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多糖结构分析

实验八多糖结构分析

多糖在生物学上的重要意义,尤其是在医药学上的重要意义决定了多糖研究的迅速发展,多糖构效关系的研究已成为多糖研究的热点。

但由于多糖结构的复杂性和多样性,其结构测定远远落后于蛋白质和核酸,本实验选择天然多糖(半乳葡萄甘露聚糖)作为实验材料,对其一级结构做初步的分析。

多糖一级结构的分析包括:

纯度鉴定,分子量测定,单糖组成测定和糖链的序列测定。

糖链的序列测定包括:

单糖残基在糖链中的次序,单糖残基间连键的位置,链的分支情况等诸多方面。

【实验目的】

1.了解多糖结构分析的内容及方法。

2.了解多糖一级结构分析的基本原理。

3.掌握多糖一级结构分析的基本方法。

一、糖含量测定

【实验原理】

苯酚—硫酸试剂与游离的或寡糖、多糖中的己糖、糖醛酸起显色反应,己糖在490nm处有最大吸收,吸收值与糖含量呈线性关系。

【实验材料】

1.实验器材

721型分光光度计。

2.实验试剂

(1)98%的浓硫酸。

(2)80%苯酚:

80g苯酚加20ml水使之溶解,可置冰箱中避光长期贮存。

(3)6%苯酚:

临用前用80%苯酚配制。

(4)标准葡萄糖溶液(0.1mg/ml):

取100mg葡萄糖,用蒸馏水溶解,定容至1L。

(5)多糖样品:

半乳葡萄甘露聚糖溶液(0.1mg/ml)。

【实验操作】

1.制作标准曲线:

取9支干燥试管,按下表操作

管号

0

1

2

3

4

5

6

7

8

标准溶液(ml)

0

0.4

0.6

0.8

1.0

1.2

1.4

1.6

1.8

蒸馏水(ml)

2.0

1.6

1.4

1.2

1.0

0.8

0.6

0.4

0.2

6%苯酚(ml)

1.0

1.0

1.0

1.0

1.0

1.0

1.0

1.0

1.0

浓硫酸(ml)

5

5

5

5

5

5

5

5

5

静止10分钟,摇匀,室温放置20分钟

A490

横坐标为多糖微克数,纵坐标为光密度值,绘制标准曲线。

2.样品含量测定:

取样品液1.0ml,按上述步骤操作,测光密度。

 

3.计算:

糖含量(%)=C/(C0×V)×100%

C:

由标准曲线查得的糖微克数

C0:

样品溶液的浓度(0.1mg/ml)

V:

测定时用的样品溶液体积(1.0ml)

二、单糖组成分析

【实验原理】

多糖在浓硫酸中保温一定时间可完全水解为单糖,通过纸层析分离,特定试剂显色后与已知糖的标准混合物作对比,可以鉴定多糖水解产物中单糖的组成。

【实验材料】

1.实验器材

水解管;滤纸;玻璃毛细管;层析缸;喷雾器。

2.实验试剂

⑴标准糖溶液:

称取一定量的半乳糖、葡萄糖、甘露糖、阿拉伯糖,用蒸馏水溶解,得标准糖混合溶液(每种糖的点样量为20微克~30微克)。

⑵展层剂:

正丁醇:

乙酸:

水=4:

l:

5(上层)。

⑶显色剂:

苯胺-邻苯二甲酸-正丁醇饱和水溶液(邻苯二甲酸1.6g溶于水饱和的正丁醇100ml,加苯胺0.93g(相当于0.9ml)。

⑷BaCO3;1mol/L硫酸。

【实验操作】

l.完全酸水解:

称取20mg多糖样品,加入1mol/LH2S042ml;封管,l00℃水解8小时,然后加入BaC03中和,定量滤纸过滤,滤液留作分析。

2.纸层析:

将层析滤纸剪成7cm×40cm的纸条,距层析滤纸一端2cm处画一横线作为点样线,在点样线上画两个点分别作为标准糖溶液和多糖水解液的点样位置。

用玻璃毛细管点样,斑点尽可能小,而且每点一滴,待点样点干燥后,在同一位置再点第二滴。

然后将滤纸条悬挂于层析缸中进行层析,展层时间约为36小时。

3.显色:

将滤纸取出,自然干燥,喷上苯胺-邻苯二甲酸-正丁醇饱和水溶液,100℃条件下15分钟即可显色。

标准单糖混合物色斑在滤纸上由下而上的顺序是:

半乳糖-葡萄糖-甘露糖-阿拉伯糖。

与标准单糖混合物色斑比较,即可判断多糖样品的单糖组成。

三、糖链的序列测定

(一)高碘酸氧化

【实验原理】

高碘酸可以选择性地氧化和断裂糖分子中连二羟基或连三羟基处,生成相应的多糖醛、甲醛或甲酸。

反应定量地进行,每开裂—个C-C键消耗一分子高碘酸。

通过测定高碘酸消耗量及甲酸的释放量,可以判断多糖分子中糖苷键的位置、类型、多糖的分枝数目和取代情况等。

【实验材料】

1.实验器材

紫外分光光度计。

2.实验试剂

(1)溴甲酚蓝指示剂:

0.1克溴甲酚蓝溶于250ml蒸馏水中(含1.43毫升0.1mol/L氢氧化钠)。

(2)30mmol/L高碘酸钠溶液。

(3)乙二醇。

(4)0.01mol/L氢氧化钠溶液。

【实验操作】

1.制作标准曲线:

取6支干燥试管,按下表操作

管号

0

1

2

3

4

5

高碘酸钠(ml)

0

0.5

1.0

1.5

2.0

4.0

蒸馏水(ml)

4.0

3.5

3.0

2.5

2.0

0

各取0.1ml,定容至25ml,在223nm处测定光密度

A223

横坐标为高碘酸钠毫摩尔数,纵坐标为光密度值,绘制标准曲线。

2.样品测定

称取多糖样品25mg,用少量水溶解,加入30mmol/L高碘酸钠溶液,定容至25ml,置于暗处,室温下进行反应,于0,6,12,24,36,48…小时间隔取样0.1ml,蒸馏水稀释250倍后,使用紫外分光光度计在223nm处测定光密度。

至光密度值达一稳定值时,加乙二醇破坏过量的高碘酸以终止反应。

由此光密度值根据标准曲线计算出高碘酸的消耗量。

取2ml上述反应溶液,测定甲酸的生成量。

剩余部分进行Smith降解。

3.甲酸测定:

取2ml上述反应溶液,加一滴溴甲酚蓝作指示剂,用0.01mol/L氢氧化钠溶液滴定甲酸的释放量。

【注意事项】

为避免发生超氧化,反应溶液的pH值应控制在3~5,而且一定要在低温、避光处进行。

(二)Smith降解

【实验原理】

Smith降解是将高碘酸氧化产物用硼氢化合物(如硼氢化钾或硼氢化钠)还原成稳定的多羟基化合物,然后进行适度的酸水解,用纸层析鉴定水解产物,由水解产物可以推断多糖各组分的连接方式及次序。

以葡聚糖为例,其反应式如下图:

以1→2位键合的糖基经高碘酸氧化,平均每个糖基仅消耗一分子高碘酸,并且无甲酸释放;Smith降解后产生甘油。

 

以1→4位键合的糖基经高碘酸氧化,平均每个糖基仅消耗一分子高碘酸,并且无甲酸释放;Smith降解后产生赤藓醇。

以1→3位键和的糖基不被高碘酸氧化;Smith降解后仍为原来糖。

以1→6位键和的糖基或非还原末端基(1→)经高碘酸氧化,消耗二分子高碘酸,同时释放一分子甲酸

;Smith降解后产生甘油。

本实验通过纸层析检测终产物中的甘油、赤藓醇和糖。

【实验材料】

0.1mol/L醋酸。

2mol/L硫酸。

硼氢化钾。

纸层析试剂及器材:

除显色剂外,同实验二。

硝酸银显色剂:

A:

16%硝酸银水溶液:

丙酮为1:

9(V/V)。

B:

1%NaOH乙醇溶液(W/V)。

C:

6mol/L氢氧化铵。

【实验操作】

1.还原和水解

高碘酸氧化后经乙二醇处理的溶液对流水透析48小时,蒸馏水透析24小时,于40℃以下减压浓缩至10ml左右,加入70mg硼氢化钾于室温、暗处搅拌18小时~24小时以还原多糖醛。

用0.1mol/L醋酸中和至pH6~7,对流水透析48小时,蒸馏水透析24小时,减压蒸干,加1mol/L硫酸2ml,封管,100℃水解8小时,用碳酸钡粉末中和,定量滤纸过滤,滤液减压浓缩后,通过纸层析方法检测。

2.纸层析

操作详见实验2(单糖组成分析)。

展层后,将滤纸取出,自然干燥,喷上试剂A,自然干燥,将滤纸浸入试剂B中,待斑点显出后,再浸入试剂C中以洗去滤纸上的氧化银,然后用水冲洗1小时左右,风干。

以正丁醇:

乙酸:

水=4:

l:

5为展层剂时,甘油的Rf为:

0.48,赤藓醇的Rf为:

0.35。

【思考题】

1.多糖一级结构的分析包括哪些内容?

2.如果多糖经高碘酸氧化和Smith降解,发现产生的甘油量等于产生的甲酸量,说明该多糖主要含哪一种糖甘键,为什么?

半乳葡萄甘露聚糖的一级结构通式:

 

Experiment20StructureAnalysisofPolysaccharide

Thesignificanceofpolysaccharideinbiologyrealm,particularlyinMedicalscienceandpharmaceuticalrealm,leadstothequickdevelopmentofresearchonpolysaccharide.Researchontherelationshipbetweenpolysaccharidestructureandfunctionhasbecomeanotherhotpointinpolysaccharideresearch.Structureanalysisofpolysaccharidegetsbehindclearlythestructureanalysisofproteinandnucleicacidsduetothediversityofpolysaccharidestructure.Methodsusedcurrentlyforstructureanalysisofpolysaccharideincludechemicalmethods,zymologicalmethodsandinstrumentsmeasuremethods.Weanalyzeessentiallytheprimarystructureofnaturalpolysaccharide(Galactogluco-mannan)inthisexperiment;theprimarystructureanalysisofpolysaccharideincludespuritydetermination,molecularweightdetermination,andcompositionofmonosaccharidedeterminationandsequenceofpolysaccharidedetermination.Thesequenceofpolysaccharidedeterminationincludesanalysisoforderofmonosaccharideinpolysaccharidemolecule,thedegreeofbranchingofpolysaccharidemolecule,thepositionandnatureofglycosidicbondsandsoon.

【Purpose】

1.Understandthecontentandmethodonstructureanalysisofpolysaccharide.

2.Understandthebasicprincipleontheprimarystructureanalysisofpolysaccharide.

3.Masterthebasicmethodsusedforprimarystructureanalysisofpolysaccharide.

Ⅰ.ContentDeterminationofPolysaccharide

【Principle】

Phenol-sulfuricacidreagentscanreactwithfreehexose,alduronicacidorhexose,alduronicacidofoligosaccharideandpolysaccharide.Afterthereaction,thesolutionhasthemaximumabsorptionat490nm(hexose),atwhichtherelationshipbetweenabsorbanceandthecontentofpolysaccharidetakesonlinearityindefiniterange.

【Materials】

1.Apparatus

721Spectrophotometer.

2.Reagents

(1)98%concentratedsulfuricacid.

(2)80%phenol:

Dissolve80gofphenolinto20mlwater,thesolutioncanbestockpiledinthedarkinrefrigeratorforalongtime.

(3)6%phenol:

dilutewith80%phenolonthedayneeded.

(4)Standardglucosesolution(0.1mg/ml):

Dissolve100mgofglucose,anddiluteitto1Lwithdistilledwater.

(5)Polysaccharidesolution:

Galactogluco-mannansolution(0.1mg/ml).

【Procedures】

1.Drawstandardcurve:

Prepare9drytesttubesandoperateasthetablebelow

TubeNo.

0

1

2

3

4

5

6

7

8

standardsolution(ml)

0

0.4

0.6

0.8

1.0

1.2

1.4

1.6

1.8

Distilledsolution(ml)

2

1.6

1.4

1.2

1.0

0.8

0.6

0.4

0.2

6%phenol(ml)

1.0

1.0

1.0

1.0

1.0

1.0

1.0

1.0

1.0

Concentratedsulfuricacid(ml)

5

5

5

5

5

5

5

5

5

PlaceStaticallyfor10minutes,shakeevenlyandplaceatroomtemperaturefor20minutes.

A490

Wecandrawthestandardcurveaccordingtotheresultofdetermination.

Abscissa:

contentofpolysaccharide(μg)

Ordinate:

thevalueofopticaldensity

2.Determinationofsaccharidecontentinsamplesolution:

Draw1.0mlofpolysaccharidesamplesolution,andperformasdescribedabove.Thesaccharidecontentinthesamplecanbelookedupfromthestandardcurvebytheabsorbencymeasured.

3.Calculation:

Saccharidecontent%=C/(C0×V)×100%

C:

saccharidecontentlookedupfromstandardcurve(μg)

C0:

sampleconcentration(0.1mg/ml)

V:

samplevolumeusedfordetermination(1.0ml)

Ⅱ.CompositionofMonosaccharideDetermination

【Principle】

Polysaccharidecanbecompletelyhydrolysedatdefinitetemperatureinconcentratedsulfuricacidforenoughtime.Separatethehydrolysatebypaperchromatography,theseparatedmonosaccharidecanformcoloredcompoundwithdefinitechromogenicreagent,Comparewithstandardsaccharidecolorspots,compositionofmonosaccharideinpolysaccharidehydrolysatecanbedetermined.

【Materials】

1.Apparatus

Ampoule,Filterpaper,Glasscapillaries,Chromatographytank,Vaporization.

2.Reagents

(1)Standardsaccharidesolution:

Weightrespectivelycertainamountofeachsaccharidesamplebelow:

galactose,glucose,mannoseandarabinose.Thendissolvethemindistilledwatertopreparestandardsaccharidemixture.(20μg~30μgofeachspottedonthefilterpaper)

(2)Developreagent:

1-butanol:

aceticacid:

water=4:

l:

5(upperphase).

(3)Chromogenicreagent:

Watersaturationsolutionofanilin-phthalicacid-1-butanol.Dissolve1.6gphthalicacidofin100mlWatersaturationsolutionof1-butanol,thenadd0.93gof(equalto0.9ml)anilintothesolution.

(4)BaCO3;1mol/LH2S04.

【Procedures】

1.Completeacidhydrolysis:

Weight20mgofthepolysaccharidesample,add2mlof1mol/LH2S04inanampouleandsealit,hydrolyzeat100°Cfor8h.NeutralizedwithBaC03,filterandcollectthefiltratetoanalyzesugaranalysis.

2.Paperchromatography:

Cutchromatographyfilterpaperinto7cm×40cmpieces.Drawalineasspottingend2cmneartheedge.DrawtwospotsonthelineasspottinglocationofStandardsaccharidesolutionandhydrolysaterespectively.Spotthesolutiononthefilterpaperwithglasscapillary;thespotshouldbeassmallaspossible.Drythespotintheairandthenspotthesamesolutionagainatthesamelocation.Hangthefilterpaperinsidechromatographytankanddevelopfor36h,pickoutthepaperanddryintheair.SprayWatersaturationsolutionofanilin-phthalic-n-butanolonthefilterpaper.Dry15minat100℃tomakethecolorspotemerges.Theupwardsequenceofstandardmonosaccharidesamplespotis:

galactose-glucose-mannose-arabinose.Comparewithstandardsaccharidecolorspots,samplecompositioncanbedetermined.

Ⅲ.SequenceofPolysaccharideDetermination

1.PeriodateOxidation

【Principle】

Periodateoxidationinvolvesthesimultaneousoxidationandcleavageofcarbontocarbonbondsthathaveadjacentfreehydroxylgroupsinsaccharides,theproductsofperiodateoxidationincludehomologousaldehydeofpolysaccharide,formaldehydeorformate,thecleavageofonemoleculeofcarbontocarbonbondsconsumesonemoleculeofperiodateinthereaction.Informationaboutthestructureofpolysaccharides,suchasthedegreeofbranching,andthepositionandnatureofglycosidicbondsandofnon-carbohydrateresiduesinpolysaccharidescanberevealedbye

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