浅论慢病毒介导靶向PRL.docx

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浅论慢病毒介导靶向PRL

浅论慢病毒介导靶向PRL

【摘要】【目的】探讨肝再生磷酸酶-3（PRL-3）的表达对肝癌细胞侵袭能力的影响。

【方法】设计、合成4对针对PRL-3基因siRNA的寡核苷酸序列，分别构建质粒，转染293T细胞，据其对PRL-3的抑制率，筛选最有效的PRL-3基因RNAi靶序列，设计并合成其siRNA的双链DNAOligo，与含绿色荧光蛋白（GFP）编码基因的pGCL-GFP线性化载体连接产生重组慢病毒质粒LV-PRL3-SiRNA，并行PCR和测序鉴定。

将LV-PRL3-SiRNA，pHelper　和pHelper三种质粒DNA共转染293T细胞，包装产生慢病毒，以293T细胞GFP蛋白的表达水平经孔稀释法测定病毒滴度。

重组慢病毒感染肝癌SMCC7721细胞，行realtime-PCR和western-blot验证PRL-3基因的沉默效果。

用Transwell侵袭试验检测SMCC7721细胞体外侵袭力的改变。

【结果】成功构建PRL-3基因RNA干扰慢病毒载体并获得相应的慢病毒，浓缩病毒悬液的滴度为6×108Tu/mL。

和对照组相比，RNA干扰组SMMC7721细胞PRL-3基因的mRNA水平和蛋白水平的抑制率分别为75%和63%;其穿过人工基底膜的平均数（±）明显少于空白对照组（±）及非特异性siRNA感染组（±），侵袭抑制率为58%（P　）。

【结论】降低PRL-3的表达可抑制肝癌细胞的侵袭能力。

【关键词】RNA干扰;慢病毒;PRL-3;肝细胞癌

　　Abstract：

【Objective】ToconstructrecombinantlentiviralvectorexpressingsiRNAtargetingPRL-3geneandexploreitsinfluenceoninvasivepotencyofinfectedhepatocellularcarcinomacelllineSMCC7721.【Methods】FoursequencesofsiRNAtargetingPRL-3geneweredesigned，ofwhichbothsenseandanti-senseDNAOligoweredesigned，synthesizedandcorrespondingplasmidswereconstructed.ThemosteffectivesequenceofsiRNAwasscreenedbyefficiencyofPRL-3geneknock-downintransfected293TcellsanditsDNAOligowasclonedintothepGCL-GFPvector，whichcontainedcodinggeneofgreenfluorescentprotein（GFP）.TheresultingrecombinantlentiviralvectorexpressingsiRNAtargetingPRL-3genewascalledLV-PRL3-SiRNA，anditwasconfirmedbyPCRandDNAsequencing.293Tcellswereco-transfectedwithLV-PRL3-SiRNA，pHelper　andpHelper　andthelentiviruswasproduced.ThetiterofviruswastestedaccordingtotheexpressionlevelofGFPin293Tcells.SMCC7721cellswereinfectedwithrecombinantlentivirusandthesilencingeffectofPRL-3genewasassessedbyreal-timePCRandwestern-blot.TheinvasiveactivityofinfectedSMCC7721cellswasanalyzedbyTranswellinvasionassay.【Results】RecombinantlentiviralvectorexpressingsiRNAtargetingPRL-3genewassuccessfullyestablishedandconfirmedbyDNAsequencing.TherecombinantlentiviruswiththemosteffectivePRL-3geneknock-downwereharvestedfrom293Tcellswithaviraltiterof6×108Tu/mL.Resultsofreal-timePCRandWesternblotshowedthatcomparedwithcontrolgroup，PRL-3expressioninSMCC7721早期血行播散及术后复发是肝细胞癌（HCC）预后不良的主要原因[1]。

关于HCC转移复发的具体机制尚未完全明了，因此寻找与其恶性进展密切相关的分子标志物显得意义重大。

蛋白酪氨酸的磷酸化与去磷酸化分别受蛋白酪氨酸激酶（proteintyrosinekinases，PTKS）和蛋白酪氨酸磷酸酶（proteintyrosinephosphatases，PTPs）的调节，是细胞生长、分化等生命活动的重要调节方式，这两种酶的作用失衡可导致蛋白酪氨酸的磷酸化水平异常，从而引起癌症等疾病的发生。

PRL-3属于PTP家族成员，近年研究发现它与人类多种恶性肿瘤的转移复发及不良预后有关[3-5]。

但PRL-3与HCC生物学行为间的关系尚未见报导。

本研究通过慢病毒介导的RNA干扰技术抑制肝癌细胞中PRL-3的表达，观察肝癌细胞体外侵袭能力的改变，探讨PRL-3表达水平与肝细胞癌恶性生物学行为间的关系。

　　1材料和方法

　　材料

　　人肝癌细胞SMCC-7721、293T细胞及大肠杆菌DH5α由本院中心实验室保存。

慢病毒包装系统由pGC-LV载体、pHelper载体和pHelper　载体三质粒组成，购自吉凯公司，限制性内切酶AgeⅠ和EcoRⅠ、琼脂糖凝胶回收试剂盒及T4连接酶购自NewEnglandBiolabs（NEB）公司，PRL-3鼠抗人多克隆抗体（ab503276）及鼠抗人β-actin单克隆抗体（英国ABCAM公司），HRP标记羊抗鼠二抗、BCA蛋白质定量试剂盒（美国PIERCE公司），胎牛血清（美国GIBCO公司），大量质粒DNA提取试剂盒购自Qiagen公司，细胞总RNA提取试剂盒（北京天根生化科技有限公司），SYBRPrimeScriptTMRT-PCRKit（大连宝生物工程有限公司），细胞可溶性总蛋白提取试剂盒（美国CST公司），dNTP及RnaseInhibitor购自Promega公司。

OligodT购自上海生工，RNase-free的物品都购自Axygen。

Matrigel（BDPharmingen，Bedford，USA），Transwellchambers（Corning，NY，USA）。

　　方法

　　构建表达shRNA慢病毒载体

　　选择GeneBank中人PRL-3基因编码区序列（NM-032611）作为分析序列。

设计、合成4对针对PRL-3基因siRNA的寡核苷酸序列，使用BLAST（Basiclocalalignmentsearchtool）将选择的干扰序列和相应的基因组数据（人、小鼠、大鼠等）进行序列比对，确信所选序列与其他的基因不具有同源性。

分别构建各干扰序列的表达质粒，转染293T细胞，据其对PRL-3基因的抑制率，确定最有效靶序列为：

5′-GCTCACCTACCTGGAGAAA-3′，设计并合成（上海吉凯基因化学技术公司）其siRNA的DNAOligo：

5′-CCGGCAGCTCACCTACCTGGAGAAATTCAAGAGATTTCTCCAGGTAGGTGAGCTGTTTTTG-3′。

阴性对照的核心序列为5′-TTCTCCGAACGTGTCACGT-3′，以下称为NC序列，其DNAOligo：

5′-GATCCCCTTCTCCGAACGTGTCACGTTTCAAGAGAACGTGACACGTTCGGAGAATTTTTT-3′。

寡核苷酸经退火形成双链DNA，经T4连接酶与AgeⅠ和EcoRⅠ双酶切后的pGCL-GF线性化载体连接，形成表达shRNA的重组慢病毒质粒载体，并行酶切鉴定。

用氯化钙制备新鲜的大肠杆菌感受态细胞，转化DH5ɑ大肠杆菌，挑取重组阳性克隆行PCR筛选，并作测序分析（上海吉凯基因化学技术有限公司）。

PCR鉴定阳性克隆的引物：

上游引物：

5′-CCTATTTCCCATGATTCCTTCATA-3′;下游引物：

5′-GTAATACGGTTATCCACGCG-3′。

　　慢病毒包装及滴度测定

　　以Qiagen公司的质粒抽提试剂盒对慢病毒包装系统中3种质粒即：

表达最有效靶序列siRNA的重组慢病毒质粒载体pGC-LV，pHelper，及pHelper，分别进行高纯度无内毒素DNA抽提，质粒DNA溶于除菌的TE中，以紫外光吸收法测定其浓度及纯度，保证所提质粒DNA的A260/A280在～之间。

按Invitrogen公司Lipofectamine2000使用说明进行共转染293T细胞，转染后8h更换为完全培养基，培养48h后，收集富含慢病毒颗粒的细胞上清液，对其浓缩后得到高滴度的慢病毒浓缩液，以293T细胞GFP蛋白的表达水平经孔稀释法测定病毒滴度。

　　SMCC-7721细胞分组及感染

　　细胞分为3组：

SMCC771-CON，空白对照组（CON），未感染慢病毒的细胞;SMCC7721-NC，阴性对照组（NC），即阴性对照慢病毒LV-PRL3-SiRNA-neg感染的细胞组;SMCC7721-KD，基因敲除组（KD），被RNAi靶点病毒LV-PRL3-SiRNA感染的SMCC7721细胞。

处于对数生长期的靶细胞进行胰酶消化，制成细胞悬液将细胞悬液（细胞数约为2×104）接种于12孔板中，℃，体积分数为5%CO2培养箱培养，待细胞融合度达到约30%，根据MOI值，按实验设计的组别分别加入RNAi慢病毒颗粒进行目的细胞的感染实验。

待感染时间达到5d后收集细胞抽提RNA及蛋白分别进行RealtimePCR及westernblot检测实验，进而判断靶点的干扰效果。

　　RealtimePCR收集

　　上述3组SMCC-7721细胞，用PBS洗3次，按照试剂盒操作手册提取提总RNA，用紫外分光光度法定量RNA。

将等量的RNA反转录为cDNA第1链。

SYBRPrimeScriptRT-PCRKit（两步法）反转录反应条件℃15min，℃5s。

PRL-3上游引物：

5′-GATGGCATCACCGTTGTGGA-3′，下游引物：

5′-CGTACTTCATCCCGCTCTCAAT-3′，以β-actin基因为内对照，上游引物：

5′-GGCGGCACCACCATGTACCCT-3′，下游：

5′-AGGGGCCGGACTCGTCATACT-3′。

将PCR反应液加入RealTimePCR用反应管中：

℃15s，1个循环;℃5s、℃30s，45个循环。

定量的方法以2-ΔΔCt（Ct代表循环阈值）表示基因的表达量，以加阴性对照病毒LV-PRL3-SiRNA-neg感染的细胞为对照细胞，公式ΔΔCt=（Ct（targetgene）-Ct（β-actin））感染细胞-（Ct（targetgene）-Ct（β-actin））对照细胞，以上实验重复3次。

　　Westernblot细胞收集后加入RIPA

　　裂解液及蛋白酶抑制剂PMSF，冰上孵育30min，4℃14000×g，30min离心，将上清移至一新的EP管中，Bradford法测定蛋白质浓度，并分装。

取20μg蛋白质，与2×SDS上样缓冲液1∶1混合，沸水煮10min，置冰上2min，行12%SDS-PAGE电泳。

电泳完毕后，PAGE胶上的蛋白质用Bio-Rad微型电转移系统于4℃、100mA电转移h至PVDF膜上。

PVDF膜用20mL封闭液（含50g/L脱脂奶粉的TBST）室温孵育1h，倒去封闭液，加入兔抗人PRL-3多克隆抗体（1：

1000稀释）4℃孵育过夜，25mLTBST洗膜3次，每次5min，加入HRP标记的抗兔二抗室温孵育1h，TBST洗膜3次，25mL×5min。

膜稍滴干后加入化学发光试剂孵育1min，迅速用保鲜膜包好后置于暗盒内与KoDakX-胶片贴在一起曝光，曝光时间1min。

X线胶片经显影、定影后扫描记录。

以β-actin为内对照。

以上实验重复3次。

　　体外Transwell侵袭实验

　　在每个Transwell小室的多聚碳酸酯膜（孔径为8μm）上涂布35μg（50μL/孔）Matrigel，制成人工基底膜，并用PBS洗去多余的配体。

各组SMCC-7721细胞用含5mL/L胎牛血清的RPMI-1640培养基培养过夜后，胰酶消化并用无血清RPMI-1640培养基洗涤两次，然后用含5mL/L胎牛血清的RPMI-1640培养基重悬成密度为×106/mL的细胞悬液。

每个Transwell小室的上室加入mL这种细胞悬液（约×105个细胞），下室加入mL含100mL/L胎牛血清的RPMI-1640培养基。

按常规培养72h，取出小室并丢弃上室液体，用棉签仔细擦去膜上未侵袭的细胞及人工基底膜胶，以40g/L多聚甲醛液固定。

Hematoxylinandeosin（HE）染色后，于显微镜下计数侵袭到膜下面的细胞。

200倍光镜随机选择5个视野计数，取平均值。

　　统计学方法

　　应用SPSS　统计分析软件，结果以均数±标准差（x±S）表示，两个样本均数比较应用t检验，多个样本均数比较应用单因素方差分析，检验水准α=，P　为差异有统计学意义。

　　2结果

　　PRL-3shRNA重组慢病毒载体PCR及DNA测序鉴定

　　PRL-3shRNA重组慢病毒载体质粒转化DH5α大肠杆菌，挑取重组阳性克隆行PCR鉴定。

阳性重组细菌克隆的PCR产物343bp（从载体中切掉24bp），以经双酶切后没有插入片段的pGC-L空载体PCR产物306bp为对照，鉴定结果与预期相符（图1）。

测序结果表明插入片段与设计的PRL-3shRNA核苷酸序列完全一致，未发现有突变、缺失、插入等异常存在，表明已经成功地构建PRL-3基因特异性siRNA的重组慢病毒载体并命名为LV-PRL3-siRNA（图2）。

作为阴性对照的PRL-3基因非特异性siRNA重组慢病毒载体并命名为LV-PRL3-siRNA-neg。

　　重组慢病毒滴度及SMCC7721细胞的感染

　　以293T细胞GFP蛋白的表达水平经孔稀释法测得慢病毒浓缩液滴度为6×108Tu/mL，说明有大量质粒转入293T细胞，病毒成功包装。

在复感指数MOI为20时，根据绿色荧光显微镜下能发出绿色荧光的细胞比例判断，重组慢病毒对基因敲除组细胞（KD）及阴性对照组细胞（NC）感染率均在95%以上。

空白对照组（CON）内未观察到绿色荧光蛋白表达阳性的细胞（图3）。

　　重组慢病毒感染SMCC7721细胞后PRL-3mRNA的表达

　　荧光定量PCR的结果显示，基因敲除组细胞（KD）中PRL-3mRNA表达量仅为阴性对照组细胞（NC）的25%，即干扰率为75%，而阴性对照组与空白对照组细胞（CON）之间的PRL-3mRNA表达水平无统计学差异（P　）。

说明与阴性对照病毒LV-PRL3-siRNA-neg相比，RNAi靶点病毒LV-PRL3-siRNA对SMMC7721细胞中PRL-3基因的表达有显着敲减效果（P　，图4）。

　　重组慢病毒感染SMCC7721细胞后PRL-3蛋白的的表达

　　Westernblot结果与荧光定量PCR结果相一致，基因敲除组细胞（KD）中PRL-3蛋白表达量仅为阴性对照组细胞（NC）的%，即抑制率为%，而阴性对照组与空白对照组细胞（CON）之间的PRL-3蛋白表达水平无统计学差异（）。

说明与阴性对照病毒LV-PRL3-siRNA-neg相比，RNAi靶点病毒LV-PRL3-siRNA对SMMC7721细胞中PRL-3基因的蛋白水平表达有显着抑制效果（P　，图5）。

　　RNA干扰对SMCC-7721细胞侵袭能力的影响

　　PRL-3特异性siRNA感染的SMCC-7721细胞穿过人工基底膜的平均细胞数（，S=）明显少于空白对照组（，S=）及非特异性siRNA感染组（，S=），侵袭抑制率为58%，差异有统计学意义（P　，图6）。

　　3讨论

　　Saha等首次发现PRL-3过表达与结直肠癌的转移有关。

他们用基因表达系列分析法（serialanalysisofgeneexpression，SAGE）发现PRL-3在正常结直肠黏膜上皮不表达，在进展期结直肠癌组织中度表达，而在结直肠癌肝转移灶中持续高度表达。

后来的研究发现PRL-3过表达对胃癌淋巴结或腹膜转移，以及乳腺癌的远处淋巴结转移均有独立的预测价值。

在卵巢癌中，PRL-3过表达与肿瘤转移无关，但与其分期密切相关。

Wu等发现PRL-3在肝癌组织中的表达明显高于正常肝组织，但有关PRL-3表达水平对肝癌细胞生物学行为影响的研究尚未见报导。

　　PRL-3过表达与肿瘤转移复发的关系在细胞水平也已得到验证。

Zeng等[10]最先证明PRL-3过表达能提高细胞的致瘤性与转移能力。

他们发现无转移特性的中国仓鼠卵巢细胞（Chinesehamsteroverycell，CHO）在过表达PRL-3以后，在体外表现出增强的迁移和侵袭能力，而且经裸鼠尾静脉注射这种细胞能促进广泛的肺和肝转移瘤的形成。

Wu等发现PRL-3在高转移性的黑色素瘤细胞B16-BL6中高表达，而在低转移性的黑色素瘤细胞B16中低表达。

将PRL-3cDNA转染到B16细胞，发现PRL-3过表达B16细胞由上皮样变为纤维样，表现出体外迁移、侵袭、扩散及增殖能力的增强，并能在裸鼠体内促进黑色素瘤的生长和肝、肺转移瘤的形成。

Qian等[11]用RNA干扰技术下调B16-BL6细胞中PRL-3表达水平后，发现细胞的体外粘附及迁移能力明显降低;体内实验发现PRL-3表达下调明显抑制了肿瘤的生长及局部淋巴结侵犯，并延长了荷瘤鼠的生存时间。

　　RNA干扰技术是近几年发现和发展起来的新兴基因阻断技术，通过内外源性双链RNA触发同源性mRNA的降解，从而使该基因表达沉默。

基因治疗的临床应用及其效果依赖于载体系统的优化及转染效率的提高。

慢病毒载体是一种复制缺陷型逆转录病毒载体，来源于人类免疫缺陷病毒（HIV-1），具有可感染分裂期与非分裂期细胞、转移基因片段容量较大、目的基因表达时间长、不易诱发宿主免疫反应等优点，因此成为携带干扰RNA理想载体[12]。

在本研究中，我们用慢病毒介导PRL-3特异性siRNA感染肝癌SMCC7721细胞后，PRL-3在mRNA和蛋白水平的表达均明显下调。

Matrigel的成份类似于体内基底膜，为了评价PRL-3是否和肝癌细胞的侵袭能力有关，我们用Transwell体外侵袭试验检测PRL-3表达下降后细胞侵袭行为的改变。

结果发现，与空白对照组及阴性对照组相比，PRL-3特异性siRNA感染组细胞由于PRL-3表达水平下调而导致其体外侵袭能力明显下降。

　　本研究的结果初步提示我们PRL-3可能在肝细胞癌的侵袭转移过程中起重要作用。

目前对PRL-3的作用底物及其促进癌细胞侵袭转移的机制尚未明了，有研究发现可能与PI3K-Akt，STAT3-Rho，Csk/Src及p53等信号传导通路有关[13-16]。

进一步研究PRL-3在肝癌中的作用及机制，将为其成为肝细胞癌转移复发的预测指标和治疗中的作用靶点提供理论基础。

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　　MiskadUA，SembaS，KatoH，e