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四氧化锇渗透力弱，所以组织块要小。
否则，将从组织块表面到中间形成一个固定梯度，致使内部自溶过程继续进行引起组织块内部固定不好。
不能保存糖原也不能有效固定核酸，而且对微管固定效果也不理想。
固定的时间不宜太长。
时间过长，会使组织变脆，给切片带来困难。
此外四氧化锇与蛋白质、不饱和脂肪酸交联形成的复合体都是易溶于水的物质，特别是在长时间的固定后，更易溶解。
因此，使用四氧化锇固定样品，时间控制在12小时较为适宜。
四氧化锇能与乙醇或醛类起氧化－还原反应，生成沉淀。
所以，醛类处理过的样品转入四氧化锇固定之前或四氧化锇固定之后转入乙醇溶液脱水之前都必须用相应的缓冲液充分漂洗干净。
四氧化锇是酶的钝化剂，不能用于细胞化学的研究。
醛类固定剂
甲醛（formaldehyde）
甲醛分子中只有一个碳原子，含有一个醛基，分子式为$CH_2O$，分子量为30。
市面上虽然有多种形式的甲醛溶液出售，但它们含有少量的甲酸和甲醇，对被固定的样品产生不良影响，适合电镜固定使用的只有通过由多聚甲醛（paraformaldehyde）新鲜制备的甲醛溶液。
甲醛溶液的毒性很大，即使是稀释液也要格外小心操作。
甲醛溶液对皮肤有硬化作用，长时间接触可能导致皮肤破裂、皮炎或是过敏症状；
甲醛极易挥发，它对呼吸道也有影响，长时间暴露在甲醛气体中会使嗅觉敏感度降低；
此外甲醛对眼睛也有影响，而且还被认为是致癌物质。
因此在操作甲醛粉末或溶液时都必须很小心，带上手套并在通风橱中进行。
少量废弃的醛类试剂（甲醛、戊二醛和丙稀醛等）可以直接在大量流水冲稀的情况下倒进水池内（但要注意有关部门的有关规定），当然少量的醛类试剂与过量的1M甘氨酸混合后，再在大量流水冲稀的情况下倒进水池，会更安全。
通常100ml的甲醛（1％）需要50ml的1M甘氨酸，100ml1％戊二醛则需要35ml，而丙稀醛需要40ml。
大量的醛类试剂必须集中回收处理。
甲醛作为固定剂有如下特点：
由于甲醛的分子量小，它的穿透能力比戊二醛强，反应温和，可用于细胞组织化学研究的前固定。
而且它不象戊二醛有两个醛基，引入较少的游离醛基到组织细胞中，因而在一些细胞组织化学研究中更有利。
但它的反应是部分可逆的，对细胞基质保存差，脱水后大部分基质丢失，所以不少实验室不单独使用甲醛来固定样品，而将它与戊二醛配制成混合固定液使用。
甲醛对生物样品的作用与戊二醛相似，主要引起蛋白质交联。
在水溶液中，单个的甲醛分子以HO−CH2−OH的形式存在。
反应如下：
与戊二醛不同，甲醛既与DNA又与核蛋白反应，但这些反应都是部分可逆的。
另外，甲醛固定脂类的能力不强，可以与脂类相连的蛋白质作用。
戊二醛（glutaraldehyde）
戊二醛是一种五碳醛，含有两个醛基。
分子式为$C_5H_8O_2$，分子量为100。
电镜固定通常用市售的25％的戊二醛水溶液稀释成需要的浓度。
其pH为4.0$\sim$5.0。
氧气、高温、中性或碱性pH均能使戊二醛发生聚合失去醛基，并降低交联效力，所以平时这种原液应保存在低温处。
此外戊二醛存放时间过长时，pH值会降低，颜色变黄，固定效力也大大降低，若戊二醛pH值降至3.5以下或含有其它杂质时，必须纯化后才能使用。
戊二醛对皮肤有硬化作用，但它的挥发性较甲醛弱，最好能在通风橱中操作。
戊二醛作为固定剂有如下特点：
它的反应速度快，是优良的前固定剂。
但它的渗透速度较慢，必要时配合甲醛使用效果更佳。
它是蛋白质的强固定剂。
它能快速而不可逆地与氨基反应，和甲醛相似，戊二醛的一个醛基与氨基反应，脱水后生成不稳定的Schiff键化合物。
其反应的可能途径如下：
由于戊二醛有两个醛基，它可以通过与相邻的另一氨基反应，而产生交联作用。
戊二醛的两个醛基也可能与同一氨基作用，形成环状结构，如下
这种环状结构可以进一步与另一戊二醛反应，生成丁间醇醛冷凝物（Aldolcondensate）。
这种化合物与氧分子共同作用，生成稳定的嘧啶类衍生物（Pyridinederivatives），并在此过程中发生交联。
与甲醛不同，戊二醛的这一步反应是不可逆的，而且需要氧气的参与。
由于大块的样品内部氧气供应不足，戊二醛在大块样品的内部无法形成稳定的生成物，会导致样品内部的固定效果不佳。
因而在使用戊二醛固定时，小块的样品固定效果较为理想。
戊二醛通过交联作用固定蛋白质的过程会伴随氢离子的释放，使样品pH值降低。
为了维持pH值稳定在最佳水平，在戊二醛的固定剂中要加入足量的缓冲液。
戊二醛能通过固定核蛋白来固定组织和细胞中的DNA和RNA，能保存糖原，也可以固定和蛋白质有关联的或含有氨基和亚氨基的脂类。
但是只使用戊二醛固定的样品无法阻止后面的脱水、渗透和包埋过程对样品脂类的抽提，因而对细胞膜的固定效果不理想。
戊二醛在固定过程中并不完全破坏细胞膜的半透膜特性，因而需要选择合适的固定液渗透压，以免造成固定假象。
但合适的固定液渗透压随被固定细胞和缓冲液的种类改变，很难找到一个通用的渗透压。
在实际操作中，$1.0\%-2.5\%$戊二醛（使用0.1M磷酸盐缓冲液或0.1M二甲胂酸盐缓冲液）在一般情况下，已经能提供理想的固定效果。
除非观察到明显的渗透压造成的假象，一般不对固定液专门进行渗透压调节。
用戊二醛前固定的样品不易变脆，可以进行长时间固定（但最好不要超过一个星期），因而适用于远离实验室或野外现场取材。
但戊二醛在稀释溶液中会自行发生一系列反应，因而固定液应尽可能新鲜配制中。
其它固定剂
醋酸铀（uranylacetate）既是一种固定剂又是一种染色剂。
它可以与磷酸基团反应，从而固定DNA和RNA，以及含有磷酸基团的磷脂，从而对膜结构的保存有帮助。
另外，它可以与蛋白中的酸性基团（如天冬氨酸残基、谷氨酸残基）和碱性基团（如赖氨酸残基）反应，从而起固定蛋白的作用。
但醋酸铀不能很好得保存糖原。
通常在使用了醛类固定剂和四氧化锇固定剂后，再使用$0.5-1.0\%$的醋酸铀水溶液，进行第三重固定。
操作醋酸铀时要特别注意，尽管市售的醋酸铀放射性不强，但它仍是一种潜在的致癌物。
醋酸铀应密封于棕色瓶阴凉处保存。
丙烯醛（acrolein）是一种三碳醛，含有一个醛基和一个双键。
它比甲醛和戊二醛活泼，渗透组织的速度也比甲醛和戊二醛快。
它可以很好地保存蛋白和磷脂，最好作为甲醛或戊二醛固定液的添加剂使用。
通常使用市售密封的100%丙烯醛液体，固定时使用的浓度小于1%。
它溶于水的速度慢，毒性很大，着火点低，储存和使用它都比上述另外两种醛类危险，非必要时不推荐使用。
丙烯醛非常活泼且挥发性很强，即使是操作稀释后的溶液也要格外小心，所有与丙烯醛相关的操作绝不能离开通风橱进行，并且最好有经验丰富的操作者在场指导。
丙烯醛适合于固定大块的样品，植物组织或有厚细胞壁的微生物样品，以及表面覆盖有几丁质或蜡质的样品。
但丙烯醛不适用于整个动物的灌注固定。
丹宁酸（Tannicacid）是一种从植物中提取的物质，泛指五倍子酸（gallicacid）糖苷或多聚糖苷。
大分子很难渗透到组织中，因此电镜中使用低分子量的丹宁酸。
丹宁酸既是一种强的固定剂，能固定许多蛋白以及糖类衍生物，又是一种媒染剂，能增强对重金属（如铀、铅）的吸收，从而增强样品反差，特别是细胞外膜、弹性纤维、细胞连接、肌肉纤维等。
由于丹宁酸渗透速度慢，通常只用作渗透速度快的固定剂的添加剂使用。
丹宁酸没有固定的用法，0.5-2.0%丹宁酸和0.5mg/ml皂角苷（saponin，增加丹宁酸的渗透速度）与2.5-4.0\%戊二醛一起使用可以得到良好的效果。
但固定时间要延长到3-4小时以上，并且推荐使用醋酸铀作第三重固定。
丹宁酸适用于灌注固定。
重铬酸钾（potassiumdichromate）在固定中有两种作用，一是缓冲作用，二是固定作用，帮助保存脂类和糖类。
在处理神经组织样品时，因为重铬酸钾能很好地保存髓磷脂，可与四氧化锇配合使用，作为第二重固定剂。
但需要注意的是，重铬酸钾是一种致癌物质，应小心操作。
高锰酸钾（potassiumpermanganate）可以与脂类反应，增强膜结构的反差。
可以保存DNA和糖原，但有一定的抽提作用，几乎无法固定细胞内的颗粒性或纤维状结构，可能会引入一些假象。
穿透性强，适用于有厚细胞壁或蜡质层包被的植物及昆虫样品。
使用时可以不加缓冲液，固定时间不宜太长，,0.5-1.0%高锰酸钾溶液固定30分钟到2小时。
附录二固定与染色
一、固
定
细胞学实验的第一步应对观察之机体的组织先行固定，然后再作进一步的处理和研究（应用冰冻切片法事先可不经固定）。
（一）固定的目的
1、尽量保持组织、细胞、内部结构及其成分的原来状态，并能较长时间的保存备用。
2、固定后材料硬化，便于切削。
3、固定是使细胞内含物发生必要的物理及化学变化，有利于进一步的染色处理，获得良好的制片效果。
据此，固定剂应具备下述三点基本要求：
⑴能够迅速渗入组织内杀死细胞，并兼有保存作用。
⑵对于细胞内含物，特别是要研究部分要尽可能少产生变化，对于细胞和组织不发生或尽可能少发生膨胀和收缩作用，使其保持与生活时期相似的面貌。
⑶能够获得良好的染色效果。
（二）固定液
常用的固定剂有酒精、冰醋酸、福尔马林（甲醛）、苦味酸、氯仿、铬酸、升汞、重铬酸等。
这几种药剂能作为固定剂单独使用，但事实上每种药都不能同时具备上面所提到的要求，故应用时都采用混合固定液。
下面是几种常用的混合固定液：
1、卡尔诺氏固定液（Caroy'
sfixative）有两种不同的配方，可根据不同材料分别应用。
⑴100％酒精
3份
冰醋酸
1份
⑵100％酒精
6份
氯
仿
这两种固定液渗透，杀死迅速，固定作用很快，植物根尖固定只需15分钟，花粉囊约1小时，若固定时间太长（超过48小时）则会破坏细胞，其中的纯酒精固定细胞质，冰醋酸固定染色质，并可防止由于酒精而引起的高度收缩和硬化。
⑴液适于植物；
⑵液适于动物。
材料从固定液中取出后用95％酒精洗涤，直至去尽醋酸味（换液两次即可）然后保存于70％酒精内。
2、万能固定液──它主要是由甲醛──醋酸──酒精混合配成。
这类混合剂通常称为“FAA”、“标准固定液”、或“万能固定液”，是制片中良好的固定剂兼保存剂，但不能作染色体研究用，其混合比例变更很广泛，现仅列举两种。
⑴液常用一般植物组织和器官的固定。
⑵液则用于植物胚胎材料的固定。
⑴50％（或70％）酒精
90毫升
5毫升
甲
醛
⑵50％酒精
89毫升
6毫升
3、铬酸──醋酸固定液（Chromoacetic）根据各溶液质量的差别，可分为弱、中、强三种铭酸──醋酸混合液。
此三种固定液对不同的材料有不同的作用，一般此种固定液固定处理要12－24小时或更长时间，流水冲洗需24小时，要彻底去掉铭酸，以免影响以后的染色处理。
⑴铬醋酸弱液
10％铬酸水溶液
2.5毫升
10％醋酸水溶液
5.0毫升
蒸馏水
加至100毫升
此液适合于固定藻类、菌类、苔藓等。
⑵铬醋酸中液
7毫升
10毫升
此液适于固定植物根尖、小子房或分离出来的胚株。
⑶铬酸酸强液
30亳升
此液适于固定木材、坚硬的叶片及成熟的子房等。
4、布安氏固定液（Bouin'
sfixafive）
苦味酸（饱和）
15份
5份
1份
配制方法：
此液需用前临时配制，随配随用，否则失效无用。
苦味酸为黄色结晶体。
溶解度很低，故其饱和液可预先一次配好多量保存备用（约500ml蒸馏水中加入苦味酸结晶10－15克，振荡使其溶解），固定液在一切准备工作就绪后，立即要固定材料时，再按上面比例将三种药液混合。
此液适合于固定动物组织及植物的胚囊和根尖，固定时间24小时，取出放于清水中洗涤，除去表面的苦味酸，然后以35－70％酒精洗涤，最好在其中加入少许碳酸锂（Li2CO3）以除去材料内部的黄色。
二、染
色
染色是使我们研究的组织或细胞结构明显、清晰、可见，以便观察和研究，生物学上用的染料，按其来源可分为两大类，即：
天然染料与人工染料。
前者数量少，为天然产物，取自动物和植物，如洋红、苏木精、地衣红等；
而后者的种类多，为人工合成；
多数由煤焦油中提取，故又称煤焦油染料，如：
结晶紫、吉姆萨、碱性品红、酸性品红、甲基绿、焦宁等。
下面介绍几种在细胞学制片中常用的染色剂。
1、醋酸洋红（Acetic-carmine）
45毫升
55毫升
洋
红
饱
和
先将冰醋酸及蒸馏水混合煮沸，逐渐加入洋红至饱和为止，冷却过滤即成。
此染色剂对于植物花粉母细胞，根尖细胞核的染色体，果蝇唾腺和神经球细胞等染色体染色效果良好，故被广泛的应用于涂抹制片法研究植物细胞的核与染色体。
2、铁矾──醋酸──洋红（Iron-acetic-carmine）
1克
45％醋酸
100毫升
4％铁矾液
数滴
将1克洋红溶解在煮沸的45％的醋酸液中，冷却后过滤，再加数滴4％铁矾液，颜色变为葡萄酒色即成。
此液对临时涂抹制片的染色，效果十分理想。
3、丙酸──铁──洋红──水合三氯乙醛（PICCH）
在100毫升煮沸的45％丙酸中加入0.5克洋红，并继续迥流6小时，冷却后过滤，然后在5毫升上述染液中加入2克水合二氯乙醛，充分溶解，摇匀，再加入数滴Fe（OH）3的丙酸饱和液（以不发生沉淀为准）。
这一配方对某些用一般染料效果差的材料，着色性强，而且加入水合三氯乙醛，使细胞较为透明。
4、醋酸地衣红（Acetic-orcein）
55毫升
地衣红
2克
同醋酸洋红，使用时根据具体要求稀释再用。
5、醋酸龙胆紫（Acetic-centianviolet）
10－45％醋酸
龙胆紫
0.75克
加热使其溶解，待冷却后过滤备用，其中龙胆紫亦可用结晶紫（Crystalviolct）代替。
醋酸之浓度不同材料而异，使用者应按具体材料进行摸索，找出最适浓度。
6、希夫氏（Schiff'
s）试剂
碱性品戏（Fuchsinbasic）0.5克
1mol·
1-1-HCl盐酸
10毫升
偏重亚硫酸钠（钾）
0.5克
活性炭
若干
把0.5克碱性品红溶于100毫升煮沸蒸馏水中，继续煮沸随时搅拌5分钟，冷却至50℃过滤（棕色瓶中），滤液中加入1mol·
1-1盐酸10毫升，冷却至25℃再加0.5克偏重亚硫酸钠（钾），塞紧瓶塞振荡数分钟，置黑暗外24小时，溶液应呈无色或茶色，即可使用，倘使染液有色，则可加入若干活性炭，过滤即得，如不符合要求，可再重复一次。
7、苏木精（Hematoxylin）
苏木精
0.5克或4克
95％酒精
先将苏木精于95％酒精中溶解，再加入蒸馏水，置于棕色瓶中，瓶口蒙数层纱布拧紧，经一个月以上氧化才可应用，同时需过滤。
若加入0.1克碘酸钠可立即成熟供用。
8、德拉菲氏（Dclafied'
s）苏木精
甲液
纯酒精
硫酸铝铵饱和水溶液（1:
11）100毫升
乙液
纯甘油
25毫升
醇
⑴将苏木精溶于纯酒精中，然后一滴一滴地加入硫酸铝铵饱和溶液并随时搅动；
⑵暴露于阳光或空气中；
⑶1周到10天后加入乙液，再经1－2个月后，颜色变深，过滤后即可用，如急需，可加入少许过氧化氢，使之提早成熟应用。
此液配成后可长期保存使用。
9、丙酸──铁矾－苏木精
贮存液：
A、2克或8克苏木精（根尖染色）溶于100毫升50％的丙酸或乙酸；
B、0.5克铁矾溶于100毫升50％的丙酸或乙酸。
染色液：
Ａ液或Ｂ液等量混合，并在每5毫升上述混合液中加入2克水合三氯乙醛，充分溶解，摇匀。
贮存液能较长时间保存，染色液一般只能保存一个月，而在2周内使用效果最佳，较适合于花药的压片。
10、甲基绿──焦宁（Methyi-Green-Pyroin）
配方⑴甲液
石碳酸
0.25克
100毫升
甲基绿
1克
焦
宁
使用前将1份甲液和1份乙液混和即成。
此液能对DNA和RNA区分染色。
配方⑵甲基绿
甘
油
20毫升
0.5％石碳酸
先将甲基绿、焦宁溶于2.5毫升95％酒精中，然后加20毫升甘油和100毫升0.5％石碳酸混合即成。
11、石碳酸──品红（Carbolfuchsin）
甲液
碱性品红
3克
70％酒精
10克
5％石碳酸水溶液
丙液
乙液
55克
甲醛（37％）
6毫升
染色液
丙液
山梨醇
1.8克
配制方法，将碱性品红溶于酒精中得甲液，此液可长期保存，取甲液和5％石碳酸水溶液混合得乙液，此液两周内使用，量取乙液与冰醋酸、甲醛混合得丙液，此液可长期保存，最后取丙液加45％醋酸及山梨醇混合成染色液，配制的染色液需两周后使用，在室温下可保存两年。
此种染色液对植物根尖细胞、花粉母细胞中细胞核、染色体染色效果较好。
12、Giemsa母液
Giemsa粉
0.5g
甘油（A.R）
33ml
甲醇（A.R）
先将少量甘油加入研钵中，将Giemsa粉充分研细，再倒入剩余甘油，并
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