我的论文中的实验方法.docx
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我的论文中的实验方法
第二章含6×His标签T7Select10-3b载体的构建
2.1材料与方法
2.1.1材料
2.1.1.1实验材料及试剂
宿主菌E.coliBLT5615Novagen公司
T7Select10-3b噬菌体Novagen公司
EcoRI/HindIIIEndModificationKitNovagen公司
DNALigationKitNovagen公司
T7Select10-3bCloningKitNovagen公司
DNaseITaKaRa公司
β-AgaraseTaKaRa公司
TaKaRaMiniBESTAgaroseGelDNAExtractionKitTaKaRa公司
2000bpDNALadderTaKaRa公司
TaqDNA聚合酶TaKaRa公司
IPTGAMRESCO公司
DNA纯化试剂盒庄盟公司
其他常用试剂:
羧苄青霉素(Carb)、苯酚、氯仿、异戊醇、异丙醇、乙醇、胰蛋白胨、酵母菌粉、琼脂、琼脂糖、NaCl、甘油、PEG8000等为进口分装或国产分析纯。
引物合成与测序由北京宝瑞通生物科技有限公司完成。
2.1.1.3主要试剂配制
LB液体培养基:
胰蛋白胨10g/L;酵母菌粉5g/L,NaCl10g/L,pH7.0
LB固体培养基:
胰蛋白胨10g/L;酵母菌粉5g/L,NaCl10g/L,琼脂15g/L,pH7.0
LB半固体培养基:
胰蛋白胨10g/L;酵母菌粉5g/L,NaCl10g/L,琼脂15g/L,pH7.0
50mg/ml羧苄青霉素溶液:
Amp1g溶解于10mL蒸馏水中,过滤除菌,-20℃保存。
噬菌体提取缓冲液:
20mMTrisHCl,pH8.0,100mMNaCl,6mMMgSO4
50×TAE电泳缓冲液:
Tris24.2g,冰醋酸5.7mL,0.25mo1/LEDTA(pH8.0)20m1,
加蒸馏水至100mL,室温保存,使用时用双蒸水稀释至1×工作浓度。
1%琼脂糖凝胶:
琼脂糖1g,加入100mL0.5×TBE溶液。
2.1.1.4主要实验仪器
分析天平上海民桥精密科学仪器有限公司,FA1104N
PH计上海任氏电子有限公司,6173
PCR仪WhatmanBiometra,T-Gradient
电泳仪北京六一仪器厂
自动双重纯水蒸馏器上海亚荣生化仪器厂,SZ-93
紫外/可见分光光度计北京普析通用仪器有限公司,TU-1810
生物洁净工作台北京东联哈尔仪器制造有限公司,BCN-1360B
手掌型离心机海门市麒麟医用仪器厂,Lx-100
高速冷冻离心机sigma,2-16K
液氮容器乐山市东亚机电工贸有限公司
电热恒温水浴锅北京市永明医疗仪器厂,DZKW-D-2
电热恒温干燥箱黄石市医疗器械厂,72-1
隔水式电热恒温培养箱上海市跃进医疗器械一厂,PYX-DHS
Fluor-S凝胶成像系统美国Bio-Rad公司
超低温冰箱海尔公司,-86℃ZKU-L200Eppendorf管若干(1.5ml、50ml),移液枪枪头若干(10μL-1000μL)
2.1.2方法
2.1.2.1T7Select10-3b宿主菌的培养
T7Select10-3b噬菌体的合适宿主菌株为E.coliBLT5615,加甘油存于-80℃中。
2.1.2.1.1初代培养
向20mL无菌LB液体培养基中加入20μL50mg/mLcarb,摇匀后接入200μLBLT5615,用含有20μL50mg/mLcarb的20mL无菌LB液体培养基做空白对照。
于37℃,220rpm摇床过夜培养。
2.1.2.1.2继代培养
1)向300mL无菌LB液体培养基中依次加入300μL50mg/mLcarb和2mL过夜培养的菌液。
用只含有20μL50mg/mLcarb的20mLLB培养基做空白对照。
于37℃,220rpm摇床培养。
2)约1.5h后,以空白培养基为对照测量菌液600nm波长下的吸光度,直到OD600值达到0.5。
加IPTG至终浓度1mmol/L,37℃继续摇床培养30min,得宿主菌悬液(最终OD600至0.6-1)。
2.1.2.2T7噬菌体的扩增
1)向培养好的宿主菌悬液中加入100μLT7Select10-3b噬菌体原液。
继续37℃,220rpm摇床培养,使宿主细胞裂解。
用不加T7噬菌体原液的宿主菌液做空白对照。
约1.5h后宿主细胞裂解,瓶内产生丝状沉淀。
3-4h,丝状物增多,溶液比以前澄清,裂解完毕。
2)向裂解液中加入12μL5mg/mLDNaseI,37℃摇床培养15min。
3)加入7.5gNaCl固体,充分振荡溶解。
分装于50ml离心管中,4℃10000rpm,离心10min。
4)取上清至无菌三角瓶中,加入30gPEG8000,使其充分溶解,4℃过夜储存。
6)将混合液分装至24个1.5mL离心管中,4℃10000rpm离心10min。
去除上清,将离心管倒扣在吸水纸上,使干燥沉淀。
8)每管加入150μL1MNaCl,10mMTris-HCl(pH8.0),1mMEDTA的缓冲液,剧烈震荡,使沉淀溶解。
2.1.2.3T7噬菌体DNA的提取
1)将上述溶解液分装到1.5mL离心管中,每管加入等体积的Tris-饱和酚,颠倒混匀,4℃10000rpm离心10min。
取上层液相,再用等体积的Tris-饱和酚抽提两次。
3)取上层液相,加入等体积的氯仿:
异戊醇(24:
1),颠倒混匀,4℃10000rpm离心10min。
重复1次。
4)取上层液相,加入等体积的异丙醇,4℃静置2h。
4℃12000rpm离心5min。
去除上清,将离心管倒扣在吸水纸上,干燥沉淀。
6)加入0.5mL70%乙醇,颠倒清洗沉淀,4℃12000rpm离心5min,去除上清。
重复1次。
7)将沉淀干燥后,每管加入400μL无菌双蒸水,室温静置使DNA溶解。
用ND2000测OD260/OD280及OD260/OD230值。
另取5μLDNA溶液用0.5%琼脂糖凝胶电泳检测DNA完整性。
2.1.2.4T7噬菌体DNA的双酶切及鉴定
酶切反应体系
T7DNA20μL(≤20μg)
10×MBuffer40μL
XhoI20μL
SacI20μL
ddH2O300μL
total400μL
37℃酶切4h,65℃热激10min。
取5μL酶切产物经0.5%琼脂糖凝胶电泳检测酶切效果。
2.1.2.5T7载体臂的回收
将酶切产物进行0.5%低熔点琼脂糖凝胶电泳后,按照TaKaRaβ-Agarase说明书进行T7DNA载体臂的回收。
具体步骤如下:
1)用纸巾吸干凝胶表面液体,在紫外灯下切出含有目的DNA片段的凝胶。
将凝胶切成细块后移入已称重的EP中计算重量。
2)按照1mg=1μL计算凝胶体积,向胶块中加入1/10凝胶体积的10×β-AgaraseBuffer平衡体系。
65℃加热10min使琼脂糖融化,冷却至60℃后静置平衡5min。
3)加入β-Agarase60℃消化1h,每200mg(约200ul)0.5%的凝胶加1U(1ul)β-Agarase。
4)冰上放置15min,12000rpm4℃离心15min。
取上清液,加入盐溶液使其终浓度为:
2.0MCH3COONH4;0.15MNaCl;0.3MCH3COONa。
5)加入等体积异丙醇,充分混匀后-20℃冷却60min,12000rpm离心15min。
6)去除上清,用70%乙醇洗沉淀2次。
7)将沉淀干燥后,加少量无菌ddH2O室温静置溶解。
用ND2000测OD260/OD280及OD260/OD230值,-20℃保存备用。
2.1.2.6含6×His插入标签的制备
1)引物设计与合成
根据T7Select10-3b噬菌体的DNA序列,应用Primer5.0软件设计引物①、②,将6×His标签设计到上游引物中。
在上游引物及下游引物的5’端分别加入SacI及XhoI酶切位点。
1)
1)
1)1)
1)
1)
1)
1)
第二章吸烟者肺癌组织T7噬菌体cDNA文库构建
2.1材料与方法
2.1.1材料
2.1.1.1组织临床资料
3例吸烟者肺癌组织由河北医科大学第四医院提供,均为男性吸烟患者,处于
、
期,患者术前均未进行化疗、放疗,样本取出后立即置于RNALater中,-20℃保存。
2.1.1.2主要生化试剂及试剂盒
RNeasyMiniKitQIAGEN公司
PolyATtract®mRNAIsolationSystemIIIPromega公司
OrientExpressRandomPrimercDNASynthesisKitNovagen公司
EcoRI/HindIIIEndModificationKitNovagen公司
DNALigationKitNovagen公司
T7Select10-3bCloningKitNovagen公司
MiniColumnFractionationKitNovagen公司
2000bpDNALadderTaKaRa公司
TaqDNA聚合酶TaKaRa公司
IPTGAMRESCO公司
T7噬菌体载体上下游引物Novagen公司
2.1.1.3主要试剂配制
5×TBE缓冲液:
Tris碱54g/L,硼酸27.5g/L,EDTA(pH8.0)0.5mol/L。
使用时用双蒸水稀释至0.5×工作浓度。
1%琼脂糖凝胶:
琼脂糖1g,加入100mL0.5×TBE溶液。
2.1.1.4主要实验仪器
分析天平上海民桥精密科学仪器有限公司,FA1104N
PH计上海任氏电子有限公司,6173
PCR仪WhatmanBiometra,T-Gradient
电泳仪北京六一仪器厂
自动双重纯水蒸馏器上海亚荣生化仪器厂,SZ-93
紫外/可见分光光度计北京普析通用仪器有限公司,TU-1810
生物洁净工作台北京东联哈尔仪器制造有限公司,BCN-1360B
手掌型离心机海门市麒麟医用仪器厂,Lx-100
高速冷冻离心机sigma,2-16K
液氮容器乐山市东亚机电工贸有限公司
电热恒温水浴锅北京市永明医疗仪器厂,DZKW-D-2
电热恒温干燥箱黄石市医疗器械厂,72-1
隔水式电热恒温培养箱上海市跃进医疗器械一厂,PYX-DHS
Fluor-S凝胶成像系统美国Bio-Rad公司
超低温冰箱中科生命科技股份有限公司,-86℃ZKU-L200Eppendorf管若干(1.5ml、50ml),移液枪枪头若干(10μL-1000μL)
2.1.2方法
2.1.2.1吸烟者肺癌组织的获取及保存
手术后将新鲜组织立即浸入RNALater中,-20℃保存备用。
2.1.2.2总RNA的提取和纯化
根据RNeasyMiniKit(购自QIAGEN公司)的说明书进行以下实验操作:
1)从RNALater保存的组织中剪取一块组织,确定组织的重量,并确保组织不大于30mg,将其放入容器中。
2)加入适当体积的BufferRLT(已加入βME),快速进行匀浆处理,直到组织彻底裂解。
(组织重量<20mg时,加入RLT的体积为350μL或600μL;组织重量为20-30mg时,加入的RLT体积为600μL)
3)13000rpm,离心3min,小心地将上清转移到一新离心管中。
4)向以上离心管中加入1倍体积70%乙醇,立即吹吸混匀,不要离心。
5)将所有物质(包括沉淀)转移到柱子上,轻盖管盖,13000rpm离心15s,弃去流出物。
样品多时可多次收集。
6)向柱子中加入700μLBufferRW1,轻盖管盖,13000rpm离心15s漂洗柱子,弃去流出物。
7)向柱子中加入500μLBufferRPE,轻盖管盖,13000rpm离心15s漂洗柱子,弃去流出物。
8)重复步骤7
9)把柱子放入一新收集管中,全速离心1min。
10)把柱子放入一新1.5mL离心管中,加30-50μLRNase-freewater至柱子中央,静置1min,13000rpm离心1min洗脱RNA。
11)如果预期RNA产量>30μg,用40μLRNase-freewater重复步骤10。
如果要得到高浓度RNA,用洗脱液重复10。
12)用核酸蛋白测定仪测定RNA的纯度,1%的琼脂糖凝胶电泳检测RNA质量。
2.1.2.3polyA+mRNA的分离纯化
使用PolyATractmRNAIsolationKit分离纯化mRNA,原理图如下所示:
图1PolyATtract®mRNA分离纯化示意图[77]
Fig.1SchematicdiagramofthePolyATtract®mRNAisolationprocedure
1)探针的退火
取一个经处理过的无RNA酶的1.5mL离心管,向其中加入0.1-1.0mg的总RNA,用无RNA水将总RNA稀释至500μL。
将离心管放入65℃水浴中热击10min,然后加入3μL生物素链接的oilgo(dT)探针和13μL20×SSC,轻轻混匀,静置使其降温,大约需要10min。
在这中间准备0.5×SSC和0.1×SSC。
2)配制洗涤液
1.2mL0.5×SSC:
30μL20×SSC+1.170mLRNase-free水
1.4mL0.2×SSC:
14μL20×SSC+1.386mLRNase-free水
3)清洗磁珠
从试剂盒中拿出磁珠储存液,轻弹管底使磁珠重悬,等其分散均匀后用磁力架捕获磁珠,使磁珠都吸附到管壁,大约需要30s,小心的除去上清(不能离心)。
用300μL0.5×SSC清洗磁珠,每次都使用磁力架捕获磁珠,并小心地移去上清,清洗3次。
洗涤后,重悬磁珠于100μL的0.5×SSC中。
(磁珠洗涤完后必须在30min内使用,磁珠不能重复使用)
4)捕获并洗涤oilgo(dT)-mRNA复合物
将1)中退火后的体系加到3)中重悬磁珠后的液体中,室温放置10min使其结合,中间每1-2min颠倒混匀一次,磁力架捕获磁珠,小心除去上清(注意不要搅动颗粒)。
用300μL0.2×SSC清洗磁珠4次,期间轻弹管底直至颗粒已被重悬。
最后一次漂洗后,在不搅动SA-PMPs的前提下,8000rpm,离心1min,尽可能多的移出上清。
5)洗脱mRNA
用100μL无RNA酶水重悬磁珠,磁力架捕获磁珠,将上清液转移到新的离心管中。
再用150μL无RNA酶水重悬磁珠,然后将两次的上清合并在一个离心管,总共250μL。
(如果这时有任何颗粒也被带到终溶液中,可用8000rpm,4℃,离心5-10min,小心地将RNA转移到一新的无RNA酶的离心管)
6)mRNA的冻干及溶解
用真空冷冻干燥机将250μLmRNA溶液冻干,大约需要2h,然后用10μLRNase-free水重新溶解。
2.1.2.4cDNA合成及末端平端化
2.1.2.4.1cDNA第一条链的合成
取经过处理的无RNase的1.5mLEP管,加入以下组分:
4μgpolyA+RNAsample,
1μgHindIIIRandomPrimers
xμLNuclease-freeWater
20μLTotalvolume
将以上组分混合均匀,70℃加热10min后,快速置于冰上3min,然后将其离心,使混合物保留在管底。
在以上体系中继续加入:
10μL5XFirstStrandBuffer
5μL100mMDTT
2.5μLMethylationdNTPMix
8.5μLNuclease-freeWater
50μLTotalvolume(包括MMLV,在第7步加)
轻轻混匀,37℃平衡1min,加800units(4μL)MMLV-RT,轻轻混匀,37℃平衡60min,70℃加热10min,置于冰上3min,短暂离心,使内容物保留在管底。
2.1.2.4.2cDNA第二条链的合成
在冰上加入以下试剂至第一条链反应物中
50μL第一条链cDNA
50μL5XSecondStrandBuffer
6μL100mMDTT
2μL10xMethylationdNTPMix
135.4μLNuclease-freeWater
50units(5μL)DNApolymeraseI
1.6units(1.6μL)RNaseH
250μLTotalvolume
将以上组分轻轻混匀,15℃温育90min;加入250μL苯酚:
氯仿:
异戊醇(25:
24:
1),涡旋振荡,然后12000rpm,4℃,离心5min。
取其上清于另一1.5mL离心管中,加1μL肝糖,250μL4M醋酸胺,300μL异丙醇,颠倒混匀。
室温静置20min,12000rpm,4℃,离心10min,去上清,用0.5mL70%乙醇和0.5mL无水乙醇重复漂洗沉淀,每次漂洗后离心3min,沉淀干燥后用20μLTE溶解.
2.1.2.4.3双链cDNA末端修饰
设计以下反应体系:
20μL双链cDNA
3μL10XFlushBuffer
1.5μL100mMDTT
3μL1mMdNTPs
1.5U(0.6μL)T4DNAPolymerase
1.9μLNuclease-freeWater
30μLTotalvolume
将以上组分轻轻混匀,置于11℃大约20min,然后加入20μLTE和50μL苯酚:
氯仿:
异戊醇(25:
24:
1),涡旋振荡后,12000rpm,4℃,离心1min。
取上清于另一1.5mL离心管中,加50μL氯仿:
异戊醇(24:
1),涡旋振荡30s,12000g,4℃,离心1min。
取上清于新1.5mL离心管中,加入1μL肝糖,50μL4M醋酸胺,250μL异丙醇,颠倒混匀,-20℃放置至少1h,然后12000rpm,4℃,离心10min,去掉上清,用0.5mL70%乙醇和0.5mL无水乙醇重复漂洗沉淀,每次漂洗后离心3min,沉淀干燥后溶于10μLTE,-20℃保存。
2.1.2.5EcoRI/HindIII接头连接
10μLblunt-endedcDNAinTE
2μL10XLigationBuffer
2μL1mMATP
2μL100mMDTT
100pmol(2μL)DirectionalEcoRI/HindIIILinkers
5U(0.5μL)T4PolynucleotideKinase
0μLNuclease-freeWater
20μLTotalvolume(包括下面加的连接酶)
将以上体系置于37℃5min,然后将其置于冰上,加入6~8WeissUnitsT4DNAligase,16℃连接过夜。
2.1.2.6EcoRI和HindIII接头消化
将以上连接产物置于70℃大约10min,使连接反应终止,然后等其缓慢降至室温后,加入以下反应体系:
10μL10XHindIIIBuffer
65μLNuclease-freeWater
100U(5μL)HindIII
100μLTotalvolume
混匀体系,37℃温育2h。
在上述体系中再加入:
10μL10XEcoRIAdjustmentBuffer
100U(5μL)EcoRI
将反应体系混匀,在37℃温育4h,取出后用等体积的苯酚:
氯仿:
异戊醇(25:
24:
1)纯化cDNA,cDNA存在于上清中,取其上清于一离心管中,然后立刻对cDNA进行片段大小分离。
2.1.2.7cDNA大小片段的分离
根据MiniColumnFractionationKit说明书进行实验操作:
1)取出装有凝胶过滤树脂溶液的试剂瓶,轻轻地颠倒混匀,使其中的凝胶过滤树脂充分悬浮,然后吸取2mL的树脂悬浮液到MiniColumn中(lmL的床柱体积大概需要2mL的悬浮液)。
2)当悬浮液中的液体下降到柱床的顶部时,加入lmLlx柱缓冲液,当缓冲液再次下降到柱床顶部时,再加入1mLlx柱缓冲液,这样连续加5次。
3)第5次加入缓冲液又降至柱床的顶部时,将2.1.2.6中所纯化的cDNA溶液加入到柱子中。
4)在cDNA溶液流入以上被平衡的树脂中后,用枪吸取200μL1x柱缓冲液加入柱子中(不要搅动胶的表面),使柱缓冲液通过树脂流出。
5)用枪吸取250μL1x柱缓冲液加入柱子中,然后取一新离心管收集流出的溶液。
(这部分液体包含cDNA的最大片段)
6)向上述收集的溶液中加入1μL10mg/mL糖原和150μL异丙醇(不需要加盐,柱缓冲液中已经包括盐),然后涡旋震荡混匀,室温放置。
7)大约10min钟后,取出离心管,进行离心,12000rpm,4℃,10min,去除上清,分别用0.5mL70%乙醇和0.5mL100%无水乙醇洗涤沉淀,然后12000rpm,4℃,离心5min。
8)倒掉无水乙醇,并用枪头将管壁的残留乙醇清除干净,将沉淀放置超净台进行干燥,然后用20μLTE溶解沉淀,-20℃保存。
2.1.2.8cDNA与T7载体连接
将T7载体和cDNA片段以摩尔比1:
3进行连接:
1.2μLcDNAfragments
1μLT7Select®VectorArms(0.5μg;0.02pmol)
0.5μL10XLigaseBuffer
0.5μL10mMATP
0.5μL100mMDTT
0.3μLSterilewater
1μLT4DNALigase
5μLTotalvolume
将以上体系轻轻吹吸混匀,短暂离心,使反应在管底进行,16℃连接过夜,4℃保存。
2.1.2.9连接产物体外包装
1)使T7Select®PackagingExtract在冰上解冻。
2)在25μL的包装蛋白中加入5μL的连接产物,用枪轻轻混匀,不要涡旋震荡,反应混合物在22℃温育2h。
3)加入270μL灭菌的LB或TB终止反应。
进行噬菌斑实验确定重组子的数量。
4)如果包装产物在24h以内不扩增,应加入20μL氯仿,轻轻颠倒混匀保存。
可以在4度保存一周以上。
如果要长时间保存,包装的噬菌体必须通过平板法或液体法进行扩增。
扩增的T7噬菌体cDNA文库可用于生物淘洗。
2.1.2.10T7噬菌体cDNA文库的鉴定
2.1.2.10.1原文库容量测定
1)以2%的接种量将大肠杆菌BLT5615菌种接种到LB液体培养基中(含Carb终浓度为50μg/mL),37℃,220rpm振荡过夜培养。
2)取0.5mL过夜培养的菌液于20mL液体培养基中(含Carb终浓度为50μg/mL