是以室性早搏、室性心动过速发展至室颤，最后到心脏停止跳动。

心律失常指标以频发性室性早搏或室性心动过速为好。

2．利多卡因静脉注射时浓度要小于或等于0.5%，应缓慢给药，否则会出现利多卡因毒性反应。

讨论题

药物抗心率失常的机理是什么。

利多卡因为有抗心律失常作用。

实验四十七药物对离体豚鼠心肌收缩力和冠脉流量的影响

目的学习Langendorff心脏制备方法，观察药物对离体心脏收缩力和冠脉流量的影响，了解怎样评价药物对离体心脏冠脉流量的影响。

实验材料

器材——恒温、恒压离体器官灌流装置（灌流瓶、蛇形管、超级恒温水浴锅）、心脏保温套管、主动脉插管、供氧装置、定滑轮、蛙心夹、张力换能器、生物机能实验系统、手术器械、小量简、烧杯、注射器。

药品——1%肝素、10-5mol／L肾上腺素、10-5mol／L异丙肾上腺素、2.5%氨茶碱、3%戊巴比妥钠、Krebs—Henselit液。

动物——豚鼠。

实验方法

1．取体重350～450g豚鼠1只，称重，3%戊巴比妥钠30～45mg／kg（1～1.5mL）腹腔注射麻醉，颈外静脉注射1%肝素10mg／kg抗凝，1分钟后开胸腔取出心脏，置顶通混合气体的冷K-H液中，轻轻挤出余血。

2．在营养液下将主动脉插管插入主动脉内并用丝线结扎固定。

3．将连着心脏的主动脉插管连接到灌流装置的出口，用37℃，充以混合气体、50～60cm血水柱压力的K-H液灌流心脏。

灌流装置内应预先排出气泡，不能让气泡灌入心脏内。

4．用蛙心夹夹住心尖部，通过丝线经滑轮转换方向后与张力换能器连接，用生物机能实验系统记录收缩幅度，给心脏罩上保温套管保温。

用量筒在心脏下面收集流出液，测定冠脉流量。

　　5．待心脏收缩稳定后，连续测定2个3分钟的冠脉流量，若数值相近，则计算平均每分钟流量作为给药前的对照值，并记录心肌收缩幅度和心率。

6．从主动脉插管上方将药物注入到灌流液中，然后记录给药后1、3、5、9、10分钟的冠脉流量，心肌收缩幅度顺和心率。

待冠脉流量和收缩幅度基本恢复后给下一个药物。

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