3 广东省仿制药一致性评价与衡量生物等效性试验生物样品分析报告要求规范试行Word文件下载.docx

3 广东省仿制药一致性评价与衡量生物等效性试验生物样品分析报告要求规范试行Word文件下载.docx

《3 广东省仿制药一致性评价与衡量生物等效性试验生物样品分析报告要求规范试行Word文件下载.docx》由会员分享，可在线阅读，更多相关《3 广东省仿制药一致性评价与衡量生物等效性试验生物样品分析报告要求规范试行Word文件下载.docx（16页珍藏版）》请在冰豆网上搜索。

（3）制定主计划表，掌握各项分析工作的进展。

（4）确保质量保证工作的开展。

（5）建立有效的沟通交流机制，以保证与申办者、药物临床试验机构及研究者之间可以及时、有效地沟通。

（6）建立完善的教育培训和考核制度。

（7）在每项实验开始前，指定项目负责人，试验过程中确需更换项目负责人时，应记录更换的原因和时间，并保留相关记录。

（8）审查、批准实验方案、标准操作规程、结果或报告。

（9）指定专人负责档案资料与生物样品的管理。

4.1.2质量保证负责人

质量保证部门应配备与其开展的工作相适应的人员。

质量保证人员应独立于其所监督的工作。

质量保证部门负责人的主要职责为：

（1）负责质量保证部门的工作安排和运行；

（2）审核分析实验方案、实验记录、结果或报告；

（3）根据每项工作的内容和持续时间制订监督计划并实施监督，详细记录监督的内容、发现的问题、采取的措施等，并向实验室负责人和项目负责人报告；

（4）检查实验室环境、设施、仪器设备和档案管理等；

（5）参与标准操作规程的制订和审核，并保存标准操作规程的副本。

4.1.3项目负责人

项目负责人具体负责临床试验生物样品的分析工作，具备相应专业本科或以上学历，两年以上生物样品相关分析工作经验，能够独立进行生物样品分析方法的建立和验证，并对所承担项目的分析方法、分析结果和分析报告负直接责任。

项目负责人的主要职责包括：

（1）组织制订该项目的实验方案；

（2）全面负责该项目的运行管理、组织实施；

（3）组织建立并验证分析方法，撰写验证分析报告；

（4）确保所有参与该项目的实验人员明确各自所承担的工作，并掌握和执行相关的标准操作规程；

（5）掌握工作进展，确保实验记录及时、完整、准确和清晰；

（6）确保实验中偏离方案的情况及采取的措施均有详细记录；

（7）整理、分析实验数据和结果，撰写分析报告；

（8）及时处理质量保证部门的报告。

4.1.4实验室工作人员应符合以下要求：

（1）具备严谨的科学作风和良好的职业道德以及相应的学历，经过专业培训与考核，并保存个人的培训与考核记录，具备相应的经验和能力并取得上岗资格；

（2）熟悉本规范要求，掌握并严格执行相关的标准操作规程；

（3）对所承担的检测技术工作和检测数据负责，及时、完整、准确和清晰地进行实验记录，对实验中发生的可能影响实验结果的任何情况应及时报告给项目负责人；

（4）对涉及保密的技术资料、受试者信息等履行其保密责任；

（5）根据工作岗位的需要着装，保持工作环境正常有序，遵守健康检查制度，确保实验样品不受污染。

4.2设备

4.2.1实验室应配有与分析工作相适应的仪器设备，仪器的量程、精度、分辨率等应符合相应技术指标的要求。

放置地点合理。

4.2.2仪器设备应有明显的状态标识，标注仪器正常、使用中、维修、停用、报废等状态。

4.2.3仪器设备应有专人管理，由专业技术人员按照相关要求定期进行校正、维护。

仪器具有安装验证、操作验证以及性能验证报告；

对不合格、待修、待检和报废的仪器，应及时联系相关技术人员进行处理并确保维修报废记录存档。

4.2.4根据仪器设备的性能要求定期进行性能验证，确保仪器设备处于良好的状态。

仪器定期性能验证的文件应存档。

4.2.5设备操作人员应经过培训，考核合格后方可上岗，并严格执行相关标准操作规程。

4.3材料

4.3.1标准物质

标准物质应可追溯来源，并能证明其符合标准物质的要求。

标准物质应能提供相应的分析证书或说明书，以确定标准物质的纯度储存条件、失效日期、批号。

标准物质接收时应先进行验收，验收合格后再使用，并记录标准物质的储存、分发、使用情况。

对于内标物，只要能证明其适用性即可，例如显示该物质本身或其相关的任何杂质不产生干扰。

当在生物分析方法中使用质谱检测时，推荐尽可能使用稳定同位素标记的内标。

内标物必须具有足够高的同位素纯度，并且不发生同位素交换反应，以避免结果的偏差。

4.3.2试剂

应有专人负责试剂、标准物质等的管理，有采购、验收、储存、分发、使用、处理的记录；

试剂验收合格后方可使用。

应记录试剂、标准物质的称量、溶液配制；

配制的溶液应贴有标签，标明品名、浓度、贮存条件、配制日期、有效期及配制人员名字等必要的信息；

应按照相关规定处理医疗废物和过期的化学试剂、含化学试剂的废物。

4.3.3空白生物基质

分析方法验证应采用与试验样品相同的基质（包括抗凝剂等）。

当难于获得相同的基质时，可以采用适当基质替代，但要说明理由。

空白生物基质可按照国家相关规定采购或通过伦理委员会批准后采集。

空白全血的采血方式应与临床试验相同，并使用相同的抗凝剂。

空白生物基质也应按照生物样品的管理要求进行管理，记录其来源、采集或采购数量、保存、使用和废弃情况等。

可使用配制或采购的溶血血浆进行特殊基质的考察，一般采用2%或一系列比例的溶血血浆。

使用注射器反复抽拉挤压或者冻融后使血细胞破碎造成溶血，将溶血全血与正常空白血浆混合得到一定比例的溶血血浆。

应注意溶血对生物样品稳定性和基质效应的影响。

高脂血浆基质可采用正常空白血浆配制，也可采购市售品，但均需说明来源和组成或配制过程。

一般以不低于国内高脂血症临床诊断标准为依据配制高脂血浆，使用脂肪乳注射液和正常空白血浆混合配制。

应注意高脂对生物样品稳定性和基质效应的影响。

4.3.4试验样品管理

实验室试验样品的管理应符合临床试验方案和相关SOP要求，并有专人负责管理生物样品。

样本容器的标识应有足够的信息量，易于识别和具有唯一性（如编号），标识应清晰，不易损坏或脱落。

生物样品管理轨迹应可溯源，有完整的样品生命周期记录。

（1）接收生物样品时，应核对样品的基本信息（如项目名称、基质类型等），需记录样品的接收时间、转运方式和条件、数量、装量、外观状态（如是否有破损、溢漏或颜色变化等）和标识情况等，确认样品是否符合检测要求。

（2）实验室应保证其完整性和活性不受影响，应监控试验样品的保存环境，确保其符合样品保存要求，做好记录。

建议待测样品和备份样品应分别保存在不同冰箱。

（3）生物样品保存以样本长期冻存稳定时间为限；

超过保存期后，在取得申办者书面同意后，按相关规定进行销毁处理。

（4）所有接触样品的人员都应对样品在实验室期间的安全、保密、完整性负责。

4.4设施

4.4.1实验场所应符合国家相关规定，布局合理，实验室面积应与其开展的分析工作相适应，根据实验需要合理划分功能区域。

4.4.2具备保存生物样品的设施；

具有监测生物样品保存条件的设施；

应具有安全保障设施并能有效隔离避免相互干扰和交叉污染，洁净区与污染区分离。

具备不同实验用品的储存设施，确保实验材料、试剂、标准物质等的储存符合相关要求；

危险化学品、归属于麻醉药品和精神药品的物质、放射性物质的保管设施应符合《危险化学品安全管理条例》、《麻醉药品和精神药品管理条例》、《放射性药品管理办法》的相关规定。

实验室环境应符合实验要求并有监控设施。

4.4.3应具备保管实验资料的场所和设施；

应具有适宜的温度和湿度及相应记录，应配备防盗、防火、防水、防虫害等必要设施。

4.5质量管理

4.5.1应建立完善的质量管理体系，对分析工作的全过程进行质量控制，以确保数据和结果的可溯源性、可靠性和真实性。

4.5.2实验室应制订与实验工作相适应的标准操作规程（SOP）。

标准操作规程的副本放置应方便使用。

根据需要对标准操作规程进行定期和不定期修订与废止，将相关信息记录在案并及时更新版本和版本序列号。

记录标准操作规程的制订、修改、分发、学习培训、归档情况等。

需要撤销的标准操作规程需归档保管并有作废标记，保证现行所用的标准操作规程为最新版本。

4.5.3质量保证部门应制订计划，对实验人员、实验室设施、仪器设备、计算机系统、实验材料和试剂、实验方案、分析方法、实验记录、分析报告，以及质量控制程序等进行监督。

在分析方法验证和样品分析前，质量负责人负责制定项目的质量控制计划，并按照计划实施，质控过程应有相应记录，并生成质控报告。

若偏离方案或违背实验室规定的应采取适当措施及时纠正，若存在隐患的应采取预防措施。

质量负责人应确保问题的及时纠正和预防措施的实施。

建议实验室参与外部验证方案（如实验室间质量评价），以证明其检测能力。

4.5.4质量保证人员应及时将监督内容和意见形成监督报告，项目负责人或实验室负责人应及时对监督报告做出反馈。

实验室应积极配合申报方质量保证部门的监督、第三方的监督。

4.6数据管理

应该重视实验数据的管理，建立相应的管理体系。

包括数据管理规范和数据格式的规范。

4.6.1纸质记录

应使用专用的记录本或记录纸及时、规范地记录实验过程及数据，确保实验记录的完整、准确、清晰。

操作人应签名，并注明日期。

记录需要修改时，应保持原记录清晰可辨，注明修改理由，修改者签名，并注明日期。

4.6.2电子记录

用于生物样品分析数据管理和统计分析的计算机系统应经过验证，并具有系统自动生成的稽查踪迹（AuditTrail）功能。

源计算机（采集原始数据的计算机）和工作站的稽查功能需开启。

直接或间接参与数据接收、采集、处理、报告和存储的计算机系统均应进行访问授权控制，有严格的权限控制（AccessControl）密码管理制度，对数据管理系统中不同人员或角色授予不同的权限，只有经过授权的人员才允许操作（记录、修改等），并应采取适当的方法来监控和防止未获得授权的人的操作。

数据采集软件应有电子签名功能。

实验室应建立有效的备份措施防止硬件或软件故障导致数据丢失，定期备份并妥善保存系统的源数据文件。

应记录系统备份期间检测到的错误以及所采用的纠正措施，并报告实验室责任人。

计算机系统升级时应及时保存原有数据，防止数据丢失或更改。

5.分析方法的建立

5.1药物分析方法的摸索

通过检索国内外已报道相关药物在生物基质中的分析方法、定量浓度范围等相关信息，结合本实验室硬件设备，确定分析仪器和分析方法。

5.2样品处理方法的摸索

根据药物理化性质探索生物样品的处理方法，如液-液萃取或蛋白沉淀法等，选择的处理方法应稳定、尽可能减小基质效应并能满足分析需要的定量下限等优点。

6.分析方法验证方案的制定

分析验证方案应明确实验人员的分工和操作安排，并对其进行版本控制。

在验证方案实施前，应对相应实验操作人员进行培训。

验证方案修订时应确保实验人员充分了解修订内容。

分析验证方案应至少包括项目基本信息、实验人员、标准物质信息、仪器和试剂、分析方法、验证项目、接受标准和结果计算方法等，其中应对特殊情况的处理有明确说明和定义，例如内标响应异常是指同位素标记内标响应值在标准曲线样内标响均值的50%~150%范围外。

7.分析方法的完整验证

分析方法验证包括专属性，定量下限，线性范围，准确度，精密度，基质效应，提取回收率、生物基质和储备液中分析物和内标的稳定性、稀释因子、系统耐用性等。

首次开发和实施的生物分析方法；

新的化学实体分析方法；

已验证方法追加分析多个分析物（不同药物、母体药物及其代谢产物、药物及其对映体或异构体）。

生物分析方法的完整验证（FullValidation）包括以上所有考察项目。

7.1专属性

该分析方法应该能够区分目标分析物、内标、基质（如全血、血浆、尿）的内源性组分或样品中其他组分（如制剂辅料）。

应该使用至少6个不同来源的适宜的空白正常基质来证明选择性，当干扰组分的响应低于分析物LLOQ响应的20%，并低于内标响应的5%时，即可以接受。

应考察药物代谢物、经预处理生成的分解产物及同用药物的干扰程度。

考察同用药物的干扰程度，是向至少6个不同来源的空白基质中添加同用药物至临床可能的最高浓度水平（如Cmax），接受标准同专属性考察的接受标准。

在适当情况下，也应该评价代谢物在分析过程中转化为母体分析物的可能性。

在新化学实体的早期研究中，代谢产物未被发现，因此很难对该指标进行评价。

可在后期的深入试验中获得易发生转化的代谢产物（如易酯化的酸性代谢物、氮氧化物、葡萄糖醛酸化代谢物和内酯环代谢物等），补充部分验证。

若代谢物难以获得，可应用已测样品再分析（IncurredSampleReproducibility）评价代谢产物的回复转化。

若无法避免该转化，必须详细报告转化情况和产生的影响。

7.2携带效应（Carry-over）

应该在方法建立中考察残留并使之最小。

应根据药物特性在方法验证方案中设计残留效应考察方法，一般在定量上限（ULOQ）后，进空白样品进行考察。

残留的峰面积低于待测物LLOQ响应的20%，并低于内标响应的5%，即可以接受。

残留可能不影响准确度和精密度。

如果残留看起来不可避免，则应考虑特殊措施，如改变洗针液成分和比例，或在可能的高浓度样品后注射空白样品，然后分析下一个试验样品。

7.3定量下限

定量下限（LLOQ）是能够被可靠定量的样品中分析物标准曲线的最低浓度，具有可接受的准确度和精密度，至少5个测定样品分析来确定准确度。

LLOQ通常为标准曲线的最低点，应适用于预期的浓度水平和试验要求。

7.4标准曲线

应该获得仪器对分析物的响应水平，并且应该在适当的浓度范围内进行标准曲线评价。

通过加入已知浓度的分析物（和内标）到空白基质中，获得各浓度的标准曲线样进行预处理，其基质应该与目标试验样品基质相同。

方法验证中每种分析物和每一分析批，都应该有一条校正曲线。

用于配制标准曲线和质控样品储备液的标准物质应分别称量。

二者的准确度应接近。

评价标准曲线和质控样品储备液浓度接近程度的参考方法：

将标准曲线和质控样品的储备液分别稀释至相当于中浓度质控样品浓度的溶液，加入内标后，连续进样。

评价标准为：

二者连续进样，各自与内标比值的变异应小于5%；

二者的偏差小于5%。

若整个试验样品测定过程中多次称量和配制储备液，应分别提供每次称量的上述比较结果。

校正曲线范围应该覆盖预期浓度范围，即LLOQ（标准曲线样的最低浓度）至ULOQ（定量上限，标准曲线样的最高浓度）的范围。

该范围应足够描述分析物的药动学特征。

一般建议LLOQ不高于预期血药浓度峰值Cmax的10%，ULOQ应当至少为预期血药浓度峰值Cmax的两倍。

应当使用至少6个校正浓度水平，标准曲线应有空白样品（不含分析物和内标的处理过的基质样品）和零浓度样品（含内标的处理过的基质），空白样品和零浓度样品不参与标准曲线的拟合计算。

建议每个分析批采用双标准曲线拟合方式，即标准曲线样平行处理2份。

若无特殊原因，每条标准曲线应从低浓度至高浓度依次进样。

标准曲线样的计算浓度偏差，LLOQ应在±

20%以内，其余应在标示值的±

15%以内。

应该使用简单且足够描述仪器对分析物浓度响应的方程式，最少6个标准曲线样参与标准曲线的拟合，至少75%的标准曲线样应满足上述标准，如果某个标准曲线样结果不符合这些标准，应该拒绝这一标样，不含这一标样的标准曲线应被重新进行回归分析和评价；

两份标准曲线样应同时拟合得到一条标准曲线用于该分析批的定量。

一般以待测物峰面积AS和内标峰面积AIS的比值ƒ（ƒ=AS/AIS）为y，待测物浓度为x，取适当的权重（如1/x2）采用加权最小二乘法进行线性回归，拟合标准曲线方程（校正方程），相关系数r的平方（r2）建议不小于0.9900。

在方法验证中，至少应该评价3条标准曲线。

最好使用新鲜配制的标准曲线样建立标准曲线，但如果有稳定性数据支持，也可以使用预先配制并储存的标准曲线样。

每个标准曲线样可以被多次处理和分析。

应该提交标准曲线参数（包括权重、斜率、截距、相关系数r或r2），测定标准曲线样后回算得出的浓度及相应偏差应一并提交。

7.5准确度

分析方法的准确度描述该方法测得值与分析物真实浓度的接近程度。

应采用加入已知量分析物的样品（即QC样品）来评估准确度，并应该根据标准曲线分析QC样品，将计算值与标示值对比，表示为即标示值的百分比，表示为（测得值-真实值）/真实值×

l00%，即计算值与标示值的偏差表示。

在方法验证时，应通过至少4个浓度水平，包括LLOQ、LQC、MQC和HQC，每个浓度至少5个测定样品分析来确定准确度。

浓度水平应在校正曲线范围内：

在LLOQ浓度3倍之内的低浓度QC（LQC），标准曲线的中间浓度QC（MQC），以及校正曲线范围上限约75%处的高浓度QC（HQC）。

应通过单一分析批（批内准确度）和不同分析批（批间准确度）获得质控样品值来评价准确度。

（1）批内准确度

为了验证批内准确度，应取一个分析批的LLOQ、低、中、高浓度QC水平，每个浓度至少用5个样品，每个浓度水平所有样品偏差的均值在±

15%之内，LLOQ应在±

20%以内。

若有质控样品响应异常，应在统计计算中剔除，剔除后该浓度水平的QC样仍应满足至少5个测定值的要求。

（2）批间准确度

通过至少两个不同天的3个分析批，每批在LLOQ、低、中、高浓度QC样品的每个浓度至少5个测定值来评价。

计算所有有效分析批的QC样品标示值的偏差应在±

15%范围内，LLOQ应在标示值的±

20%范围内。

报告的准确度和精密度的验证数据应该包括所有获得的测定结果，但是已经记录明显失误的情况除外。

为评价一个分析批中不同时间的任何趋势，应在方法验证阶段确定分析批大小（batchsize），建议以不少于一个分析批预期样品数的QC样品数进行批内准确度考察。

原则上，未知样品的分析批不应大于方法验证分析批。

7.6精密度

分析方法的精密度描述分析物重复测定的接近程度。

精密度用相对标准差（变异系数，%CV或%RSD）表示。

应使用与证明准确度相同分析批样品的结果，获得在同一批内和不同批间LLOQ以及低、中、高浓度QC样的精密度，每个浓度至少5个样品，批内变异系数值不得超过15%，LLOQ不得超过20%。

对于验证批间精密度，至少需要两个不同天的3个分析批。

7.7基质效应

当使用质谱方法时，应该考察基质效应。

使用至少6批来自不同个体的空白基质，不应使用合并的基质，分别在低、中、高浓度下进行。

如果基质难以获得，则使用少于6批基质，但应该说明理由。

对于每批基质，应该通过计算基质存在下的峰面积Amx（由空白基质提取后加入分析物和内标测得），与不含基质的相应峰面积的平均值Asol,mean（分析物和内标的纯溶液）比值，分别计算每一分析物和内标的基质因子（Matrixfactor，MF）：

MF（%）=Amx/Asol,mean×

100%

内标纯溶液的峰面积均值是指所有纯溶液的内标峰面积均值。

若低、中、高浓度的变异系数值≤15%，则认为基质效应可以接受。

待测物的基质因子除以内标的基质因子，计算经内标归一化的基质因子（ISnorm-MF）：

MFIS-n（%）=MFdrug/MFIS×

MFIS-n的变异系数应≤15%，则认为基质效应可以接受。

如果不能适用上述方式，例如采用在线样品预处理的情况，则应该通过分析至少6批基质，分别加入高、中、低浓度待测物来获得批间响应的变异。

其验证报告应包括分析物和内标的峰面积，以及每一样品的计算浓度。

这些浓度计算值的总体变异系数不得大于15%。

必要时考察待测物在特殊基质中的基质效应，如溶血血浆、高脂血浆等，基质效应考察方法和接受标准与正常基质相同。

7.8稳定性

稳定性评价是为了确保样品采集、分离、预处理、运输、和检测的每一步骤，以及使用的储存条件，都不影响分析物的精密度和准确度。

稳定性评价包括待测物和内标在溶剂、生物基质及预处理等过程中的稳定性考察。

文献报道的数据不可以用于证明稳定性，但可以作为稳定性实验设计的参考依据。

7.8.1溶剂稳定性

待测物和内标在溶剂中的稳定性，指储备液和工作液在储存和使用条件下的稳定性（长期和短期稳定性），以待测物和内标的峰面积比值作为评价指标。

如有必要，不同材质的承装容器（如玻璃瓶或聚丙烯离心管）对待测物和内标稳定性的影响也应进行考察。

待测物或内标储备液和工作液稳定性考察，采用新鲜配制或稳定期内的待测物或内标溶液作为参比，储备液一般要稀释至ULOQ和LLOQ浓度，得到参比溶液的待测物与内标峰面积比值记为ƒ0（AS/AIS）；

保存储备液或工作液也参照参比样进行稀释并用新鲜或稳定期内的内标工作液进行预处理，得到的比值记为ƒx，通常认为ƒx与ƒ0的偏差在±

10%以内时可认为待测物储备液或工作液在该条件下稳定。

内标溶剂稳定性的评价则以ƒ'

0（ƒ'

=1/ƒ0,AIS/AS）为指标，方法与待测物溶剂稳定性考察方法相同，但是选用新鲜或稳定期内的待测物溶液作为参比，得到ƒ'

x，通常认为ƒ'

x与ƒ'

0的偏差在±

10%以内可认为内标储备液或工作液在该条件下稳定。

可以在方法验证方案中根据待测物或内标的特性制定接受标准。

7.8.2全血稳定性

应考察待测物在全血中的稳定性，以支持临床全血样本采集、运输和储存条件，应根据实验室的相关SOP或分析验证方案中规定的方法进行考察，建议至少考察全血在室温条件下的稳定性。

例如，采用新鲜的空白全血配制成低、中、高质控浓度的全血质控样品。

取新鲜空白全血，加入药物工作液配制成低、高浓度的全血质控样品，轻轻反复颠倒混匀，然后置于37℃水浴中孵育，根据药物性质考察孵育时间。

检测时将全血质控样品离心后取上层血浆进行预处理和分析，以0时刻（T0）检测浓度值或峰面积比值作为对照，根据方案中规定的偏差范围（如±

20%）判断全血在该条件下的稳定性。

若使用检测浓度作为评价指标，应至少有两个浓度水平的全血样品检测浓度值在线性范围内，若不足两个浓度水平，则应重新选择全血稳定性考察浓度以满足上述要求。

7.8.3检测基质稳定性

待测物在检测基质中的稳定性考察，应至少考察以下几种条件：

（1）从冷库储存条件到室温，基质中分析物反复冻融的稳定性：

QC样品解冻后的样品在同样条件下重新冷冻。

在每一循环，样品都应被冷冻12