浅论兔退变椎间盘模型中髓核细胞凋亡的实验研究文档格式.docx

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凋亡;

激光共聚焦显微镜;

兔

　　[Abstract]Objective:

Tostudytheeffectofnucleuspulposuscellsapoptosisontherabbitintevertebraldiscmodel.Methods:

Rabbitmodelsofdegeneratedintevertebraldiscwereestablishedbyanuluspuncturing,whichwerethenidentificatedbyMRI.NucleuspulposuscellswerecountedusingHEstaining;

theproportionofapoptoticcellswascountedbylaserscanningconfocalmicroscopewithTUNELstainingmarkedapoptosisofnucleuspulposuscells;

andRTPCRwereusedindetectionofBaxandBcl2levelsasapoptosisrelatedgenes.Results:

Comparedwiththenormalgroup,theamountsofnucleuspulposuscellswerelowerandtheproportionofapoptoticcellswashigherindegenerationgroup.Thelevelofantiapoptosisgeneexpressionwaslowerandthelevelofapoptosisgeneexpressionwashigherindegenerationgroupthanthoseinnormal:

Theapoptosisinthedegeneratedintervertebraldiscmodelsexistsandplaysanimportantrole.

　　[Keywords]intervertebraldiscdegeneration;

degenerationmodel;

apoptosis;

laserconfocalscanningmicroscope;

rabbits

　　腰椎退变性疾病是临床引起腰腿痛的主要病因，但椎间盘退变的病理机制目前并未完全清楚，年纪的增长、血管难长入、终板的病变导致椎间盘缺少营养、细胞的凋亡、胶原的变化、椎间盘机械负荷及蛋白多糖的变化等都被认为是导致椎间盘退变的病因。

研究认为髓核细胞凋亡参与退变过程并在此过程中起关键作用[1]。

本实验通过针刺法制作兔退变椎间盘模型，通过模型研究椎间盘退变中凋亡的发生与发展规律。

1材料和方法

　　材料

　　新西兰大白兔（南京农业科学院种兔厂）;

激光共聚焦显微镜（LeicaTCSSP5，德国），MRI（Bruker公司，德国）;

恒温箱冷冻切片机（MICIROM325，德国）;

TaKaRaLAPCRTM试剂盒（大连宝生物工程有限公司）;

Trozol（Invitrogen公司，美国）;

红色荧光标记的TUNEL法凋亡检测试剂盒（InSituCellDeathTMRred，roche，瑞士）;

Bax和Bcl2引物由上海生工生物工程技术服务有限公司合成：

Bax（225bp）上游为5′CCGTGACCATCTTTGTGGC3′，下游为5′TGTCCCGAAGGAGGTTTATT3′;

Bcl2（452bp）上游为5′GGGAGAACAGGGTACGATAA3′，下游为5′CCACCGAACTCAAAGAAGG3′;

βactin（155bp）上游为5′TATGACTTAGTTGCGTTACACC3′，下游为5′CCTTCACCGTTCCAGTTT3′。

　　方法

　　兔腰椎间盘退变模型的构建纯种成年新西兰大白兔32只，雌雄不限，平均质量kg，采用随机排列数方法分为正常组和退变组各16只，退变组采用侧方倒八字入路对L4-5节段椎间盘行针刺法造模，术中暴露相应节段椎间盘后于椎间盘前方和左右侧方各用21号针头等深针刺5次（图1），逐层缝合切口后继续饲养。

　　图1手术路径（左图暴露椎间盘视野，右图为针刺法造模）

　　Fig1Operativeapproach（Left.Exposureofthevisualfield;

Right.Methodofacupuncture）

　　MRI检测造模后第8周耳缘静脉注射空气处死两组兔后取出相应节段脊柱，采用TmicroMRI检测鉴定退变模型。

水平扫描架内径16cm，采用61mm大鼠体部射频线圈。

脊柱标本取出后置于扫描架内。

扫描序列采用TurboRACET2WΙ序列。

TurboRACET2WΙ序列主要扫描参数为：

TR4200ms，TE36ms，层厚1mm，层间距mm，FOV60mm×

40mm，矩阵256×

256，反转角（FA）180°

，重复次数1次，空间最小分辨率约为234μm×

156μm/像素，扫描时间约为80s。

数据后处理采用ImageJ软件，分别测量各兔正常组和退变组椎间盘髓核组织5个层面的平均信号强度及背景噪声，计算各组间的信号噪声比（signalnoiseratio，SNR），同时测量各个层面椎间盘平均高度值（最高值和椎体前、后缘三点平均值），评估各组椎间盘退变水平。

　　透射电镜标本的制作和观察退变手术后4周时，取相应节段新鲜椎间盘的髓核组织，切取1mm×

1mm×

1mm大小标本，加入4%戊二醛前固定，1%锇酸后固定，梯度乙醇脱水，Epon812环氧树脂包埋，半薄切片定位，LKBV超薄切片机超薄切片，铀铅复染，JEM2000EX透射电镜（JEOL公司，美国）下观察。

　　冰冻切片制作造模手术后第8周抽取两组新西兰大白兔，耳缘静脉注射空气10ml致死，迅速取相应节段椎间盘，标本离体后立即行包埋，置于液氮罐（-190℃）中冰冻保存，用恒温箱冷冻切片机制作6μm冰冻切片。

每个椎间盘标本分别取不同层次3张切片。

　　HE染色计数髓核细胞冰冻切片制作成功后，常规固定，吹干后行HE染色，光镜下计数髓核细胞，每个切片计数2个视野。

　　激光共聚焦显微镜检测细胞凋亡比率按原位细胞凋亡检测试剂盒说明书步骤，切片于冰上经渗透液（%TritonX100）孵育2min后，在黑暗的湿盒中用染色混合液37℃孵育1h，DAPI染色液孵育5min，期间常规漂洗，行抗荧光淬灭剂处理后封片。

阳性对照用凋亡诱导剂（核酸酶）处理，阴性对照不加末端脱氧核糖核酸转移酶。

采用激光共聚焦显微镜进行观察荧光染色的切片并行定量分析，每张切片在200×

视野下找5个视野观测。

激光共聚焦显微镜观测时波长设置观察DAPI核染细胞激发波长405nm，发射波长454nm;

观察TUNEL阳性细胞激发波长543nm，发射波长620nm，采用LeicaTCSSP5系统工具融合图像。

分别计数两组髓核细胞凋亡率，髓核细胞凋亡率=凋亡髓核细胞（DAPI和TUNEL共显，蓝红色细胞）/所有髓核细胞（DAPI显色，蓝色细胞）

　　半定量RTPCR检测Bax和Bcl2基因表达取各实验组整个椎间盘标本髓核组织，采用Trizol法提取总RNA。

按试剂盒说明书进行操作，细胞总RNA反应量均为2μg，总反应体积为25μl。

逆转录反应条件：

42　℃　30　min，99　℃　5　min，5　℃　5　min。

PCR体系总体积为20　μl,反应条件：

94　℃预变性5　min;

94　℃变性30s，50℃退火30min（Bax和Bcl2基因分别为54℃和59℃退火30s），72℃延伸1min，30个循环;

72℃延伸7min。

选取5μlPCR产物，经2%琼脂糖凝胶电泳40min，溴化乙锭染色，用ImageMasterVDS图像分析处理系统扫描，以Bax/βactincDNA以及Bcl2/βactincDNA光密度比值作为BaxmRNA和Bcl2mRNA的相对表达水平。

　　统计学处理

　　实验所测得各组数据均用±

s表示;

样本均数间的比较采用独立样本t检验,为差异有统计学意义。

采用SPSS统计学软件进行分析。

　　2结果

　　退变模型的检测

　　造模2周后对退变椎间盘的MRI检测，T2像上退变组与正常组相比，椎间盘高度减低（高度分别为±

和±

，P=），平均信噪比减低[信噪比分别为（±

）%和（±

）%，]（图2）。

　　凋亡髓核细胞形态观察

　　透射电镜观察退变组和正常组髓核组织，各标本均能找到1～3个凋亡细胞（图3），表现为细胞核染色质固缩，集聚至核周边呈月牙型斑块;

胞浆浓缩;

与胞膜融合形成膜表面泡状突起;

受损细胞体积缩小，与临近正常细胞脱离，细胞膜内陷形成凋亡小体。

　　细胞计数与凋亡细胞比例

　　HE染色计数髓核细胞，退变组髓核细胞数少于正常组（细胞计数分别为±

，）（图4）。

冰冻切片经TUNEL法染色后，激光共聚焦显微镜下所有髓核细胞均被蓝染（DAPI），凋亡阳性细胞呈红染，各个椎间盘均有凋亡阳性染色，退变组细胞凋亡率高于正常组（细胞凋亡率分别为±

%和±

%，）（图略）。

　　凋亡基因检测

　　通过RTPCR检测比较各组髓核组织中细胞凋亡相关基因Bax和Bcl2mRNA的表达，正常组的抗凋亡基因Bcl2mRNA表达水平高于退变组（灰度值分别为±

，），而BaxmRNA的表达高于正常组（灰度值分别为±

，）（图5）。

　　3讨论

　　椎间盘退变是人体随着年龄的增长，椎间盘内髓核组织的营养供应不足，髓核退变后脱出，压迫周围组织，从而引起临床上椎间盘突出、椎管狭窄、退变性脊柱滑脱等疾病。

椎间盘退变的病因学研究中，细胞凋亡的作用越来越引起人们的重视。

Fas/FasL、caspase族等蛋白分子是在凋亡信号传导和凋亡执行过程中的主要分子，Bax、Bcl2、转化生长因子和胰岛素样生长因子等是调节这些分子表达及调节凋亡的重要因子，其中Bcl2基因家族及其相关蛋白Bcl2是研究最早的与凋亡有关的分子,Bcl2基因家族也是目前最受重视的调控细胞凋亡的基因家族。

Bax和Bcl2通过形成同源或异源二聚体来调节细胞凋亡：

当Bax形成同源二聚体时诱导细胞凋亡;

Bax与Bcl2形成异源二聚体时则实现了Bcl2抑制细胞凋亡的功能。

本实验采用针刺法成功制作兔椎间盘退变模型，与正常组椎间盘相比，退变组Bax表达上调，Bcl2表达减低，细胞凋亡率增高，总细胞计数减少，相应椎间盘MRI检测示椎间盘退行性改变。

研究显示，凋亡参与退变过程并在此过程中起关键作用。

抑制凋亡可能成为将来椎间盘退变性疾病的治疗方法之一。

　　T高场强动物磁共振扫描仪（德国Bruker公司）的