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0.05)。

结论:

山慈菇提取物对人结肠癌HT29细胞有明显的促凋亡作用,其机制可能与上调Cyt-C、Bax、Caspase-3下调Bcl-2蛋白的表达有关。

  【关键词】山慈菇提取物;

结肠癌HT29细胞;

凋亡

  【中图分类号】R282.71【文献标志码】A【文章编号】1007-8517(2016)16-0017-03

  Abstract:

ObjectiveToinvestigatetheeffectsofCremastraappendiculataextractonproliferationandapoptosisinhumancoloncancerHT29cells.MethodsUsingtheMTTassaytodeterminethecellinhibitionratesonhumancoloncancerHT29cells;

theflowcytometrytodeterminetheapoptosisrates;

WesternblottechnologytodeterminetheexpressionsofCyt-C、Bcl-2、BaxandCaspase-3protein.ResultsCremastraappendiculataextractinhibitedthehumancoloncancerHT29cellsinatimedependentanddosedependentmanner.theapoptosisratesofthecellswereincreasedafterbeingculturedbyCremastraappendiculataextract;

theexpressionsofCyt-C、BaxandCaspase-3proteinwereincreasedandtheexpressionofBcl-2proteinwasdecreased(P<

0.05).ConclusionsCremastraappendiculataextractcaninducetheapoptosisofHT29cellsbyamechanismthatmayberelatedtoincreasetheexpressionofCyt-C、BaxandCaspase-3proteinaswellasdecreasetheexpressionofBcl-2protein.

  Keywords:

CremastraAppendiculataExtract;

HumanColonCancerHT29Cells;

Apoptosis

  结肠癌是消化系统常见恶性肿瘤之一,其发病率、死亡率逐年增高,随着手术、放疗、化疗等的进步,早中期结肠癌治疗效果明显提高,但对于中晚期、高龄及难手术患者缺少有效的治疗方法。

目前,越来越多的医务科研工作者将目光投向天然动植物的研究,从中寻找可以防治肿瘤的有效成分,日渐成为临床抗肿瘤药物研究的热点[1-2]。

山慈菇是常用的抗肿瘤中药之一,为兰科植物中杜鹃兰、独蒜兰及云南独蒜兰的干燥假鳞茎,具有解毒、化痰、散结等功效,临床上常以配伍用药的形式应用于各种肿瘤的治疗,其中包括结直肠癌[3]。

现代药理研究表明,山慈菇具有抗肿瘤细胞生长、抑制血管生成、抗炎以及影响造血系统等作用,但其抗肿瘤的作用机制尚未完全阐明[4]。

研究拟探讨山慈菇提取物对结肠癌HT29细胞凋亡的影响,以期为山慈菇运用于结肠癌的治疗提供实验依据。

  1仪器与材料

  1.1仪器细胞培养箱MCO-175(日本Sanyo公司);

流式细胞仪6HT2L(美国GuavaEasyCyte公司);

BX50显微镜(日本Olympus公司);

超净工作台VD1320(哈尔滨东联技术开发有限公司);

高速冷冻离心机CR21(日本Hitachi公司);

凝胶成像仪及凝胶成像分析系统GelDOC2000(美国Bio-Rad公司)。

  1.2材料山慈菇提取物(沈阳药科大学植物化学教研室提供,纯度为98%。

称取50g山慈菇粉末先后加入500mL、400mL、300mL去离子水加热,冷却过滤,浓缩至200mL,加入95%乙醇冷藏洗涤,最后获得干粉6g,使用培养基配置成所需要的浓度)。

胎牛血清(杭州四季青生物工程公司);

RPMI1640培养液(Gibco生物工程有限公司);

0.5%二甲基亚砜、MTT(DMSO,美国Sigma公司);

AnnexinV/PI凋亡试剂盒(南京凯基生物技术有限公司),Cyt-C抗体、Bcl-2抗体、Bax抗体、Caspase-3抗体、β-actin、辣根过氧化物酶标记羊抗兔二抗和羊抗鼠二抗(美国SantaCruz公司);

吸附(ELISA)试剂盒(武汉伊莱瑞特生物科技有限公司)。

  2方法

  2.1人结肠癌细胞HT29的培养将人结肠癌细胞株HT-29置于56℃、30min10%胎牛血清、RPMI1640培养液中,于37℃、5%CO2、饱和湿度的细胞培养箱中培养,每2~3天传代一次,留取对数生长期的细胞用于实验。

 2.2MTT法检测细胞抑制率取对数生长期细胞,用0.25%胰酶消化并收集细胞,以RPMI1640培养液调整细胞密度至1×

105个/mL,接种于96孔培养板中,每孔0.1mL,在培养箱中培养24h使细胞贴壁。

空白对照组加入培养基0.1mL,不同浓度的山慈菇提取物组以10、20、30mg/mL培养细胞24、48、72h后,吸弃各孔中培养液,每孔加入0.1mLMTT[含5%磷酸盐缓冲液(PBS)],在37℃下孵育4h后弃去上清,加入0.5%DMSO0.1mL,振荡摇匀,室温放置10min。

在0.1mLDMSO中发现蓝紫色的MTT甲臜沉淀物,使用ELISA法以酶标仪于490nm波长处测定OD值,计算细胞抑制率=(1-实验组OD值/空白对照组OD值)×

100%。

  2.3流式细胞术检测细胞凋亡取对数生长期细胞,用0.25%胰酶消化并收集细胞,以RPMI1640培养液调整细胞密度至1×

105个/mL,接种于96孔培养板中,每孔0.1mL,移入培养箱中培养24h使细胞贴壁。

以0(空白对照组)、10、20、30mg/mL山慈菇提取物培养细胞24h后,每孔悬浮细胞用PBS洗2次,加入500μlBindingBuffer和FITC标记的AnnexinⅤ(20μg/mL)10μl和碘化丙啶(PI,50μg/mL)5μl,避光反应15min,采用流式细胞仪定量检测,计算凋亡率。

  2.4Westernblot法检测Cyt-C、Bcl-2、Bax、Caspase-3蛋白表达取对数生长期细胞,用RPMI1640培养液调整细胞密度至1×

105个/mL,接种于6孔培养板中,每孔0.1mL,移入培养箱中培养24h使细胞贴壁。

以0(空白对照组)、10、20、30mg/mL山慈菇提取物培养细胞24h后,用裂解液抽提。

根据蛋白提取试剂盒操作说明提取各组细胞总蛋白,将细胞的蛋白样品定量,变性;

进行聚丙烯酰胺凝胶电泳;

转膜;

脱脂牛奶封闭2h;

洗膜,加入Cyt-C、Bcl-2、Bax、Caspase-3(稀释倍数1∶1000)的一抗以及β-actin(稀释倍数1∶1000)作为阳性对照,4℃过夜;

加辣根过氧化物酶标记的二抗,室温孵育1h,然后洗膜、风干;

ECL发光显影。

用凝胶图像分析系统进行数据分析。

  2.5统计学方法采用SPSS19.0统计软件进行数据分析。

计量资料以(x±

s)表示,多组间的比较用单因素方差分析,两组之间比较用LSD法进行统计。

P<

0.05为差异有统计学意义。

  3结果

  3.1细胞抑制率的测定MTT结果显示,随着时间与药物干预浓度的增加,山慈菇提取物对人结肠癌HT29细胞生长增殖的抑制率逐渐增加,差异有统计学意义(P<

0.01),并且抑制作用呈时间、剂量依赖关系。

见表1。

  3.2细胞凋亡率的测定与空白对照组比较,10、20、30mg/mL山慈菇提取物培养细胞24h后,细胞出现明显凋亡,并且随着山慈菇提取物浓度的增加,凋亡细胞的比例逐渐增大,差异有统计学意义(P<

0.01),并呈剂量依赖性。

见表2。

  3.3Westernblot法检测Cyt-C、Bcl-2、Bax、Caspase-3蛋白表达的测定由图1可知,10、20、30mg/mL山慈菇提取物培养细胞24h后,山慈菇提取物可使Cyt-C、Caspase-3、Bax蛋白表达增强,而Bcl-2蛋白表达减弱,差异有统计学意义(P<

0.05),并呈剂量依赖关系。

  4讨论

  细胞凋亡是基因介导的主动发生的程序性死亡,在正常情况下细胞凋亡与增殖维持动态平衡[5]。

细胞凋亡既可以出现在正常的生理过程中,也可以出现在多种疾病中,如肿瘤因关闭了线粒体的这一调控功能,使细胞凋亡减少出现细胞过度增殖现象[6]。

因此肿瘤的发生不仅与细胞增殖失控相关,还与细胞凋亡密切相关[7],中间牵涉很多促凋亡和抗凋亡细胞因子。

随着对肿瘤细胞的凋亡和调控机制认识不断深入,选择性得抑制细胞增殖与诱导细胞凋亡是治疗恶性肿瘤的一个方向[8]。

实验采用MTT法证明山慈菇提取物能够抑制人结肠癌HT29细胞的生长,并且抑制作用随着剂量的增加、时间的延长而增强。

另外在细胞培养过程中,出现了大量的细胞凋亡,通过流式细胞仪检测的HT29细胞凋亡情况,结果表明,山慈菇提取物能够促进细胞凋亡,并且具有剂量依赖性。

  凋亡是多基因严格控制的过程,包括Bcl-2家族、Caspase家族、癌基因C-myc、抑癌基因P53等。

而Caspase家族的凋亡途径包括两条:

①死亡受体介导的外源性途径(Fas-FasL);

②线粒体介导的内源性调亡途径。

而Bcl-2家族成员又与线粒体介导的凋亡途径密切相关[9]。

研究表明:

细胞在外界以及DNA损伤等内部信号的刺激下将Bcl-2家族中的成员聚集在线粒体,在促凋亡与抑凋亡因子的作用下调节细胞色素C(Cyt-C)的释放,在胞浆中其与凋亡相关因子结合形成多聚体,激活Caspase-9,再激活其下游的Caspase-3,细胞发生凋亡[10-11]。

Bcl-2作为抑凋亡基因,在生长因子受体介导的信号传导途径中起作用,其通过抑制细胞凋亡而参与肿瘤的发病。

而Bax则与其相反,它能促进细胞凋亡[12]。

若Bcl-2过表达,则与Bax形成异二聚体抑制细胞凋亡,若Bax过表达,则形成同源二聚体促进细胞凋亡[13]。

另外,研究提出Bcl-2/Bax比率关系细胞凋亡,当比率增大时,细胞凋亡受到抑制[14]。

本实验通过Western-blot法检测Cyt-C、Bcl-2、Bax、Caspase-3在人结肠癌HT29细胞中蛋白的表达,来研究山慈菇提取物对细胞凋亡的影响。

结果显示,山慈菇提取物通过提高Cyt-C、Bax、Caspase-3蛋白表达降低Bcl-2蛋白表达来诱导细胞凋亡。

  综上所述,山慈菇提取物可以通过调节Cyt-C、Bcl-2、Bax及Caspase-3蛋白的表达来抑制结肠癌HT29细胞增殖,诱导细胞凋亡,从而发挥抗肿瘤作用。

但本实验处于初步探讨阶段,仍需进一步加强山慈菇的实验研究,发掘山慈菇在肿瘤治疗中的作用。

  参考文献

  [1]RasoolS,KadalSA,RasoolV,etal.Acomparativeoverviewofgeneralriskfactorsassociatedwiththeincidenceofcolorectalcancer[J].TumourBiol,2013,34(5):

2469-2476.

  [2]MartinRC,AiyerHS,MalikD,etal.Effectonpro-inflammatoryandantioxidantgenesandbioavailabledistributionofwholeturmericvscurcumin:

Similarrootbutdifferenteffects[J].FoodChemToxicol,2012,50

(2),227-231.

  [3]范海洲.山慈菇药理研究[J].湖北中医杂志,2015,37

(2):

74-75.

  [4]董海玲,郭顺星,王春兰,等.山慈菇的化学成分和药理作用究进展[J].中草药,2007,11(38):

1734-1738.

  [5]HassanIH,ZhangMS,PowersLs,etal.InfluenzaAviralreplicationisblockedbyinhibitionoftheinositol-requiringenzyme1(IRE1)stresspathway[J].JBiolChem,2012,287(7):

4679-4689.

  [6]马远娜.蚯蚓活性蛋白抗结肠癌DLD-1细胞作用机制的研究[D].济南:

山东大学,2014.

  [7]杜先华,黄松,冯泓瑞,等.博落回提取物血根碱对肿瘤细胞增殖及凋亡的影响[J].时珍国医国药,2014,25(12):

2860-2861.

  [8]GreenDR,GalluzziL,KroemerG.CellbiologyMetaboliccontrolofcelldeath[J].Science,2014,345(6203):

1446.

  [9]MartinouJC,YouleRJ.MitochondriainApoptosis:

Bcl-2familyMembersandMitochondrialDynamics[J].DevCell,2011,21

(1):

92-101.

  [10]EstaquierJ,ValletteF,VayssiereJL,etal.Themitochondrialpathwaysofapoptosis[J].AdvExpMedBiol,2012,942:

157-183.

  [11]杨金梅,张德纯,李科,等.酪酸梭菌诱导结肠癌SW-480细胞凋亡及作用机制[J].第三军医大学学报,2013,35(22):

2448-2451.

  [12]金子,蔡颖,张晔,等.姜黄素对人结肠癌PI3-K/Akt和MEK/ERK信号通路的影响[J].现代肿瘤学,2015,23(12):

1629-1631.

  [13]YaoQ,ChenJ,LvY,etal.Thesignificanceofexpressionofauto-phagy-relatedgeneBeclin,Bcl-2andBaxinbreastcancertissue[J].TumourBiol,2011,32(6):

1163-1171.

  [14]杜志杰,董金垚,师如意,等.青蒿琥酯联合奥沙利铂对人结肠癌细胞HCT116的作用研究[J].世界中西医结合杂志,2014,9(7):

710-713.

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