建立食蟹猴糖尿病模型的研究.docx

建立食蟹猴糖尿病模型的研究.docx

《建立食蟹猴糖尿病模型的研究.docx》由会员分享，可在线阅读，更多相关《建立食蟹猴糖尿病模型的研究.docx（3页珍藏版）》请在冰豆网上搜索。

建立食蟹猴糖尿病模型的研究

建立食蟹猴糖尿病模型的研究

【摘要】【目的】建立食蟹猴糖尿病模型，并确定诊断标准。

【方法】选用雄性食蟹猴８只，随机分为正常对照组和模型组；采用一次性静脉注射链脲佐菌素；观察造模前后各组猴的摄食量、饮水量、尿量、体质量变化，检测各组尿糖、空腹血糖、糖耐量、甘油三酯、总胆固醇、Ｃ肽、谷氨酸脱羧酶抗体的变化，并进行胰腺组织病理学检查。

【结果】造模后模型组摄食量、饮水量及尿量显着增加，体质量、Ｃ肽含量显着下降，甘油三酯和总胆固醇均无显着变化；造模后第２周空腹血糖升高，尿糖由阴性变为“++++”；第５周出现糖耐量异常，第７周空腹血糖与正常组比较有显着性差异，ＧＡＤＡb阳性；胰腺组织病理检查结果显示模型组胰岛萎缩、纤维化，而正常对照组胰腺组织无病理改变。

【结论】成功建立Ⅰ型糖尿病食蟹猴模型。

【关键词】糖尿病；胰腺／病理学；疾病模型，动物；食蟹猴

糖尿病动物模型主要有诱发性糖尿病动物模型、转基因糖尿病动物模型、自发性糖尿病动物模型等，目前主要采用链脲佐菌素造模，但是造模动物多选用大鼠，较少选用大动物尤其是灵长类［1］。

国外有STZ诱导青年恒河猴糖尿病的报道，国内仅有１例报道并且也选用青年恒河猴［2-8］。

本实验采用另一种常用灵长类动物——食蟹猴，以STZ化学损伤建立Ⅰ型糖尿病动物模型，现报道如下。

　　1材料与方法

11动物及分组食蟹猴8只，均为雄性，体质量分别为913、965、987、992、1023、1035、1065、1123kg。

由广东高要康达实验动物科技有限公司提供［合格证号SCXK（粤）2004-2009］，随机分成2组，即模型组和正常对照组。

12主要试剂与仪器链脲佐菌素（STZ）为Sigma公司（美国）产品；500g/L葡萄糖注射液由天津药业集团新郑股份有限公司生产，批号:

060921；尿糖试纸由桂林中辉科技发展有限公司生产，批号：

6C29；测利得超值型血糖仪（厚美德公司）；PHS2C精密级数字式酸度计；Ex3600全自动生化仪（英国）；TDL5000B型低速冷冻多管离心机；JA2103型电子天平。

13糖尿病模型制作模型组禁食16h后一次性静脉注射STZ（临用前用01mmol/L、pH42~45柠檬酸缓冲液配成10mg/L浓度），剂量为45mg/kg；正常对照组禁食16h后一次性静脉注射01mmol/L、pH42~45柠檬酸缓冲液，剂量为45mg/kg。

14检测指标［9-11］造模后7周内每日观察并记录摄食量、饮水量、尿量、精神状况；每3d称量体质量1次。

每周检测空腹血糖、甘油三酯、总胆固醇；第1、4、5周检测糖耐量；第1、7周检测C肽、谷氨酸脱羧酶抗体；实验结束后对动物实施安乐死，并取胰腺做组织病理学检测。

15统计学方法采用SPSS115统计软件进行统计分析。

　　2结果

21各组造模前后摄食量、饮水量、尿量及体质量变化比较表1结果表明，模型组在造模后均出现了糖尿病的典型症状:

摄食量、饮水量、尿量显着增多，体质量显着下降，正常对照组造模前后上述指标无显着变化。

22各组造模前与造模后7周C肽、甘油三酯、总胆固醇变化比较表2结果表明模型组C肽含量显着下降，而甘油三酯和总胆固醇均无显着变化。

23各组造模前后血糖、糖耐量变化比较表3结果说明模型组造模后第2周空腹血糖升高，第7周空腹血糖显着上升，造模后第5周出现糖耐量异常。

24各组造模前后尿糖、GADAb变化比较表4结果说明模型组造模后尿糖变为强阳性，GADAb造模后变为阳性。

　　25各组胰腺组织病理学检查结果图1结果显示模型组胰岛萎缩、纤维化，正常对照组胰腺组织无变化。

表1各组造模前与造模后７周摄食量、饮水量、尿量及体质量变化比较

　　3讨论

31所造模型相对于以往模型的优势国内研究显示通过给7只青年恒河猴静脉注射不同剂量的链脲佐菌素（30、45、60mg/kg），实验组的7只猴在给药1月后摄食量、饮水量、排尿量才明显增加，低、中剂量组在96h后才成模，高剂量组虽然较早成模,但该组猴逐渐出现行动困难，反应迟钝，视力下降，面部浮肿，食欲降低，嗜睡等严重症状。

虽然给予动物胰岛素皮下注射50U/d，终于在成模后176d死亡［2-5］。

本研究给4只食蟹猴静脉注射STZ45mg/kg，早在给药后第4周就出现了摄食量、饮水量、排尿量的明显增加，给药后第2天即发现动物尿糖阳性，第3天的空腹血糖浓度开始呈持续性升高。

32糖耐量时间点的选择从猴糖耐量检测时间点看，彭芳等［9］在借助糖耐量从猕猴中筛选自发性糖尿病动物模型时，仅选择了0、90min2个时间点，未能反映动物血糖下降的趋势。

蒋绿芝等［3］利用链脲佐菌素诱导恒河猴糖尿病动物模型，检测糖耐量时选择了0、5、10、20、30、60、90min，漏掉了120min这一重要的时间点，而120min血糖在人类糖尿病诊断标准中是一个重要的指标。

本研究的糖耐量检测选择了时间点0、30、60、90、120min检测糖耐量，反映了血糖下降趋势，并记录了重要的120min血糖值，综合了以上两种时间点选择的优势。

33猴糖尿病诊断标准的制订根据流行病学调查，GAD是最早出现的自身抗原，在新诊断的Ⅰ型糖尿病病人中，60％～80％可检出GAD抗体，高者达96％［10-11］。

长期以来，动物糖尿病的血糖标准各文献报道不一致，多为111~167mmol/L之间，尚未见关于食蟹猴糖尿病诊断标准的相关报道。

王济等［12］建立中国地鼠自发性遗传性糖尿病，若3次或3次以上非空腹血糖均＞67mmol/L确定为糖尿病地鼠。

陈晓丽等［13］用四氧嘧啶注射Wistar大鼠造模，隔夜禁食12h，测尾静脉血糖＞78mmol/L确定为糖尿病。

李晶等［14］用四氧嘧啶诱发大白兔糖尿病模型，以注射后48、72h血糖值＞100mmol/L确定为糖尿病。

戴自英等［15］认为糖尿病模型血糖值标准为:

连续2d血糖值超过111mmol/L或葡萄糖耐量实验时，120min血糖仍未恢复到注射前水平。

贾雪梅等［16］的研究报道，小鼠血糖升高至145~278mmol/L，高血糖状态持续3周以上者确定为糖尿病小鼠模型。

本实验结果显示，在空腹血糖维持在高水平的同时，糖尿病的典型症状摄食、饮水和尿量增加即“三多”均表现很明显，尿糖也一直维持“＋＋＋＋”的水平，静脉糖耐量实验中2h空腹血糖≥100mmol/L。

故在制订食蟹猴糖尿病诊断标准的时候，空腹血糖是一个重要的参考指标，同时通过对人类糖尿病诊断标准的研究，糖耐量也是一个重要的指标。

经抽样调查，食蟹猴正常空腹血糖为mmol/L。

综上所述，参照猴正常空腹血糖，可以判定动物已成模，且猴糖尿病的诊断标准为：

①空腹血糖≥80mmol/L且持续3周以上；②葡萄糖耐量试验中，葡萄糖负荷后2h血糖≥100mmol/L。

具有以上2条之一皆可视为动物已患有糖尿病，若动物C肽下降（检测C肽水平能准确反映出胰岛β细胞的分泌功能［17］）、GADAb变为阳性，则可认为此糖尿病为Ⅰ型。

当然，本试验中也暴露出一些问题，在此提出以下解决办法：

①在给动物注射STZ后48h内每4h检测1次血糖，如发现有异常即视情况注射胰岛素或葡萄糖;②作为判断动物成模的重要指标，血糖和尿糖的关系以及何时出现异常尚未明确，所以建议在今后的试验中增加检测时间点，在给药后第２天即每日检测尿糖，如果出现异常即予当天晚上禁食，并于次日检测空腹血糖，而且还要在接下来的２周内每３d平行检测尿糖和空腹血糖１次；③结合猴的特殊糖代谢特点，糖耐量实验应改为检测以下几个时间点的血糖值：

0、10、30、60、120min；④动物在实验结束之后将不处死，观察糖尿病并发症的出现种类以及出现时间。

　　【参考文献】

［1］李聪然，游雪甫，蒋建东.糖尿病动物模型及研究进展［J］.中国比较医学杂志，2005，15

（1）:

59.

［2］匡德宣，代解杰，鲁帅尧，等.不同剂量链脲菌素对恒河猴某些常规生理指标的影响［J］.中国实验动物学报，2003，11

（1）:

54.

［3］蒋绿芝，代解杰．孙晓梅，等．糖尿病猴建立前后的血糖、胰岛素和C肽变化［J］．中华内分泌代谢杂志，2001,17：

322．

［4］唐东红，代解杰，蒋绿芝，等．链脲佐菌素诱发实验恒河猴糖尿病性视网膜并发症模型的建立［J］．中国实验动物学报，2002,10（3）：

173．

［5］庞荣清，何占龙，王惠萱，等.实验性猕猴Ⅰ型糖尿病模型的建立及评价［J］.中国兽医学报，2007，2：

234.

［6］TheriaultBR，ThistlethwaiteJRJr，LevisettiMG，et，maintenance，andreversalofstreptozotocininducedinsulindependentdiabetesmellitusinthejuvenilecynomolgusmonkey［J］.Transplantation，1999，68（3）:

331.

［7］LitwakKN，CefaluWT，WagnerJ　hyperglycemiaincreasesarteriallowdensitylipoproteinmetabolismandatherosclerosisincynomolgusmonkeys［J］.Metabolism,1998,47（8）:

947.

［8］TsutsumiK，IwamotoT，HagiA，etinduceddiabeticcynomolgusmonkeyisamodelofhypertriglyceridemiawithlowhighdensitylipoproteincholesterol［J］.BiolPharmBull,1998,21（7）:

693.

［9］彭芳，杨远华.实验性糖尿病动物模型制备及指标测定评价［J］.大理学院学报，2003，2

（1）:

1.

［10］董维平，胡远峰，王煜，等.非胰岛自身抗体与Ⅰ型糖尿病［J］.中华内分泌代谢杂志，2003,19（4）:

287.

［11］池莲祥，聂本遂，刘香萍，等.GADA、ICA、IAA及IA22测定在糖尿病诊断分型中的意义［J］.中国实验诊断学，2005,9（3）:

406.

［12］王济，薄家璐.中国地鼠自发的遗传性糖尿病模型［J］.中国病理生理杂志，1988,5：

262.

［13］陈晓丽，卢彦敏，徐君东，等.促肝细胞生长素对实脸性糖尿病大鼠的治疗作用［J］.中国医院药学杂志，1999,19（8）:

455.

［14］李晶，张春元，张宝珍，等.四氧嘧啶诱发大白兔糖尿病模型的研究［J］.中国校医，1999,13

（1）:

30.

［15］戴自英.实用内科学（上册）［M］.第8版.北京:

人民卫生出版社，1986:

617.

［16］贾雪梅，齐易祥，王惠珠，等.实验性糖尿病对小鼠肝脏酶组织化学和超微结构的影响［J］.解剖学杂志，1995,18（5）：

451.

［17］黄沛隆.血清C肽和胰岛素测定对2型糖尿病的诊断价值［J］.中国基层医药，2006，13，667.