消毒与灭菌效果的评价方法和标准docWord文档格式.docx

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长袖手术衣,4块小手术巾,2块中手术巾,1块大手术巾,30块10cm×

10cm、

8层纱布敷料包裹成25cm×

30cm×

30cm大小)。

手提压力蒸汽灭菌器用通气贮

物盒(22cm×

13cm×

6cm)代替标准试验包,盒内盛满中试管,指示菌片放于中

心部位两只灭菌试管内(试管口用灭菌牛皮纸包封),将盒平放于手提压力蒸

汽灭菌器底部。

经一个灭菌周期后,在无菌条件下,取出标准试验包或通气贮物盒中的指

示菌片,投入溴甲酚紫葡萄糖蛋白胨水培养基中,56℃培养48h,观察培养基

颜色变化。

化学指标

在物品包外用化学指示胶带,可作为物品是否经过灭菌的处理标志。

物品包内中心部位用化学指示剂,可作为物品是否灭菌的参考标志。

7结果判定及评价

同次检测中,标准试验包或通气贮物盒内,每个指示菌片接种的溴甲酚紫

蛋白胨水培养基全部不变色,判定为灭菌合格。

指示菌片之一接种的溴甲酚

紫蛋白胨水培养基由紫色变为黄色时,判定为灭菌不合格。

化学指示剂的颜色变为与灭菌合格标准色相同时,或熔化时作为灭菌合格

的参考标准。

第二篇紫外线表面消毒效果评价方法与标准

8主题内容与适用范围

本方法规定了物体表面消毒用紫外线的波长、强度及评价其消毒效果的

物理学指标和生物学检测方法。

本方法适用于紫外线直接照射到的物体表面消毒效果评价。

9指示菌

大肠杆菌(8099或ATCC25922)。

枯草杆菌黑色变种芽胞(ATCC9372)。

10物理学指标

在电压220V时,普通30W直管型紫外线灯,在室温为20~25℃的使用情况

下,紫外线辐射强度(垂直1m处)应≥70μW/cm2。

在电压220V时,高强度紫外线灯,在室温为20~25C的使用情况下,紫外

线辐射强度(垂直1m处)应≥200μW/cm2。

照射剂量按式

(1)计算:

22

剂量(μW·

s/cm)=强度(μW/cm)×

时间(s)

(1)

11检测方法

物理学检测方法

灯管的紫外线强度

(标定有效

(μW/cm)用中心波长为的紫外线强度测定仪

期内),在灯管垂直位置1m处测定。

在实际应用中消毒表面的照射强度应以灯管与消毒对象的实际距离测定。

表面消毒接受的照射剂量,应达杀灭目标微生物所需。

对大肠杆菌,照射

剂量应达到20000μW·

s/cm2,对枯草杆菌黑色变种芽胞应达到100000μW·

s/cm2。

生物学检测方法

采用载体定量消毒试验。

载体制备按本标准附录C进行。

开启紫外线灯5min后,将8个染菌玻片平放于灭菌器皿中,水平放于适当

距离照射,于4个不同间隔时间各取出2个染菌玻片,分别投入2个盛有5mL

洗脱液(1%吐温80,1%蛋白胨生理盐水)试管中,振打80次。

经适当稀释后,取洗脱液,作平板倾注,每个染菌玻片接种两个,放37℃

培养48h作活菌计数。

阳性对照,除不作照射处理外,取2个染菌玻片分别投入2个盛有5mL洗

脱液中振打80次,余按进行。

计算杀灭率

阳性对照回收菌数–试验组回收菌数

杀灭率(%)=×

100·

·

(2)

阳性对照回收菌数

12判定标准

对指示菌杀灭率≥%判为消毒合格。

达物理学检测标准时,作为消毒合格的参考标准。

第三篇液体消毒剂消毒效果评价方法与标准

13主题内容与适用范围

本方法具体规定了消毒剂消毒效果生物学检测方法及其评价标准。

本方法适用于消毒剂对各种物体的消毒效果评价。

14理化指标

置20±

2℃水浴中,测定在使用浓度下杀灭指示微生物达到消毒或灭菌所需的最短时间(min)。

15指示微生物

细菌

细菌繁殖体:

金黄色葡萄球菌(ATCC6538)、大肠杆菌(8099或ATCC25922)。

细菌芽胞:

枯草杆菌黑色变种芽胞(ATCC9732)。

真菌:

白色念珠菌(ATCC10231)。

乙型肝炎表面抗原:

纯化抗原mL)。

16检测方法

中和试验(见附录A)。

消毒剂定性消毒试验(见附录B)。

消毒剂定量消毒试验(见附录C)。

消毒剂杀菌能量试验(见附录D)。

乙型肝炎表面抗原(HBsAg)抗原性破坏试验(见附录E)。

17消毒效果评价标准

对细菌和真菌的杀灭率≥%,对HBsAg,将检测方法灵敏度104倍或5×

104

倍(载体试验)的HBsAg抗原性破坏,可判为消毒合格。

对枯草杆菌黑色变种芽胞全部杀灭,可判为灭菌合格。

在实际应用中消毒效果评价以有机物保护试验的最低浓度和最短时间为该

消毒剂达到实用消毒所需的浓度和时间。

附录A

中和剂中和效果试验

(补充件)

A1内容提要

为了准确评价消毒剂对微生物的杀灭作用,消毒试验中要求选择适当中

和剂。

所选中和剂不仅能及时中止消毒剂的杀微生物作用,且中和剂本身及

其与消毒剂的反应产物(下称中和产物)尚需对微生物无抑制或杀灭作用,对

培养基无不良影响。

A2培养基和试剂

营养琼脂培养基

成分:

蛋白胨10g

牛肉膏3g

氯化钠5g

琼脂15g-20g

蒸馏水1000mL

制法:

除琼脂外,其他成分溶解于蒸馏水中,调pH至,加入琼脂后加热

溶解,过滤分装,经121℃、压力蒸汽作用30min,灭菌后备用。

L磷酸盐缓冲液~,下称PBS)。

磷酸氢二钠

磷酸二氢钾

蒸馏水

将磷酸氢二钠与磷酸二氢钾溶解于蒸馏水中,pH为~,分装,经

121℃、30min压力蒸汽灭菌后备用。

A3器材

锥形烧瓶。

平皿(直径9cm)。

量筒。

精密pH试纸。

无菌试管。

无菌刻度吸管,,。

恒温培养箱。

冰箱。

菌落计数器。

酒精灯。

A4中和剂(注明生产厂家,批号)

A5操作方法

用PBS将指示菌制成5×

106cfu/mL悬液。

将消毒剂用灭菌蒸馏水配制成3种不同浓度,在不加中和剂的情况下,测

知该消毒剂10min抑杀指示菌%以上的最低有效浓度。

取消毒剂10min抑杀指示菌的最低有效浓度与待选择中和剂进行试验,选

出中和剂种类并依据等当量中和原则,调整中和剂浓度,选出试验浓度的消

毒剂使用中和剂的浓度。

中和剂选择试验时,先将消毒剂与中和剂溶液混合,制成中和产物溶液,

再按表A1分组进行。

表A1中和剂选择试验

组号

菌液加于:

取混匀液加入:

(加入

作用10min后,取原液

后总量为5mL)

或稀释液接种平板(2

1

消毒剂

PBS

原液,×

10

混匀作

中和剂

用10min

3

中和产物

×

100,×

1000

4

原液

然后,倾注平板置

37℃培养48h,计数菌落数,按稀释倍数计算出回收

菌数(cfu/mL)。

A6中和试验结果报告方法(如表A2)

表A2中和试验结果举例

各组回收菌落数,cfu/mL

3、4、5

组间误

1%卵磷脂

708

106

106

1%卵磷脂+%吐温80

794

1%吐温80

194

%硫代硫酸钠

132

3、4、5组间误差率计算公式

误差率(%)=[(∣三组均数-3组菌数∣+∣三组均数-4组菌数∣+∣三组均

数-5组菌数∣)/(3×

三组均数)]×

100

A7判定标准

3、4、5组菌数相似,其误差率≤10%。

6组无菌生长。

2组菌数明显少于3、4、5组。

1组不长菌或明显少于2组。

符合上述标准的中和剂表明可消除消毒剂对指示菌的作用,中和剂及其

与消毒剂的中和产物对指示菌无毒害,判定为该消毒剂的中和剂。

A8消毒试验用中和剂浓度的选择

按步骤进行,按~的标准判定。

附录B

消毒剂定性消毒试验

(补充件)

B1内容提要

定性消毒试验是测定受消毒因子作用后的样本有无细菌生长的试验方

法。

用于对消毒因子灭菌效果的鉴定和消毒剂杀灭细菌效果的初步评价。

B2培养基与试剂

普通肉汤培养基

蛋白胨

氯化钠

肉浸液

取蛋白胨、氯化钠加入肉浸液内,微温溶解,调节pH至弱碱性,煮

沸、滤清,调节pH使灭菌后为~,压力蒸汽灭菌备用。

试剂

稀释液:

含1%蛋白胨的LPBS~。

灭菌蒸馏水。

中和剂:

按本标准附录A选择。

B3器材

灭菌刻度吸管,,。

灭菌试管。

灭菌三角烧瓶。

恒温水浴箱。

B4试验方法

将菌液进行活菌计数,并用稀释液配制成含菌量为5×

105~5×

106cfu/mL

的菌悬液。

将灭菌试管10支排列于试管架上,标记管号。

每个试管加灭菌蒸馏水,放20±

2℃水浴中。

于第1管内加适当浓度消毒液,混匀后取移入第2管,再次混匀,从第2

管中取移入第3管,以此类推至第9管,混匀后弃去,第10管中不加消毒液

作对照。

加菌悬液于各管中,混匀并记录各管加菌时间,使菌药混合液中含菌量均

为105~106cfu/mL。

各管分别于加菌后4个不同间隔时间,取出,加入中和剂内,中和10min

后,取出加入营养肉汤管内。

将接种细菌的肉汤管放37℃培养48h,观察初步结果,无菌生长管继续培

养至第7天。

试验重复5次。

B5结果判定

若肉汤管混浊,则表示有菌生长,记为阳性,以(+)表示。

若培养至第7天,肉汤管澄清,则表示无菌生长,记为阴性,以(—)表示。

对难以判定的肉汤管,取接种于营养琼脂平板,用灭菌L棒涂匀,放37℃

培养48h,观察菌落形态;

并做涂片染色镜检,判断是否有指示菌生长。

有指示菌生长记为阳性。

5次试验,均无指示菌生长表示达到灭菌。

附录C

消毒剂定量消毒试验

C1内容提要

定量消毒试验是测定受消毒因子作用后,样本残存微生物数量的试验方

法,以杀灭率表示结果。

用于对消毒剂杀灭效果的评价。

C2培养基与试剂

普通营养琼脂培养基:

按本标准制备。

LPBS~。

洗脱液:

含中和剂、1%蛋白胨、%吐温80的PBS。

C3器材

灭菌平皿(直径为9cm)。

微量进样器。

载体:

根据需要及试验目的选用经脱脂处理×

大小的布片、纸片、玻片、橡胶片、塑料片、不锈钢片或铝片。

C4试验方法

定量悬液试验

将菌液进行活菌计数,并用稀释液稀释成含菌量为5×

106cfu/mL

将消毒剂用灭菌蒸馏水稀释成3个不同浓度,各吸取分别加入三个试管内,

放20±

待试管内液体温度与水浴温度平衡后,在三个试管中分别加入菌悬液(含菌

量为5×

106cfu/mL),混匀并开始记时。

分别于4个不同间隔时间,各取菌液混合液移入中和剂中混匀。

中和10min,作适当稀释后进行活菌计数。

阳性对照以洗脱液代替消毒液,同时按进行。

按不同稀释度推算出每个样本存活菌数(cfu/mL),按式(C1)计算杀灭率:

载体定量试验

将灭菌载体平放于灭菌平皿内,每个载体滴注定量菌液(载体回收菌量达5

106cfu/片),涂匀,放37℃培养箱待干。

应用市售染菌载体时,回收菌量亦应达5×

106cfu/片)。

用灭菌蒸馏水将消毒剂稀释成3个不同浓度,各吸取5mL分别加入三个试管内,放20±

待试管内液体温度与水浴温度平衡后,加入染菌载体,作用至规定时间,

将染菌载体移入含中和剂的5mL洗脱液试管内,中和10min,振打80次,适当稀释,接种两个平板。

放37℃培养24~48h,进行活菌计数。

阳性对照,以洗脱液代替消毒液按进行。

C5结果判定

5次试验的杀灭率均≥%判为消毒合格。

对枯草杆菌黑色变种芽胞5次试验均全部杀灭判为消毒合格。

附录D

有机物保护试验

D1内容提要

有机物保护试验是测定消毒剂对有机物保护条件下的微生物的杀灭作

用,以杀灭率表示之,其结果与该消毒剂定量消毒试验相比较,用于评价有

机物对消毒剂的杀菌能力的影响。

D2培养基与试剂

普通营养琼脂培养基,按本标准制备。

试剂:

同。

按本标准附录A进行选择。

L磷酸缓冲液~(简称PBS)。

含1%蛋白胨,%吐温80的生理盐水。

小牛血清加入菌悬液中,使其最终浓度为10%。

D3器材

同本标准C3。

D4试验方法

实验前预先将菌液进行活菌计数,用稀释液稀释,加入小牛血清,使其最

终含血清量为10%,含菌数为5×

106cfu/mL,以此作为试验菌悬液。

以下步骤同本标准。

D5结果判定

5次试验的杀灭率均大于%所需最低浓度和最短时间,判为该消毒剂在有机物存在下,可以达到消毒的有效浓度和时间。

此有效浓度和时间与定量消毒试验达到消毒的有效浓度和时间相同或相近,判为有机物对消毒剂杀菌作用无明显影响。

达到消毒最低有效浓度增加一倍以上或最短作用时间延长一倍以上者可视为有明显影响。

附录E

乙型肝炎表面抗原破坏试验

E1内容提要

乙型肝炎表面抗原(HBsAg)破坏试验是以HBsAg的抗原活性为间接标志,

评价消毒因子对乙型肝炎病毒(HBV)灭活能力的试验方法。

适用于评价化学消毒剂、紫外线对HBV的消毒效果。

E2试剂

小牛血清(56℃,30min灭活)。

L磷酸盐缓冲液(PBS,~。

纯化HBsAgmL)。

固相放射免疫分析法试剂,要求特异性100%,精密性CV≤15%,灵敏度≤

mL,线性r>。

酶联免疫吸附法试剂,要求特异性100%,精密性CV≤15%,灵敏度≤mL,

线性r>。

E3器材

吸量器:

包括试管、吸管,,和种)和微量进样器μL)。

载体(直径大小的不锈钢片)。

免疫计数仪。

酶联免疫测定仪。

E⒊5低温冰箱(—30℃~—70℃)。

E4HBsAg悬液的配制

取LPBS~加入小牛血清,配成含6%小牛血清的悬液。

再取该PBS,加入浓度为mL的纯化HBsAg悬液,使成含%小牛血清,HBsAg浓度为100μg/mL的试验用HBsAg悬液。

将试验用HBsAg悬液盛装入容量为的玻璃安瓿中,封口,放-30℃~-70℃冰箱保存备用。

保存期为三个月。

E5HBsAg的检测方法

固相放射免疫分析法(SPRIA)。

酶联免疫吸附法(ELISA)。

E6中和剂选择

在测定消毒剂对HBsAg的破坏效果时,应先选出适宜的中和剂及其使用

浓度,再进行破坏试验。

所用中和剂:

a.应能有效而及时中止消毒剂的残余作用;

b.中和剂及其

与消毒剂的中和产物对HBsAg的抗原活性没有影响,亦不影响检测方法对

HBsAg检出的灵敏度。

将消毒剂用无菌蒸馏水配成不同浓度,取消毒液与悬液混匀,置20±

2℃水

浴条件下,作用10min,测定该消毒剂10min抑制或破坏HBsAg抗原性的最低

有效浓度。

取消毒剂10min抑制或破坏HBsAg抗原性的最低有效浓度与待选中和剂进

行试验,试验可按下列组别进行:

a.消毒液+HBsAg悬液;

b.消毒液+HBsAg悬

液作用10min后+含20%小牛血清的中和剂;

c.先取含20%小牛血清的中和剂

1mL与消毒液1mL,混匀,作用10~30min,制成中和产物溶液,再行试验。

中和产物溶液+HBsAg悬液;

d.含10%小牛血清的+HBsAg悬液;

e.含10%小牛血清的中和剂+HBsAg悬液;

f.中和产物溶液+。

经检测只有在c、d、e组HBsAg活性的测定值相近(相差10%以下)并都明显多于b组,a组HBsAg活性不能检出或检出活性明显少于b组,f组阴性对照正常,方可证明所选中和剂及其使

用剂量是适宜的。

进行消毒试验时,依据消毒剂与中和剂等当量中和原则,适当调整中和剂

的用量。

再次按步骤测定中和效果后,方可进行抗原性破坏试验。

E7破坏试验方法

悬液法

悬液法指将HBsAg在悬液中与消毒剂相互作用并进行抗原性破坏效果观

察的试验方法。

HBsAg悬液的浓度为检测试剂灵敏度的104倍。

如检测试剂的灵敏度为

1ng/mL,HBsAg的浓度应为10μg/mL。

取含5%小牛血清的加到含浓度为100μg/mL的HBsAg悬液中,混匀。

取小牛血清20mL加到含80mL灭菌的中和剂溶液中,混匀。

破坏试验:

将预定消毒液浓度倍的消毒液与HBsAg悬液按4∶1比例混合,混合液容量不少于。

然后置20±

2℃水浴条件下,作用达规定时间,即刻取混合液与等体积含20%小牛血清的中和剂混匀,作用10~30min,取样测定残留HBsAg的活性,每一样本平行测定2份,每份,取其平均值,判定破坏效果。

每种消毒剂观察3个浓度,每一浓度观察4个作用时间。

阳性对照:

取含20%小牛血清的中和剂1mL,加到含1mL试验用消毒液的试管中混匀,作用10~30min,制成中和产物溶液。

取该中和产物溶液加入试验浓度的HBsAg悬液取样检测,每一样本检测3份,每份,取其平均值为阳性对照值。

阴性对照:

取含20%小牛血清的中和剂1mL加到含1mL试验用消毒液的试管中,混匀,作用10~30min,取样检测,每一样本检测3份,每份取其平均值为阴性对照值。

应注意阴性对照不能用试剂盒的阴性对照样本。

载体法

载体法指将在载体表面的HBsAg与消毒因子相互作用,并进行抗原性破坏效果观察的试验方法。

HBsAg载体的制备

载体为直径大小的不锈钢片,经洗涤剂煮沸洗涤脱脂、压力蒸汽灭菌备用。

HBsAg悬液的浓度为检测方法灵敏度的

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