碱性磷酸酶km值测定实验报告.docx

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碱性磷酸酶km值测定实验报告

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碱性磷酸酶km值测定实验报告

  篇一:

酶促反应动力学实验报告

  酶促反应动力学实验报告

  14301050154杨恩原

  实验目的:

  1.观察底物浓度对酶促反应速度的影响

  2.观察抑制剂对酶促反应速度的影响

  3.掌握用双倒数作图法测定碱性磷酸酶的Km值

  实验原理:

  一、底物浓度对酶促反应速度的影响

  在温度、ph及酶浓度恒定的条件下,底物浓度对酶的催化作用有很大的影响。

在一般情况下,当底物浓度很低时,酶促反应的速度(v)随底物浓度[s]的增加而迅速增加,但当底物浓度继续增加时,反应速度的增加率就比较小,当底物浓度增加到某种程度时反应速度达到一个极限值(即最大速度Vmax)。

底物浓度和反应速度的这种关系可用米氏方程式来表示(michaelis-menten方程)即:

  式中Vmax为最大反应速度,Km为米氏常数,[s]为底物浓度

  当v=Vmax/2时,则Km=[s],Km是酶的特征性常数,测定Km是研究酶的一种重要方法。

但是在一般情况下,根据实验结果绘制成的是直角双曲线,难以准确求得Km和Vmax。

若将米氏方程变形为双倒数方程(Lineweaver-burk方程),则此方程为直角方程,即:

  以1/V和1/[s]分别为横坐标和纵坐标。

将各点连线,在横轴截

  距为-1/Km,据此可算出Km值。

  本实验以碱性磷酸酶为例,测定不同浓度底物时的酶活性,再根据1/v和1/[s]的倒数作图,计算出其Km值。

  二、抑制剂对酶促反映的影响

  凡能降低酶的活性,甚至使酶完全丧失活性的物质,成为酶的抑制剂。

酶的特异性抑制剂大致上分为可逆性和不可逆性两类。

可逆性抑制又可分为竞争性抑制和非竞争性抑制等。

竞争性抑制剂的作用特点是使该酶的Km值增大,但对酶促反映的最大速度Vmax值无影响。

非竞争性抑制剂的作用特点是不影响[s]与酶的结合,故其Km值不变,然而却能降低其最大速度Vmax。

本实验选取na2hpo4作为碱性磷酸酶的抑制物,确定其抑制作用属于哪种类型。

实验步骤:

  实验一:

底物浓度对酶促反应速度的影响

  1.取试管9支,将0.01mol/L基质液稀释成下列不同浓度:

  管号

  试剂

  2.另取9支试管编号,做酶促反应:

  管号

  试剂

  3.混匀,37℃水浴保温5分钟左右。

  4.加入酶液后立即计时,各管混匀后在37℃准确保温15分钟。

  5.保温结束,立即加入0.5mol/Lnaoh1.0ml以中止反应。

各管分别加入0.3%4-氨基安替

  比林1.0ml及0.5%铁氰化钾2.0ml。

  6.充分混匀,放置10分钟,以管1为对照,于波长510nm处比色。

读取各管吸光度,

  做记录。

(酶活性计算及Km值计算)

  实验计算:

  1.在37°c下保温15分钟产生1mg酚为1个酶活性单位,从标准曲线查出释放的酚量(ug),

  以此计算处各管的酶活性(v)。

  2.以1/v为纵坐标、1/s为横坐标,在坐标纸上作图,求出酶的Km值。

  Y=0.0581x+0.0242,Km=2.401

  实验二:

抑制剂对酶促反映的影响

  1.取试管9支,将0.01mol/L基质液稀释成下列不同浓度:

  管号

  试剂

  2.另取试管9支,做酶促反应:

  管号

  试剂

  3.混匀,37℃水浴保温5分钟左右。

  4.加入酶液后立即计时,各管混匀后在37℃准确保温15分钟。

  5.保温结束,立即加入0.5mol/Lnaoh1.0ml以中止反应。

各管分别加入0.3%4-氨基安替

  比林1.0ml及0.5%铁氰化钾2.0ml。

  6.充分混匀,放置10分钟,以管1为对照,于波长510nm处比色。

读取各管吸光度,

  并计算各管酶活性。

  实验计算:

  以酶活性单位(v)的倒数1/v为纵坐标,以底物浓度[s]的倒数1/s为横坐标,在方格纸上描点,并连接各点,求该酶的Km值并与前面未加入抑制剂时测出的Km值作比较。

  Y=0.0832x+0.024,Km=3.47

  实验分析:

  通过绘图及分别计算无抑制剂与有抑制剂时酶的Km值,可发现,此抑制剂为竞争性抑制剂。

通过绘图发现,其两条以1/v为纵坐标、1/s为横坐标的直线截距几乎相同,而加入抑制剂后,酶的Km值更大,此为竞争性抑制剂的特征:

Vmax不变,Km变大。

  思考题

  一、除了双倒数作图外,你能举出其它能将酶动力学数据做出直线图的方法吗?

  1.海涅斯-沃尔弗作图法(hanes-wolffplot)

  双倒数方程式两边同时乘以[s]

  直线的斜率等于1/Vmax,横轴截距为-Km

  2.伊迪-霍夫斯蒂作图法(eadie-hofsteeplot)

  米氏方程式两边均除以[s]

  直线的斜率为-Km,直线的纵轴截距为

  Vmax

  篇二:

碱性磷酸酶Km值得测定与分子筛层析

  碱性磷酸酶Km值得测定

  【实验(:

碱性磷酸酶km值测定实验报告)目的】

  1.了解磷酸酶Km值的测定原理和方法;

  2.掌握磷酸酶活性测定的原理和方法;

  【实验原理】

  1.在温度、ph及酶浓度恒定的条件下,酶促反应的初速度随底物浓度

  [s]增大而增加,但底物浓度增大到一定极限时,则反应速度趋于恒定,即最大反应速度(Vmax)。

反应速度与底物浓度之间的关系可用米氏方程来表示,即:

  Vmax?

[s]V?

Km?

[s]

  2.本实验以碱性磷酸酶为例,用磷酸苯二钠为其底物,生成酚和磷酸盐。

酚在碱性溶液中与4-氨基安替比林作用,经铁氰化钾氧化生成红色醌的额衍生物,根据红色的深浅可测出酶活力高低。

其反应如下:

  磷酸苯二钠?

h2o?

?

?

?

?

苯酚?

na2hpo4

  苯酚?

4-氨基安替比林?

?

?

?

?

?

?

醌类衍生物(红色)

  【实验器材与试剂】

  器材:

试管架,试管,移液管,移液枪,恒温水浴箱,721型分光光度计

  试剂:

0.02mol/L底物液,ph=10碳酸缓冲液,蒸馏水,酶液,碱性溶液,4-氨基安替比林,铁氰化钾K3Fe(cn)6,oh?

AKp,oh?

  【实验步骤】

  试剂1234567空白0.02mol/L0.050.100.200.400.600.801.000.00底物液

  ph=100.900.900.900.900.900.900.900.90碳酸缓冲液

  蒸馏水0.950.900.800.600.400.200.001.00

  混合水浴37℃,预温5分钟

  酶液0.10.10.10.10.10.10.10.1(0.5mg/ml)

  加入酶液后立即混匀,37℃水浴保温,反应开始。

并开始计时,反应时间为15min

  碱性溶液1.01.01.01.01.01.01.01.04-氨基安1.01.01.01.01.01.01.01.0替比林

  铁氰化钾2.02.02.02.02.02.02.02.0混匀,室温放置10min左右,以空白管调零,

  测定各管的吸光度(A510)

  时间步骤现象分析

  15:

50配好底物混合液无明显现象

  并开始预热

  15:

55预热结束并加入酶液无明显现象

  水浴15min

  16:

07水浴结束,依次加入1-5号管红黄生成酚类碱性溶液等试剂,混颜色依次加深衍生物,匀,置于室温下10min6,7管颜色不深6,7号管反应未完全16:

17测定各管吸光度

  【实验结果记录与处理】

  试管编号12345678A5100.0300.0530.0970.1580.2320.1190.1280.0数据处理

  试管编号12345678底物浓度0.51.02.04.06.08.0100mmol/L

  1/[s]210.50.250.1670.1250.1001/A51033.3318.8710.316.334.318.407.810以1/[s]为横轴,1/A510为纵轴作图:

  【计算】

  根据y=15.071x+3.3668,当y=0时,x=-0.2234,继而Km=2.61mmol/L

  【实践与思考】

  1.底物浓度变化对酶促反应速度可造成什么样的影响?

  在底物浓度很低时,反应速度随底物浓度的增加而急骤加快,两者呈正比关系,随着底物浓度的升高,反应速度不再呈正比例加快,反应速度增加的幅度不断下降。

如果继续加大底物浓度,反应速度不再增加,此时,无论底物浓度增加多大,反应速度也不再增加,说明酶已被底物所饱和。

所有的酶都有饱和现象,只是达到饱和时所需底物浓度各不相同而已。

  2.Km值在酶动力学研究中有什么意义?

  不同的酶Km值不同,同一种酶与不同底物反应Km值也不同,Km值可近似的反应酶与底物的亲和力大小:

Km值大,表明亲和力小;Km值小,表明亲合力大.

  【注意事项】

  1.计算出来的Km值与查资料所得到的值有一定的差距。

实验是粗测,本身存在实验误差,我们在操作过程中也造成误差,所以导致与实际值差距较大。

  2.各管温度的时间一致。

  分子筛层析(凝胶过滤法)

  【实验目的】

  1.掌握葡聚糖凝胶的特性及凝胶层析的原理;

  2.学习葡聚糖凝胶层析的基本操作技术。

  【实验原理】

  1.凝胶是由胶体溶液凝结而成的固体,它们的内部有很细微的多孔网状结构。

  2.在洗脱过程中,大分子不能进入凝胶内部而沿凝胶颗粒间的空隙最先流出柱外,而小分子可以进入凝胶颗粒内部的多孔网状结构,流速缓慢,以至最后流出柱外,从而使样品中分子大小不同的物质得到分离。

  3.本实验采用葡聚糖凝胶g-25,以水为洗脱溶剂,层析分离大分子蓝葡聚糖(m>200万)和小分子黄色重铬酸钾(m=294)。

  【实验仪器与试剂】

  仪器:

层析柱,试管架,铁架台,试管,小烧杯,胶头滴管试剂:

葡聚糖凝胶,蓝色葡聚糖,黄色重铬酸钾,蒸馏水

  篇三:

实验名称碱性磷酸酶的分离纯化实验报告

  实验名称碱性磷酸酶的分离纯化、比活性测定与动力学分析实验日期20XX年10月25号实验地点生化实验室合作者指导老师

  总分教师签名批改日期

  碱性磷酸酶(AKp或ALp)是一种底物特异性较低,在碱性条件下能水解多重磷酸单脂化合物的酶,需要镁和锰离子为激活剂。

AKp具有磷酸基团转移活性,能将底物中的磷酸基团转移到另一个含有羟基的接受体上,如磷酸基团的接受体是水,则其作用就是水解。

AKp最适PH范围为8.6-10,动物中AKp主要存在于小肠粘膜、肾、骨骼、肝脏和胎盘等组织的细胞膜上。

血清AKp主要来自肝,小部分来自骨骼。

  AKp可从组织中分离纯化,也可以采用基因工程表达的方式获得:

将碱性磷酸酶基因克隆到重组载体,转入宿主菌中进行重组表达,并从表达菌提取,并进行酶动力学分析。

  一实验原理

  1、碱性磷酸酶的分离纯化

  AKp分离纯化的方法与一般蛋白质的分离纯化方法相似,常用中性盐盐析法、电泳法、色谱法、有机溶剂沉淀法等方法分离纯化。

有时需要多种方法配合使用,才能得到高纯度的酶蛋白。

本实验采用有机溶剂沉淀法从兔肝匀浆液中提取分离AKp。

正丁醇能使部分杂蛋白变性,过滤除去杂蛋白即为含有AKp的滤液,AKp能溶于终浓度为33%的丙酮或30%的乙醇中,而不溶于终浓度为50%的丙酮或60%的乙醇中,通过离心即可得到初步纯化的AKp。

  2、碱性磷酸酶的比活性测定

  根据国际酶学委员会规定,酶的比活性用每毫克蛋白质具有的酶活性来表示,单位(u/mg?

pr)来表示。

因此,测定样品的比活性必须测定:

a每毫升样品中的蛋白质毫克数;b每毫升样品中的酶活性单位数。

酶的纯浓度越高酶的比活性也就越高。

本实验以磷酸苯二钠为底物,由碱性磷酸酶催化水解,生成游离酚和磷酸盐。

酚在碱性条件下与4-氨基安替比作用,经铁氰化钾氧化,生成红色的醌衍生物,颜色深浅和酚的含量成正比。

于510nm处比色,即可求出反应过程中产生的酚含量,而碱性磷酸酶的活性单位可定义为:

在37摄氏度保温15min每产生1mg的酚为一个酶活性单位。

样品蛋白质含量测定用Folin-酚法测定。

  3、底物浓度对碱性磷酸酶活性的影响

  在环境的温度、PH和酶的浓度一定时,酶促反应速度与底物浓度之间的关系表现为反应开始时。

酶促反应的速度(V)随底物浓度(S)的增加而迅速增加。

若继续增加底物浓度,反应速度的增加率将减少。

当底物浓度增加到某种程度时,反应速度就会达到一个极限值,即最大反引发速度(Vmax)。

底物浓度与酶促反应速度的这种关系可用米氏方程式表

  示:

  式中:

Vmax为最大反应速度;[s]为底物浓度;Km为米氏常数;V代表反应的起始速度。

①当ν=Vmax/2时,Km=[s]。

因此,Km等于酶促反应速度达最大

  值一半时的底物

  浓度。

  ②Km是酶的最重要的特征性常数,测定Km值是研究酶动力学的一种重要的方法,大

  多数酶的Km值在0.01-100mmol/L。

③Km和Vmax的测定:

主要采用Lineweaver-burk双倒数作图法。

此式为直线方程,

  以不同的底物浓度1/s为横坐标,以1/V为纵坐标,并将各点连成一直线,向纵轴方

  向延长,此线与横轴相交的负截距为-1/Km,由此可以正确球的该酶的Km值。

方程式与图如下:

  本实验以碱性磷酸酶为例,测定不同底物浓度时的酶活性,再根据Lineweaver-burk法作图计算其Km值。

实验以磷酸苯二钠为底物,由碱性磷酸酶催化水解,生成游离酚和磷酸盐。

酚在碱性条件下与4-氨基安替比林作用,经铁氰化钾氧化,生成红色的醌衍生物,颜色深浅和酚的含量成正比。

根据吸光值得大小可以计算出酶的活性,也可以从标准曲线上差得酚的含量,进而算出酶活性的大小。

  二、实验材料

  

(一)碱性磷酸酶的分解纯化和比活性测定

  1、样品兔肝2、试剂

  ①0.5mol/L乙酸镁溶液②0.1mol/L乙酸钠溶液

  ③0.01mol/L乙酸镁-0.01mol/L乙酸钠溶液

  ④0.01mol/LTris-0.01mol/L乙酸镁ph8.8缓冲液⑤丙酮(分析纯)⑥95%乙醇(分析纯)⑦正丁醇(分析纯)⑧0.04mol/L底物液⑨1mg/ml分标准液⑩0.5mol/LNaOH

  ?

0.3%4-氨基安替比林?

0.5%铁氰化钾

  ?

0.1mg/mL蛋白标准液?

碱性铜试剂

  ?

酚试剂3、仪器与器材

  ①研钵

  ②刻度离心管③刻度吸管

  ④电动离心机

  ⑤玻璃漏斗和玻璃棒⑥托盘天平⑦恒温水浴⑧可见分光光度计

  

(二)底物浓度对碱性磷酸酶活性的影响

  1、样品兔肝匀浆液

  2、试剂

  ①0.04mol/L底物液

  ②0.1mol/L碳酸盐缓冲液ph10(37℃)③碱性溶液

  ④0.5%铁氰化钾⑤0.3%4-氨基安替比林⑥酚标准液(0.1mg/ml)3、仪器与器材

  ①恒温水浴锅

  ②可见光分光光度计

  三、实验步骤

  

(一)AKp的提取

  AKp提取实验步骤

  

(二)AKp的比活性测定

  1、AKp的活性测定

  AKp活性测定实验步骤

  2、蛋白质含量测定

  蛋白质含量测定实验步骤

  (三)底物浓度对碱性磷酸酶活性的影响

  1、底物浓度对酶促反应速度的影响

  将新鲜兔肝用ph10.00.1mol/L碳酸缓冲液匀浆,按20倍稀释即可

  酶曲线绘制步骤

  2、酚标准曲线的绘制的绘制

  酚标准曲线的绘制的绘制步骤

  

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