慢病毒包装浓缩纯化滴度实验步骤.docx
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慢病毒包装浓缩纯化滴度实验步骤
一、包装细胞293T细胞的培养
一、293T细胞的冻存
1.随着传代的次数增加,293T细胞会出现生长状态下降,出现突变等。
所以要在细胞购进时就进行冻存。
2.在细胞对数生长期进行冻存,增加细胞复苏成活率。
3.倒去细胞上清液,加入D-Hank's液洗去残留的培养基。
4.加入0.25%的胰酶,消化10-20s后倒去。
5.镜下观察细胞变圆,细胞间间隙加大时,加入新鲜培养基吹打混匀。
6.细胞计数。
7.将细胞离心,1000rpm,2min。
8.根据计数结果加入细胞冻存液(70%完全培养基+20%FBS+10%DMSO)重悬细胞,密度为3×106个/ml。
10.第二天将细胞放入液氮灌,并记录。
二、293T细胞的传代
1.当细胞生长至汇合率达到80~90%需要对细胞进行传代操作,以扩大细胞数量,维持细胞良好的生长状态。
2.消化细胞,方法同上。
3.细胞离心结束后,加入完全培养基重悬。
密度为3×105个/ml。
4.分到10cm培养皿中,10ml/皿。
三、293T细胞的复苏
1.当细胞传代次数过多(超过50代),细胞状态变差时或细胞出现污染事故时,需要丢弃并对开始冻存的细胞进行复苏。
2.打开水浴锅,设置温度为40℃。
3.查看细胞库记录,根据记录从液氮灌中取出冻存的细胞(需戴上棉手套,防止被冻伤),迅速丢入水浴锅中并快速晃动,在1~2min内使细胞溶液完全溶解。
4.将1ml细胞溶液加入9ml完全培养基中并混匀后转入10cm培养皿。
5.放回37℃、3%CO2和95%相对湿度的培养箱中培养。
6.第二天观察细胞存活率。
倒掉旧的培养基,加入10ml新鲜培养基。
二、慢病毒的包装、浓缩和滴度测定
1.所用病毒检测引物为WPRE特异引物,序列如下
5'-CCTTTCCGGGACTTTCGCTTT-3'(forwardprimer),
5'-GCAGAATCCAGGTGGCAACA-3'(reverseprimer)and
5'-FAM-ACTCATCGCCGCCTGCCTTGCC-TAMRA-3'(probe)
2.TaqManUniversalPCRMasterMix(AppliedBiosystems,cat.no.4304437)
3.TaqManDNATemplateReagentKit(AppliedBiosystems,cat.no.401970)
4.TaqManRNasePcontrolreagent(AppliedBiosystems,cat.no.4316844)
用于包装的293T细胞的培养
用于包装的293T细胞(ATCCNo.CRL-11268)必需选择处于生长旺盛期,细胞状态较佳,存活率90%以上,细胞边缘清晰,传代次数较低。
任何时候细胞汇合率都不准达到100%。
慢病毒的包装
1.预先准备3个T150瓶的293T细胞,培养基为DMEM+10%FBS,1%Glutamax,1%青霉素-链霉素。
2.将细胞分到12分到12个T150瓶中,每瓶的细胞密度是8×106个。
3.第二天,镜下检查细胞。
细胞融合度应大致为30-40%,分布均匀。
4.转染前1小时,取出细胞板,去除原有细胞培养基,加入20ml的Opti-MEM培养基,将细胞送回培养箱。
5.取两支无菌的50ml离心管,其中一支中加入252μgpNL-EGFP/CMV/WPREDU3载体质粒,168μgpCD/NL-BH*DDD包装质粒和84μgpLTR-G质粒,用Opti-MEM培养基补齐到18ml。
另一支中加入500μlTrans-EZ溶液和17.5mlOpti-MEM培养基,用电动移液器轻轻混匀。
将Trans-EZ稀释液滴加到质粒管中,边加边轻轻晃匀。
关键步骤:
推荐使用Qiagen质粒大抽试剂盒或相当的试剂盒所制备的质粒。
6.室温孵育20分钟,使DNA和Trans-EZ充分结合形成转染复合体。
7.取1支5ml的移液管,将得到的DNA-Trans-EZ复合体均匀滴加入到细胞培养板中,每板3ml。
来回晃动培养板,混匀后放回到5%二氧化碳培养箱。
每一皿细胞培养盘不要超过6盘。
8.6小时后,移去细胞上清,更换为17ml的DMEM完全培养基。
9.转染后一天观察细胞,所有的细胞应当都是健康的并且密度接近60-80%。
如果所转染质粒带有GFP荧光,那么这时候可以看到大于95%的细胞都是带有荧光的。
10.将细胞送回培养箱继续培养2天(36-48小时)。
在这个过程中,细胞会逐渐融合形成多核体,大多数的细胞依然贴壁。
11.收集所有的上清,分装到50ml离心管中。
12.4℃,500g离心10分钟,除去脱落的细胞和大的细胞碎片。
13.总的上清约为204ml,用250-ml0.45μmPVDF过滤装置过滤。
如果发现滤膜被堵住,表现为过滤速度变慢,更换新的滤器。
慢病毒的浓缩与纯化
方法一超速离心沉淀法
1.取6个Ultra-clearSW28离心管,用70%乙醇消毒后,放在超净工作台中打开紫外灯继续消毒30分钟。
2.每个Ultra-clearSW28离心管中加入约32ml的预先处理的病毒上清液。
3.取一支10ml的移液管,吸取12ml20%的蔗糖溶液。
将移液管一直插入到离心管的底部,缓慢将蔗糖溶液打出4ml。
同样地,将剩下8ml的蔗糖溶液分别加入到另两个离心管中。
另取一支干净的移液管,对剩下3管进行同样处理。
4.用PBS调整各管的重量,使对应的离心管之间的重量相差不超过0.1g。
5.按次序将所有6个离心管放入BeckmanSW28超速离心转头中。
7.小心将管子从转头中取出。
倒掉上清,将离心管倒扣在纸巾上放置10分钟使剩余的上清流干。
吸掉剩余的液滴。
在管底应当有可见的沉淀。
8.每管中加入100ml不含钙和镁的PBS洗下沉淀。
9.将SW28超速离心管插入到50ml锥底离心管中,盖上盖子。
10.在4℃溶解2小时,每隔20分钟轻轻震荡。
11.4℃,500g离心1分钟,使溶液集中于管底。
12.用200μl移液器轻柔吹打使沉淀重悬。
避免产生泡沫。
将所有管中的液体集中到一个SW28离心管中。
13.集中后的病毒悬液分装成50μl每份,保存在成品管中。
用碎干冰速冻后储存在-80℃。
方法二PEG-8000浓缩法
PEG(聚乙二醇)是高分子聚合物,具有高亲水性,在溶液中会吸收大量水分,减少病毒之间的距离,使病毒与病毒能够很容易的聚合在一起,病毒的相对浓度提高,达到沉淀浓缩的目的。
5XPEG8000+NaCl配制称取NaCl8.766g;PEG800050g溶解在200mlMilli-Q纯水中;121摄氏度30min湿热灭绝30min;保存在4℃。
1.使用0.45μm滤头过滤慢病毒上清液;
3.每20~30min混合一次,共进行3-5次;
4.4度放置过夜;
5.4度,4000g,离心20min;
6.吸弃上清,静置管子1~2分钟,吸走残余液体;
7.加入适量的慢病毒溶解液溶解慢病毒沉淀;
8.集中后的病毒悬液分装成50μl每份,保存在成品管中。
用碎干冰速冻后储存在-80℃
病毒滴度的测定
稀释计数法
滴度单位:
TU/ml,指每毫升中含有的具有生物活性的病毒颗粒数。
”TU”为”transducingunits”的缩写,中文为“转导单位”,表示可以感染并进入到靶细胞中的病毒基因组数。
第一天细胞准备
将生长状态良好的293T细胞消化计数后稀释至1×105/ml,加入96孔板,100μl/孔,为每个病毒准备10个孔。
放入37℃,5%CO2培养箱中培养。
第二天加病毒
在EP管中做10倍梯度稀释,连续10个稀释度。
稀释方法如下:
每种病毒准备10个1.5mlEP管,每管加入90μl培养液,往第一个管中加入10μl病毒原液,混匀后,吸取10μl加入第二个管混匀。
依此类推,做十个稀释度(10~10-8)。
吸取96孔板中原有的培养基,加入含稀释好的病毒液。
并做好标记。
第三天追加培养液
在每个孔再加入100μl完全培养液,利于细胞的生长。
第五天观察结果并计算滴度
在荧光显微镜下观察结果,并数出最后两个有荧光的荧光细胞克隆数。
假设为X和Y,则滴度(TU/ml)=(X+Y*10)*1000/2/X孔的病毒液的含量(μl)。
定量PCR法
病毒感染1天前,取6孔板接种HOS细胞。
每孔细胞为5×104个。
接种细胞24小时后,取两个孔的细胞用血球计数板计数,确定感染时细胞的实际数目,记为N。
弃去其他培养板中的培养基,更换为含有5μg/mlpolybrene的新鲜培养基。
将浓缩病毒用培养基稀释200倍,也就是取1μl病毒加入到199μl的培养基中。
在3个培养孔中分别加入0.5μl,5μl和50μl的稀释病毒。
感染开始后20小时,除去培养上清,换为500μl含DNaseI(TakaraMirusBio,终浓度为10U/ml)的新鲜培养基。
在37℃消化15分钟,这一步是要除去残余的质粒DNA。
然后换为2ml正常的培养基,继续培养48小时。
用0.5ml0.25%胰酶-EDTA溶液消化细胞,在37℃放置1分钟。
用培养基吹洗下,离心收集细胞。
按照DNeasy试剂盒的说明抽提基因组DNA。
每个样品管中加入200μl洗脱液洗下DNA。
用DNA定量试剂盒定量(Bio-Rad)。
基因组DNA可以稳定保存在-20℃至少2个月。
准备PCR所需的试剂和样品。
为病毒序列检测引物配总管Ⅰ:
2×TaqManMasterMix
25μl×n
Forwardprimer(100pmolml-1)
0.1μl×n
Reverseprimer(100pmolml-1)
0.1μl×n
Probe(100pmolml-1)
0.1μl×n
H2O
19.7μl×n
n=numberofreactions.例如:
总反应数为40,将1ml2×TaqManUniversalPCRMasterMix,4μlforwardprimer,4μlreverseprimer,4μlprobe和788μlH2O混和。
震荡后放在冰上。
为人基因组序列检测引物配总管Ⅱ:
2×TaqManMasterMix
25μl×n
10×RNasePprimer/probemix
2.5μl×n
H2O
17.5μl×n
n=numberofreactions.例如:
总反应数为40,将1ml2×TaqManUniversalPCRMasterMix,100μl10×RNasePprimer/probemix和700μlH2O混和。
震荡后放在冰上。
在预冷的96孔PCR板上完成PCR体系建立。
从总管Ⅰ中各取45μl加入到A-D各行的孔中,从总管Ⅱ中各取45μl加入到E-G各行的孔中。
分别取5μl质粒标准品和待测样品基因组DNA加入到A-D行中,每个样品重复1次。
另留1个孔加入5μl的水做为无模板对照(no-templatecontrol)。
分别取5μl基因组标准品和待测样品基因组DNA加入到E-G行中,每个样品重复1次。
另留1个孔加入5μl的水做为无模板对照(no-templatecontrol)。
所使用定量PCR仪为ABIPRISM7000定量系统。
循环条