如何查找一个基因的启动子序列Word格式.docx

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继续点击mRNA序列的登录号AF030880,出现包含这个mRNA区域的图解概要。

为了获得这个区域更清晰的图像,点击紧靠zoomout的1.5X按钮。

最后点击页面中部的resetall按钮,使各个路径的设置恢复默认状态。

  然而,对于本例的搜寻目的来说,默认设置不是理想的设置。

按照视图利用页面底部的TrackControls按纽,将一些路径设置为hide模式(即不显示),其他设置为dense模式(所有资料密集在一条直线上);

另一些路径设置为full模式(每个特征有一个分开的线条,最多达300)。

在考虑这些路径内究竟存在那些资料之前,对这些路径的内容和表现做一个简要的讨论是必要的,许多这些讨论是由外界提供给UCSC的。

下面是对基因预测方法的更进一步讨论,这些信息也可以在其他地方找到。

  对于KnownGenes(已知基因)和预测的基因路径来说,一般的惯例是以一个高的垂直线或块状表示每个编码外显子,以短的垂直线或块状表示5′端和3′端非翻译区。

  起连接作用的内含子以非常细的线条表示。

翻译的方向由沿着细线的箭头指示。

  KnownGenes来自LocusLink内的mRNA参照序列,已经利用BLAT程序将这些序列与基因组序列进行比对排列。

  AcemblyGenePredictionsWithAlt-splicing路径是利用Acembly程序将人类mRNA和EST序列数据与人类基因组序列进行比对排列而来的。

Acembly程序试图找到mRNA与基因组序列的最好的比对排列以及判断选择性剪接模型。

假如有多于1个的基因模型具有统计学意义,则它们都全部显示出来。

有关Acembly的更多信息可以在NCBI的网站找到(http:

//www.ncbi.nih.gov/IEB/Research/Acembly/)。

  EnsemblGenePredictions路径由Ensembl提供。

Ensembl基因通过许多方法来预测,包括与已知mRNA和蛋白质进行同源性比较,abinitio基因预测使用GENSCAN和基因预测HMMs。

http:

//www.ebi.ac.uk/ensembl/  Fgenesh++GenePredictions路径通过寻找基因的结构特征来预测基因内部的外显子,例如剪接位点的给位和受位的结构特征,利用一种动态的程序算法推定编码区域和推定外显子5′端和3′端的内含子区域;

这个方法也考虑到蛋白质相似性的资料。

  GenscanGenePredictions路径由GENSCAN方法衍生而来,通过这个方法,可以确定内含子、外显子、启动子区域和poly(A)信号。

此时,这个方法并不期望查询的序列只出现1个基因,因此可以对部分基因或被基因之间的DNA分隔的多个基因进行准确的预测。

  HumanmRNAsfromGenbank路径显示基因库的人类mRNAs与基因组序列的比对排列。

  SplicedESTs和HumanEST路径显示来自GenBank的ESTs序列与基因组的序列对齐比较。

由于ESTs通常代表了转录基因的片断,一个EST很有可能对应于某个外显子区。

  最后,RepeatingElementsbyRepeatMasker这个路径显示的是重复元件,例如散在的或长或短的核元素(SINEs和LINEs),长末端重复序列(LTRs)和低复杂性区域(http:

//repeatmasker.genome.washington.edu/cgi-bin/RepeatMasker)。

一般来说,在将基因预测方法应用于核苷酸序列之前,需要去掉或掩饰这些成分。

  回到视图显示的例子,可以看到大多数路径返回了几乎同样的基因预测结果。

作为一个规则,通过多种方法预测的外显子提高了预测的正确率而不会出现“假阳性”结果。

多数方法显示3′端非翻译区,以左侧大而短的块状表示。

Acembly路径显示除了全长序列产物(如这个部分第3条线所示)之外还有3个可能的选择性剪接,其它大多数路径显示与此预测结果相符。

Genscan路径从左、右方向往远处延伸:

GENSCAN可以被用于预测多个基因。

  尽管这些图解概要很有用,然而研究者更需要与这些垂直线或块状相对应的序列。

以此为例,用Fgenesh++预测作为获得原始序列数据的基础,但不管选择哪个路径其步骤都是一样的。

点击标有Fgenesh++GenePredictions的路径,出现的是一个描述预测的概要页面。

  序列的区域与pendrin基因相似(从这个例子一开始就已经知道了)。

给出了序列的大小及序列开始和结束的预测,并显示预测是以负链为基础的。

想要获得序列,点击GenomicSequence。

使用者将被带到一个标题为GetGenomicSequenceNearGene的查询页面,在这个页面上,可以获得转录物、编码区、启动子或转录物加启动子的序列。

  点击Transcript返回的页面显示完整的转录子,外显子以大写字母表示。

  点击CodingRegionOnly得到的是编码区,外显子以大写字母表示。

  点击Transcript+Promoter,返回的页面显示的是在上述选择Transcript所获序列的5′端添加了启动子序列,以大写字母表示外显子。

启动子的长度显示在文本框内。

 点击Promoter返回的页面正好是启动子区

 

基因启动子序列的预测分析

真核细胞的基因表达调节虽然是多个水平的调节,但主要是转录水平的调节.转录水平的调节基础就是转录因子蛋白与启动子DNA序列之间的结合和激活.转录因子蛋白的结构可以分成结合域(BD,bindingdomain)以及激活域(AD,activationdomain).作为基因启动子DNA的序列也具有特征性的结构.但是相比较而言,目前基因启动子以及转录因子蛋白结合的种类,积累的资料还十分有限,数据库容量偏小,计算技术相对滞后,其预测结果仅供参考,还必须结合其他的分子生物学技术进行证实.

一般情况下,确定了一种新基因的编码区序列之后,通过与htgs数据库的同源性比对,可以很方便地确定其相应的基因组DNA序列.在确定编码基因的起始密码子之后,指导基因表达的启动子序列一般位于其上游基因序列300-3000nt之间,鲜有例外.可以从翻译起始密码子上有的基因组DNA序列,选取3000nt左右的核苷酸序列进行生物信息学分析.例如可以应用在线软件分析技术,或自行研发的启动子序列分析技术等软件分析,如:

http:

//www.cbs.dtu.dk/services/promoter/、http:

//www.fruitfly.org/cgi-bin/seq_tools/promoter.pl,http:

//bimas.dcrt.nih.gov/molbio/proscan/等.根据这些软件分析的结果,首先确定进行缺失突变体构建时应该采用的引物序列,如果一段序列的缺失导致报告基因表达水平的升高,那么说明这一段基因序列存在着启动子的静息子(silencer)的序列,对于基因的表达水平具有负调节作用.通过逐步缺失的策略,最终确定启动子DNA的核心序列.报告基因表达载体的构建以及细胞转染技术,仍然是目前研究基因启动子序列活性最为基本的方法.

研究转录因子蛋白的结合及其对基因表达水平的调节作用和性质有许多技术,但是利用生物信息学技术预测的启动子DNA序列的结合的转录因子蛋白结果只有部分参考的意义.凝胶迟滞(gelshift)试验、超级迁移实验(supershift)、竞争性结合实验、酵母单杂交技术(yeastonehybrid)、噬菌体展示技术(phagedisplay)等在转录因子蛋白与启动子DNA序列结合的研究中具有重要应用前景.

干擾素γ增強GH3細胞中人生長激素基因表達機制

干擾素γ,生長激素基因啟動子,GH3細胞,熒光素酶報告基因interferon-γ,hGHgenepromoter,GH3cellline,luciferasereportergene

為了研究干擾素γ(IFN-r)對大鼠垂體GH3細胞中人生長激素(hGH)基因啟動子活性的影響及其可能的作用機制,採用熒光素酶報告基因方法,將含hGH基因啟動子(-484~2bp)和熒光素酶報告基因的表達質粒pGL3-484-Luc單獨轉染或與垂體特異性核轉錄因子Pit-1蛋白表達質粒(pcDNA-Pit-1-cDNA)或Pit-1反義寡核苷酸(Pit-1OND)共轉染於大鼠垂體GH3細胞中,觀察加入IFNγ及細胞內信號轉導途徑的抑制劑後GH3細胞中熒光素酶表達的變化,反映其對hGH啟動子活性的影響;

將含不同長度hGH基因啟動子序列的熒光素酶表達質粒pGL3-380-Luc(-380~2bp)、pGL3-250-Luc(-250~2bp)、pGL3-132-Luc(-132~2bp)和pGL3-66-Luc(-66~2bp)分別轉染GH3細胞,觀察它們對IFN-γ的反應,以尋找IFN-γ影響hGH基因啟動子活性的關鍵序列。

結果表明,IFN-γ(10^5u/L,10^6u/L)均能促進大鼠垂體GH3細胞中熒光素酶的表達,最高達對照組的131%(P<

0.001);

在胞內信號轉導抑制劑中,只有絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)信號轉導途徑抑制劑PD98059(40μmol/L),能完全阻斷IFN-γ的促進作用;

Pit-1蛋白過表達和表達被抑制對IFNγ的促進作用沒有影響;

含不同長度hGH基因啟動子序列質粒中,只有pGL3-380-Luc和pGL3-250-Luc仍具有對IFN-γ的反應性。

這說明IFN-γ能增強大鼠垂體GH3細胞中hGH基因的啟動子的活性,此作用可能是通過激活細胞內依賴MAPK的途徑完成的,並與hGH基因上游-250~-132bp啟動子序列密切相關,但與垂體特異性核轉錄因子Pit-1蛋白關係不大。

Themethodofluciferasereportergenewasusedtoinvestigatetheeffectofinterferon-γ(IFN-γ)ontheactivityofhumangrowthhormone(hGH)genepromoterinratpituitaryGH3cells,toelucidatethepost-receptorsignaltransductionpathwayandthekeypromotersequencewhichmediatedtheactionofIFN-γ.TheluciferaseexpressionplasmidpGL3-484-LuccontaininghGHgenepromoter(-484-2bp)andluciferasereportergeneweretransfectedaloneorcotransfectedwithpituitary-specifictranscriptionfactorPit-1expressionplasmid(PcDNA-Pit-1-cDNA)orPit-1antisenseoligonucleotide(Pit-1OND)intoratGH3cells.ThechangesofluciferaseexpressionintheGH3cellsweredetermined,aftertreatmentwithIFN-γorIFN-γplusinhibitorsofintracellularsignalingpathways,toobservetheeffectofIFN-γandtheseinhibitorsontheactivityofhGHgenepromoter.ThevariousdeletionconstructsofLuc-reporter:

pGL3-380-Luc,pGL3-250-Luc,pGL3-132-LucandpGL3-66-Luc,whichcontainedthe-380-2bp,-250-2bp,-132-2bpand-66-2bpsequencesofhGHgenepromoter,respectively,weretransfectedintoGH3cells,thenthechangesofluciferaseexpressionintheGH3cellswereassayed,aftertreatmentwithIFN-γ,tofindoutthekeysequencewhichmediatedtheactionofIFN-γ.OurresultsshowedthatIFN-7(10^5u/L,10^6u/L)couldincreaseluciferaseexpressioninGH3cellstransfectedwithpGL3-484-Lucalone,themaximalactionbeing131%ofthecontrol(P<

0.001).Amongtheinhibitorsofintracellularsignalingtransductionpathways,onlymitogen-activatedproteinkinases(MAPK)inhibitorPD98059(40μmol/L)couldcompletelyblockedthestimulatoryeffectofIFN-γonhGHgenepromoteractivity.Pit-overexpressionorinhibitedPit-1expression,bothhadnoeffectonIFN-7-inducedhGHgenepromoteractivity.WhenvariousdeletionconstructsofLuc-reporterweretransfectedintoGH3cells,onlypGL3-380-LucandpGL3-250-LucstillrespondedtoIFN-γ.Inconclusion,IFN-γcouldincreasetheactivityofhGHgenepromoterinratpituitaryGH3cells.ThisstimulatoryeffectofIFN-γmaybeassociatedwiththeintracellularMAPKsignalingpathwayandwith-252--132bpsequenceinhGHgenepromoter,buthadnorelationshipwithpituitary-specifictranscriptionfactorPit-1.

与DNA结合蛋白相作用的启动子序列的鉴定

信息来源:

本站原创 更新时间:

2004-3-2414:

35:

00

将细胞核置于冰上解冻,精确测定核悬浮液的体积。

番茄子叶细胞核的分离提取为例子进行实验

步骤2~7须在4℃下使用高压灭菌过的设备进行。

1.将番茄种子种在灭菌的水饱和滤纸上,置于小盆内,用薄膜封口后,培养7天。

用刀片切下番茄子叶后收集备用。

2.将40~50g新鲜组织放入300ml匀浆缓冲液,用韦林氏搅切器先1×

4秒而后6×

1秒。

3.过滤匀浆混合液,使其透过漏斗上的4层厚纱布及纱布下按孔径递减次序放置的3层Nitex尼龙筛网(300μm,100μm,52μm),汇入大烧杯中。

全部匀浆物均滤完后把纱布集中在一起,将纱布上的滤液压入尼龙网,并使其经漏斗流入烧杯中。

切勿将滤液压出尼龙网,亦不可使用抽滤,让滤液靠重力作用下流。

4.将每批滤出的匀浆倒入500ml离心瓶中,用SorvallGS-3转头5000r/min(4225g),4℃离心20分钟。

5.吸去上清,然后将核粗提沉淀物用大口径塑料巴斯德吸管温和地反复吹吸,使沉淀悬浮于匀浆缓冲液中。

将重悬起的沉淀转入50ml离心管中,用匀浆缓冲液调节体积至约40ml。

6.4℃用SorvallSS-34转头4000r/min(1912g)离心10分钟,再次沉淀细胞核。

重复步骤5和6三次,分别在3500r/min离心10分钟,8分钟和6分钟。

最后一次离心后,尽可能洗净匀浆缓冲液。

7.将核悬浮于核悬浮缓冲液中,按每50g植物组织加0.5ml核悬浮缓冲液。

用液氮冷冻,保存于-80℃。

若核蛋白抽提即将进行,可不必将核冷冻起来。

核抽提物的制备

2.加入核裂解缓冲液,使NaCl终浓度为0.47mol/L(即,每毫升核悬浮加入182μl核裂解液)。

3.将核悬浮液置于摇床上,4℃温和摇动30分钟。

4.4℃微量离心20分钟沉淀染色质。

5.小心移出上清,避免搅起胶状的含DNA的沉淀,以使抽提液中避免含有此类杂质。

6.4℃透析上清3~4小时,中间换几次透析液。

7.将透析液用液氮冷冻,再置于冰上解冻,4℃微量离心或用SorvallSS-34转头10000r/min(12000g)离心15分钟,弃沉淀,保留上清。

此步骤是为了将其余可能在浓缩步骤中阻塞微量浓缩器的蛋白质沉淀除去。

8.用CENTRICONTM10微量浓缩器浓缩上清,以使提取液中蛋白质的终浓度为1~3mg/ml。

可以溶菌酶为标准物用Bio-RadBradford-based蛋白质分析试剂盒来测定蛋白质浓度。

经验表明,要达到上述浓度,至少需要浓缩2~3次。

9.留出待作迁移分析的核抽提物,将剩余部分用液氮或干冰冷冻,贮于-80℃备用。

DNA片段的标记

聚丙烯酰胺凝胶的制备

1.安装凝胶装置并洗净玻璃板。

2.配制4%丙稀酰胺凝胶液,将以下成分混合:

丙稀酰胺/双丙稀酰胺(29:

1) 

4ml

TBE(10×

) 

3ml

APS(10%) 

200

nbsp;

200μl

TEMED40μl

制备厚1mm的凝胶,并保证上样孔可容纳25μl样品。

凝胶聚合约需1小时,制好后,使用前可于室温放置1天。

探针的标记

1.按下表顺序将下列试剂加入1.5ml微量离心管中:

EcoRI酶解的质粒DNA(1μg或约800fmol末端) 

2.5μl

Sequerase®

缓冲液(52.0μl

[α-32P]dATP(6000Ci/mmol)3.0μl

二硫苏糖醇(0.1mol/L)

双蒸去离子水(ddH2O) 

 

0.5μl

酶(用4倍Sequerase®

稀释缓冲液稀释) 

1.0μl

总体积:

10μl

2.室温放置15分钟。

3.加入0.5μldNTP混合物,充分混匀。

4.室温放置15

μl0.35mol/L的乙酸钠并充分吹吸混匀以终止反应。

测定掺入的放射性活度

1.取5μl标记反应混合物移至一新管中。

将2μl此混合物点加到DE81滤膜上,再将该滤膜浸入盛有约20ml0.5mol/L磷酸钠(pH7.0)的烧杯中。

再取第二张滤膜重复上述操作。

2.将烧杯置于平面振荡器上,使溶液温和振荡5分钟,将缓冲液倒入放射性废弃物中。

3.用新缓冲液重复两次清洗步骤。

4.用双蒸水漂洗滤膜5分钟,再用双蒸水重复漂洗两次。

5.用95%乙醇洗滤膜5分钟。

6.使滤膜完全干燥,再将每一张滤膜移入闪烁计数管,加入闪烁混合物,计数。

7.计算理论掺入的最大比率。

计算方法如下:

1)每个反应可标记400fmol质粒DNA。

2)标记反应在EcoR 

I酶切的质粒DNA两端进行,每个末端可掺入两个脱氧腺苷磷酸残基。

3)因此,每400fmol质粒DNA可结合1600fmol标记核苷酸。

4)标记核苷酸的比活性是6000Ci/mmol,即13000cpm/fmol。

5)因此,理论最大掺入值为每400fmol质粒DNA13000cpm×

1600fmol=2.08×

107cpm或每400fmol片段1.04×

107cpm。

注意,仅掺入量的一半包含在待测片段中。

随后的酶解反应会释放出一端标记的待测DNA片段和一端标记的载体DNA。

标记探针的分离

1.加95μl酚/氯仿/异戊醇(25:

24

1)于剩余的95μl标记混合物中。

充分混匀。

2.室温离心3~5分钟以分离酚相与水相。

3.小心取85μl上层水相于另一干净离心管中,将盛有酚相的离心管弃入放射性废弃物中。

加入200μl95%乙醇于水相中,旋紧管盖后,涡旋混匀。

4.将离心管于碎干冰上放置15~20分钟,然后离心20分钟。

5.用移液器,小心将含乙醇的上清弃于放射性废弃物中。

加入600μl80%乙醇洗涤沉淀,离心1~2分钟,用移液器弃去乙醇。

6.用真空离心蒸发浓缩器干燥沉淀2~3分钟。

7.将沉淀用20μl1×

Sequenase®

缓冲液重悬,再加入0.5μl10units/μl的Pst 

I将标记的DNA片段从载体DNA上切下。

37℃温育30~60分钟。

8.加入2.5μl高EDTA10×

凝胶染液于酶解混合物中。

向先制好4%丙稀酰胺凝胶中上样,然后用1×

TBE缓冲液在大约10V/cm电压下电泳约2.5小时。

电泳时间取决于标记片段的大小。

目的是为了很好地分离标记片段与质粒载体,但切勿使目的片段跑出胶外。

9.电泳后,小心地把凝胶用保险膜包裹好,对X光片曝光5~10分钟。

使用Sharpie®

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