大肠杆菌中胞外分泌N糖蛋白地生产.docx

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大肠杆菌中胞外分泌N糖蛋白地生产

大肠杆菌中胞外分泌N糖蛋白的生产

AdamC.Fisher,1CharlesH.Haitjema,2‡CassandraGuarino,3,4‡EdaC¸elik,3‡ChristineE.Endicott,3‡

CraigA.Reading,1JudithH.Merritt,1A.CelestePtak,5ShengZhang,5andMatthewP.DeLisa2,3,4*

摘要

空肠弯曲菌（Campylobacterjejuni）的pgl基因组编码的一个完整的N蛋白糖基化的途径，这个途径能官能地移到大肠杆菌上去。

在这个系统中，我们分析N糖基化，细菌中膜迁移和受体蛋白折叠之间的相互作用。

我们开发了一个重组N–聚糖受体肽标签，允许不同的重组蛋白的N-糖基化，蛋白质在能糖基化大肠杆菌分子的周质中表达。

用这种糖基化标签，一个明显不同之处在糖基化模型中被观察到了，周质蛋白决定了内膜迁移的模型（i.e.,Sec，信号识别颗粒[SRP]，或双精氨酸迁移[TAT]导出），这种现象表明蛋白质导出方式可以影响N-糖基化效率。

我们也建立工程培养基蛋白定位到周质外的环境，比如外膜，膜囊，和细胞外培养基，这些可以作为N糖基化培养基。

两者合计，我们的结果表明，空肠弯曲菌N-糖基化的组织与大肠杆菌中的不同的分泌机制是亲和的，有效扩大重组大肠杆菌N–糖组。

此外，这个简单的糖基化标签策略扩大了糖工程工具箱和打开了细菌合成一大批重组糖蛋白结合物的大门。

前言

天冬酰胺连接（N连接）蛋白糖基化是至关重要的且保留在真核生物有机体中。

它是最普遍的所有蛋白质翻译后修饰，影响到近70%的真核蛋白质组。

结合到真核分泌和膜蛋白上的聚糖附属物可影响蛋白的折叠和稳定性，齐聚，抗水解，排序，和运输。

N-连接的糖基化发生在内质网（ER）中且涉及到内质网膜脂质载体上多糖的装配,其次是转移到特定的天冬酰胺残留的目标多肽上。

最初，N–连接糖基化只发生在真核生物中。

然而，N-糖蛋白现在已经被描述到生活的所有领域，包括古菌和最近的细菌，其中最具特征的例子是人类胃肠菌空肠弯曲菌（Campylobacterjejuni）。

在空肠弯曲菌中，参与这个途径的基因组包括一个17-kb命名为pgl的蛋白糖基化基因。

迄今，超过40种周质和膜糖蛋白已被确定为空肠弯曲菌，且大多数这些绑定到N-乙酰半乳糖胺（GalNAc）-特效血凝大豆凝集素（SBA）。

质谱和核磁共振共振（NMR）的研究显示，N连接聚糖就是GlcGalNAc5Bac，这里Bac是细菌糖胺（2,4-二乙酰氨基-2,4,6-三脱氧葡萄糖）。

这个分支七糖通过按次序添加在脂质载体上的激活核苷酸糖以及细胞质内膜表面的十一碳烯焦磷酸酯来合成。

一旦装配完，脂连的七糖通过假定的ATP结合盒（ABC）运输人PglK快速翻转通过膜。

七糖通过一种叫PglB的寡糖传输酶（OST）催化转移到了周质培养基蛋白上。

PglB是单个完整的膜蛋白，和催化真核亚基OSTSTT3有明显的顺序相似性。

PglB把七糖固定在天冬酰胺酸上，以D/E-X1-N-X2-S/T为基本图案（在这里X1，X2是除脯氨酸外的任意残基），一种相似于真核细胞糖基化位点的位点。

近期Wacker和合作者把整段空肠弯曲菌（C.jejuni）pgl基因转移到大肠杆菌上，赋予这些分子使蛋白质糖基化的能力。

天然空肠弯曲菌（C.jejuni）糖蛋白例如Peb3和AcrA能通过Sec途径定位到周质，在具有糖基化能力的大肠杆菌中N糖基化。

AcrA通过双精氨酸转运途径（Tat）运输时也能N糖基化，Tat途径因为能通过内膜导出折叠蛋白的能力而众所周知。

除了周质蛋白，一些天然空肠弯曲菌（C.jejuni）N-糖蛋白基于生物信息分析被预测为完整的膜蛋白。

共同的，这些早期的研究表明空肠弯曲菌（C.jejuni）N-连接糖蛋白组织与不同的分泌机理亲和，能容忍从不折叠多肽到完整折叠蛋白域（虽然高度复杂且溶剂暴露）。

然而受到膜迁移和细菌上受体蛋白折叠的影响，糖基化还没有被完全完成。

定位到周质外的蛋白，例如外膜或细胞外培养基是否与N糖基化亲和还不知道。

因此，本文的目的在于研究不同分泌和细胞外蛋白培养基在带有pgl基因大肠杆菌分子中N糖基化的程度。

为了解决这个问题，我们开发了一种基因编码N聚糖受体多肽标签（GT），它能附加在末端或植入重组蛋白内部位置。

许多用GT来修饰的重组蛋白在表达pgl基因的大肠杆菌菌株中可靠地被糖基化了。

当GT被用来和通过不同输出途径（e.g.,Sec,信号识别颗粒[SRP]，或Tat）定位到周质上的蛋白质结合时，我们发现这些蛋白质在糖基化模型中的一个明显不同之处，这取决于他们在内膜上迁移的模式。

在所有测试的事例中，通过GT的N聚糖附属物没有对蛋白质活性产生任何可测量的影响。

最后我们发现定位到不同位点的蛋白质是很容易被N糖基化的，这些位点包括周质，外膜，膜囊和细胞外培养基。

材料和方法

细菌菌种和生长条件所有这个研究用到的菌种都在表1中列举了。

大肠杆菌DH5α用作质粒的克隆，大肠杆菌菌株CLM24（16）用在所有糖蛋白表达实验中除非特别标记。

由于分子表面糖蛋白的标记，大肠杆菌菌株BW25113∆waaL:

:

Kan被使用（3）。

为了外膜膜囊的准备，大肠杆菌菌株CE8032通过P1vir噬菌体的转导来生产。

简单来讲，卡那霉素标记的等位基因能在受体分子JC8031中转导，其中JC8031是一种有很多小泡的tolRA的突变菌株，等位基因能从BW25113∆waaL:

:

Kan中得到。

由于YebF影响分泌研究，MC4100菌株由于有最小的麦芽糖结合蛋白（MBP）漏损率而被使用，其中有15个普通的大肠杆菌菌株被测试，其中一个衍生菌株在它早期成长阶段没有MBP漏损率。

晚上大肠杆菌要用新鲜的Luria-Bertani（LB）培养基来稀释，再加抗生素和0.2%葡萄糖，在30℃或37℃下培养。

在对数中期时（光密度在600nm），培养基换成了没有葡萄糖且含有抗生素的LB溶液，蛋白质的表达受到100µM异丙基-β-D-硫代半乳糖-吡喃糖苷（IPTG）pTrc99A-基质表达载体或0.2%阿拉伯糖pBAD基质表达载体的诱导。

诱导反应在25℃或30℃下持续24h。

抗菌素用以下浓度：

100μg/ml氨苄青霉素（Amp），25μg/ml氯霉素（Cm）,和50μg/mlKan。

质粒构造质粒pTrc-GT-6Х-His是以植入合成的DNA来克隆的，该DNA编码GT（集成DNA技术［IDT］）和一个在XbaI和HindIIIpTRC99A之间的六—His（6Х-His）主题。

DNA编码malE,∆spmalE

（在那sp代表信号顺序/多肽），sptorA-malE,spdsbA-malE和spmalE被分别植入到SacI和XhoIof

pTrc-GT-6Х-His来制造pTrc-MBP-GT,pTrc-∆spMBP-GT,pTrc-spTorA-MBP-GT,pTrc-spDsbA-MBP-GT,和pTrc-spMBP-GT。

编码∆spmalE的DNA被克隆进pTrc-spMBP-GT的SalI位点来制造pTrc-spMBP-GT-MBP。

编码GT-MBP的DNA然后被克隆回SacI和AfeI位点的pTrc-MBP-GT来制造pTrc-spMBP-GT-MBP-GT。

编码Top7的DNA被克隆进pTrc-spDsbA-MBP-GT的XbaI和XhoI位点来制造pTrc-spDsbA-TOP7-GT。

编码sptorA-gfpmut2的DNA被克隆进pTrc-GT-6Х-His的SacI和BamHI位点来制造pTrc-spTorA-GFP-GT。

编码26.10IgG重链和轻链双版本的DNA通过pMAZ360-26.10的PCR扩大来得到且通过AvrII和SpeI消化。

PCR产品被克隆进pTrc-spDsbA-TOP7-GT，pTrc-spDsbA-TOP7-GT已经被XbaI和SpeI切断来移动Top7编码的基因。

最终的质粒是pTrc-spDsbA-26.10LC-spPelB-26.10HC-GT，表达带有DsbA信号肽的轻链，带有PelB信号肽的重链和一个C-终点的GT。

pTrc-spDsbA-Fc质粒通过克隆人类IgG1的Fc区变成pTrc-spDsbA-MBP-GT的XbaI和HindIII来制造。

pTrc-spDsbA-FcDQNAT质粒也用相同的方法来制造，除了Fc基因，Fc基因编码Q295D,Y296Q和S298A的点突变且通过在Saccharomyces

Cerevisiae中的同性质重组克隆进pMQ70（49）然后克隆进pTrc-spDsbA-MBP-GT的XbaI和HindIII位点。

质粒pBAD18-CjaA通过放大来自C.jejuni的cjaA基因来制造（由BrendanWren提供）。

cjaA的PCR放大在质粒pBAD18的NcoI和NotI位点被克隆，包括在NotI和PsiI之间的旗表位末端。

质粒pBAD24-OmpX-GT通过植入在质粒pBAD24-OmpX*-HisKpnI和SpeI位点的GT顺序来制造（在这里*表示一个OmpX的突变形式，OmpX包含包含一个植入多肽到loop2的克隆位点）这样的GT多肽末端定位在丝氨酸残基OmpX的细胞loop2外的53和54号位。

这跨膜循环能够容忍短肽插入不影响Ompx表面表达（44）。

一个在KpnI和SpeI位点侧面的GQSGQ键也被产生了。

一双顺反子结构的共表达OmpX-GT和PglB的是由放大pglB从空肠弯曲杆菌的基因组DNA，并插入得到的PCR之间的产品XbaI和SBFI的质粒pBAD24。

接下来，OmpX-GTNcoⅠ位和XmaⅠ之间插入在相同的质粒，但用其自己的核糖体结合位点相同的一个上游的pglB。

质粒pBAD18-ClyA-GT构建成pTrc-GT-6Х-His通过第一插入的PCR-amplifiedclyA基因-His的SacI和XhoI位之间。

整个ClyA-GT-6Х-His，它的结构是通过PCR扩增和插入之间的SacI和HindIII位点在pBAD18。

YebF质粒pTrc99A的衍生物。

对于这些，E.大肠杆菌一套YebFPCR扩增并克隆在pTrc99A的SacⅠ和XbaⅠ位之间。

对照组同样由克隆YebF的N-末端信号肽（spYebF）或构造运用于大肠杆菌表现系统的YebF缺乏成熟的域的N-末端信号肽（∆spYebF）SacI和XbaI位于pTrc99A上。

GT或MBP-GT的融合，再加入每个YebFXbaⅠ和SalⅠ位点之间，SalⅠ和HindⅢ位点之间插入。

本研究质粒的序列的所有构建的DNA测序被证实。

工程蛋白质溶液内消化在溶液中消化MBP-GT进行如前所述（63）无还原和烷基化反应。

A蛋白样品（200克）溶解在总量为100升变性溶液含有6.0MHCl和50毫摩尔Tris，pH值为8.0，并孵育在56℃下为45分钟。

样品1:

5稀释于50mM乙酸铵碳酸氢盐，pH值7.8。

然后，以10克胰蛋白酶（Promega）或1克的lysC（西格玛）被添加到的MBP-GT或ACRA-4（ACRA含有四种可能的糖基化位点）的溶液，分别在的酶-底物的比率为1:

20（重量/重量）。

蒸煮16小时在37℃下进行，并停止通过加法为0.5％（体积/体积）的三氟乙酸（TFA）。

摘要脱盐固相萃取使用的是9月包装盒（Waters公司），并洗脱的胰蛋白酶肽，蒸发至干，用SpeedVac离心SC110。

将样品重新溶解在200升含0.1％甲酸的用2％乙腈得到20pmol/μl的储备液。

纳米喷射的质谱分析MBP-GT进行了分析，输注纳升电质谱（MS）分析如下。

酶分析在2pmol/μl的浓度在50％乙腈稀释样品中。

MS分析之前，用0.1％甲酸。

将样品（6升）装入一个独立的玻璃尖（交付的LTQOrbitrapXL配备了一个纳米级的离子源质谱仪。

该示例一项调查显示MS扫描和分析，调整和正离子模式，串联质谱（MS/MS）的扫描选择的离子使用的Orbitrap作为一个质量分析仪。

使用碰撞诱导解离（CID）碎片，分辨率为60000。

该仪器被操作时，所得到的数据进行分析。

所有的实验中使用的喷雾电压为1.8千伏，毛细管温度设定到150℃，碰撞能量被设置为20％用于MS/MS实验。

最大扫描时间被设置为50ms，且结果2至3微扫描的为每个扫描相加。

调查MS扫描和一个单独的糖基化的肽的MS/MS扫描，20分钟获得的质量范围从m/z200到m/z2的数据。

数据分析进行采集的原始数据的使用Xcalibur2.0.7软件。

对20分钟的MS和MS/MS谱进行了总结。

纳米LC-MS/MS分析消化ACRA-4样品（4升）分别注射使用著名的自动进样器上的C18柱（Dionex公司）上线脱盐，然后分离在PepMapÇ18反相（RP）的纳米柱（3米，75米15厘米;Dionex公司），并在洗脱60-min梯度的5％至45％乙腈在0.1％甲酸中，在275升/分钟。

“纳米液相色谱法（nanoLC）列线连接到一个混合型三重四极杆线性离子阱质谱仪。

MS进行数据采集分析1.4.2软件（应用生物系统公司）的前体离子（PI）扫描触发，依赖于信息的采集（IDA）。

跨质量监测氧鎓离子的HexNAc的前体离子在m/z204.08扫描波长为0.2，M/Z=650到1600，用于检测糖肽​​含有N-acetylhexo胺单元的范围。

纳流喷雾电压为2.0千伏，使用在正离子

去簇电压设置为50eV，用氮气作为碰撞气体。

在IDA分析中，每个前体离子扫描和增强分辨率扫描后，选定两个至三个最高强度的离子在多个电荷态下作为串联质谱（MS/MS），根据不同的电荷状态和m/z值的检测离子滚动碰撞的能量。

所有由前体离子扫描获得的MS/MS谱检测到的糖肽离子，用1.4生物分析软件解释并手动检查（美国应用生物系统公司）。

细胞分离和蛋白质纯化。

为了分离细胞内的糖蛋白，在5000转15分钟4℃下离心沉淀相等数目的细胞，在加有1克（体积/体积）的TritonX-100和1毫克/毫升溶菌酶的缓冲液中裂解，在冰里温育30分钟。

再将细胞每隔1分钟超声30秒4次。

超声处理的细胞，在4℃下10,000转离心20分钟并收集上清液，相等数目的细胞在5000转4℃下15分钟离心收集上清液为周质和培养准备。

上清液组分经0.2微米过滤，然后用密理博的离心超滤管浓缩。

将细胞沉淀洗涤，然后细胞内周质和细胞质分馏到其他组分，用冰维持渗透压在其他地方描述（13，31）。

外膜囊泡（OMVS）中分离出不含细胞的上清液如前所述（58）。

简单地说，

在5000转15分钟4℃离心后，无细胞的上清液用0.2微米的真空过滤器过滤，并用28Ti转子（贝克曼仪器公司）141000转2小时4℃下超速离心，将包含OMVS的颗粒收集在磷酸盐缓冲液中盐溶液中（PBS，pH7.0）。

OMV接种在LB培养基中并灭菌。

在自然条件下根据说明书用NTA（Qiagen）将6号标记蛋白进行纯化。

Fc结构域根据说明书（赛默飞世尔科技公司）使用Nab蛋白A/G的离心柱进行纯化。

蛋白质分析。

用SDS-聚丙烯酰胺凝胶分离蛋白质（BioRad公司），并如前所述（13）用Western印迹法进行。

简单地说，蛋白质转移到聚偏二氟乙烯（PVDF）膜，并把膜进行以下操作：

抗-MBP抗体与芳香胺过氧化物酶（HRP）（NewEnglandBiolabs公司）共轭，抗-6-His抗体和HRP共轭，多克隆抗体针对OmpX（14）（由让-玛丽·佩奇提供），由空肠弯曲菌的七庚糖生成hR6P抗血清（提供由MarkusAEBI），，抗人的IgG-HRP（Promega公司）和SBA-HRP（Sigma公司）共轭。

试验中OmpX和HR6抗血清，抗兔IgG-HRP（Promega公司）作为二次抗体使用。

进行酶联免疫吸附试验（ELISA），使用印涂覆有4微克/毫升牛血清白蛋白（BSA）的地高辛（Sigma公司）或Fc结构域NAB蛋白将A/G柱纯化。

BSA的地高辛-或Fc涂层plateswere用稀释的IgG26.10的镍NTAspin柱（Qiagen）或FcRI（CD64;R＆D系统）孵育并分别纯化样品。

基板西格玛快速检测邻苯二胺盐酸盐（OPD;Sigma公司），反应进行20至30分钟，在490nm的酶标仪190测含量（MolecularDevices公司）。

对于IgG的ELISA试剂盒，该信号，所确定的印迹成像反应26.10IgG抗体的总量。

用于测量的绿色荧光蛋白（GFP）荧光活性，使用荧光酶标仪（分子移动设备）进行荧光测量。

荧光标记的细菌流式细胞仪和荧光显微镜如前所述分析测量（32）。

简单地说，诱导蛋白表达后，100微升的细胞用PBS洗涤，并用20微克/毫升的SBA-的AlexaFluor488（Invitrogen公司）中PBS中孵育45分钟在黑暗中。

，一个额外的PBS洗涤后，流式细胞仪数据收集在FACSCalibur系统（BectonDickinson公司）。

平均荧光确定从直方图50,000个事件收集的细胞发出的荧光，在扫描模式下使用FACSCalibur流式细胞仪。

对于显微镜，15微升细胞培养用AlexaFluor488标记的SBA被放置到一个的显微镜载玻片与盖玻片。

上执行的ZeissAxioskop显微镜40显微镜配备了蔡司100/1.30NEOFLUAR的镜头，X-引用光源（EXFO，密西沙加，安大略省），和Semrock（罗切斯特，NY）中华前景GFP排放的过滤器多维数据集。

数字图像现货Flex的数字相机（诊断仪器公司），和控制现货成像软件。

明视场照明下拍摄的所有图像在紫外光照射下用于测量的绿色荧光蛋白（GFP）荧光活性，使用荧光酶标仪（分子移动设备）进行荧光测量。

荧光标记的细菌用流式细胞仪和荧光显微镜如前所述分析测量（32）。

简单地说，诱导蛋白表达后，100微升的细胞用PBS洗涤，并用20微克/毫升的SBA-的AlexaFluor488（Invitrogen公司）中PBS在黑暗中孵育45分钟。

，多次PBS洗涤后，在FACSCalibur系统（BectonDickinson公司）收集流式细胞仪数据。

从直方图50,000个事件收集的细胞发出的荧光中确定平均荧光，在扫描模式下使用FACSCalibur流式细胞仪。

对于显微镜，15

微升细胞培养用AlexaFluor488标记的SBA被放置到显微镜载玻片与盖玻片。

ZeissAxioskop显微镜40显微镜配备了蔡司100/1.30NEOFLUAR的镜头，X-引用光源（EXFO，密西沙加，安大略省），和Semrock（罗切斯特，NY）中华前景GFP排放的过滤器多维数据集。

数字图像使用Flex的数字相机（诊断仪器公司），和控制成像软件。

在紫外光照射下拍摄的所有图像。

图1重组糖蛋白的糖基化标签大肠杆菌。

（一）GT是由连续四个D-X1-N-X2-T

sequons被有效地在细菌中的糖基化的。

（二）免疫印迹分析（从左至右）与C-末端GT的MBP（MBP-GT），成熟的的MBP缺乏本地信号肽与C-端GT（△spMBP-GT），空肠弯曲杆菌和本机糖蛋白ACRA工程有两个额外的糖链受体位点（ACRA-4）。

蛋白质是携带pACYCpgl（+）或pACYCpglmut（-）的细胞中表达。

（三）Westernblot分析（从左至右）MBP-GT，其原生信号肽序列替换为DsbA蛋白的信号肽或TORA，MBP的窝藏后，原始信号序列的N-端GT（spMBP-GT-MBP）和MBP携带N-和C-末端GT序列（spMBP-GT-MBP-GT）。

每个人都表达的细胞进行pACYCpgl。

从细胞裂解液中蛋白进行纯化，经Ni-NTA亲和层析法。

每个车道装入相同量的蛋白质。

印迹用抗-His（顶部）或hR6P（底部）抗体。

结果

一种通用受体序列作为N-糖基化的重组蛋白。

我们的总体目标是系统地评价大肠杆菌N-连接的糖蛋白分泌到周质和其他胞质外的糖基化位置。

为了实现这个目标，我们首先试图建立一个肽标签，可在重组基因编码的感兴趣的蛋白质，从而使这些蛋白质在大肠杆菌中普遍的糖基化。

陈和他的同事最近的研究表明序列DQNAT是一个在体外糖基化最佳的受体者PglB（7）。

在此基础上因此，我们的理由是，遗传修饰的靶蛋白与含有一个或多个N-或C-末端肽DQNAT可能就足够了携带PGL基因的大肠杆菌的N-糖基化。

为了测试这个概念，我们

设计了一个由四个连续的甘氨酸残基（图1a）的C-末端GTDQNAT彼此分离。

为了测试该标签的可靠性，我们克隆的大肠杆菌“基因，在质粒pTrc99A的与C-末端GT编码麦芽糖结合蛋白（MBP），，然后由一个六组氨酸（6-His）的标记，以方便纯化。

将所得的质粒用于转化同时携带质粒pACYCpgl或质粒pACYCpglmut的大肠杆菌菌株BL21（DE3），这分别为（PGL）或突变的C.的（pglmut）的空肠弯曲菌的糖基化基因（57）。

重组蛋白细胞提取物经Ni-NTA亲和层析纯化并通过SDS-PAGE及随后的免疫印迹分析。

Ni-NTA亲和纯化的馏分细胞MBP-GT表达的主要是野生型PGL基因下的一个蛋白质量为45的kDa和3个分子质量高的蛋白条带，但不是pglmut（图1b）。

当MBP-GT没有其在细胞质中表达时三高分子质量的条带消失。

因此，我们推测，这些较高的分子质量条带以糖基化形式MBP-GT大量复制。

为了证实这一点我们测试hR6P与纯化的抗血清蛋白质的反应性。

这种血清抗空肠弯曲菌全细胞提取并已被证明优先检测空肠弯曲杆菌N-糖蛋白（马库斯AEBI，个人通信）。

只有携带PGL基因细胞才会MBP-GT，免疫反应产生hR6P抗血清（图1b，底部面板）。

无论是MBP-GT表达的糖基化缺陷细胞及细胞质表达MBP-GT检测抗血清hR6P（图1b，底部面板）。

为比较，我们设计C.空肠弯曲菌糖蛋白ACRA，其中包含4个可能的糖基化位点在N117N123N147N273（ACRA-4）和一个PELB导出信号，通过段

通路（34）定位到周质。

表达ACRA-4x主管大肠杆菌细胞的糖基化，生产的多个高分子

质量的蛋白质，使用hR6P抗血清进行检测（图1b），说明存在多个空肠弯曲杆菌的N-聚糖。

这些聚糖，未发现ACRA-4x是糖基化缺陷表达的细胞。

分析来自由nanoLC-MS/MS证实的特性的身份C.heptasaccharideGlcGalNAc5Bac菌（参照图中的S1补充材料）的纯化MBP-GT蛋白质的糖基化受体细胞碎裂的胰蛋白酶肽。

提取的色谱峰值分析显示，被发现的异构体大致在的比例64％，34％和2％的1，2，和3-聚糖亚型（数据未示出），假设所有聚糖异构体具有相同的离子化效率。

应该分析指出的是未检测到一个四-聚糖亚型（数据未示出）与三个观察一致不同条带Westernblot（图1b和c）。

通过SRP和Tat途径定位蛋白到周质上。

上述结果表明MBP的糖基化，通过Sec（37）途径定位到周质。

接下来，我们MBP-GT在空肠弯曲菌糖链是否有特定附着位点，同样可以通过不同的蛋白质导出方法，即SRP或Tat途径。

值得一提的这两种出口途径形成鲜明对比的传输机制。

SRP途径翻译导出的折叠的蛋白质（25，48），而众所周知Tat的途径能够翻译折叠后的蛋白（13，45）。

要针对MBP-GT的SRP和Tat的途径，SRP-相关信号由原生二硫化物变为信号肽与异构酶I（spDsbA）的（48）和Tat相关信号变为三甲胺N-氧化物还原酶（spTorA）的（47），spDsbA-MBP-GT或spTorA_MBP-GT_的细胞表达由