检验标本的采集与运送规范.docx

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检验标本的采集与运送规范

检验标本的采集与运送规范（护理）

一、血液常规采集与运送规范

（一）、常用真空采血管的种类

1、促凝管／分离胶促凝管（橙色／黄色）：

用于医学检验中生化学、免疫学、血清学、各种病毒检测及血库检查血液标本的采集与盛装。

管壁经特殊处理，防止挂壁及溶血现象。

2、枸橼酸钠１:

９（蓝色）管：

用于凝血机制等检查，按抗凝剂与血样体积比为1:

9设定的真空采血管，具有准确的血液量与抗凝剂总量，配比精度较高.

3、肝素钠／锂（绿色／墨绿色）管：

用于急诊生化、血液流变学、全血铅测定的血液标本采集。

对血液成份干扰少,不影响红细胞体积,不引起溶血。

具有血浆分离速度快，与血清标本指标兼容性强等优点.

4、EDTA（紫色）管:

抗凝剂为乙二胺四乙酸（EDTA，分子量292）及其盐,适用于一般血液学检验，不适用于凝血试验及血小板功能检查，亦不适用于钙离子,钾离子，钠离子，铁离子，碱性磷酸酶，肌酸激酶和亮氨酸氨基肽酶的测定及PCR试验。

（二）多管采样时采集次序

多管采血时一般按下列顺序：

凝血试验→血沉→血常规→其它。

以防止凝血因子活化，或者血小板聚集而影响检验结果。

多项检测同时采血时应按下列顺序采血：

①血培养；②无添加剂管或促凝管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：

a．橼酸盐管；b．肝素管;c．EDTA管；d．草酸盐/氟化钠管。

（三）各种血标本的采集及注意事项

1、血常规检验标本   

一般用EDTA—2K（EDTA—K2•2H2O）1。

5～2。

2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管，紫色帽）采血。

　采血注意事项：

1）应按抗凝管刻度准确采静脉血至2ml。

2）采血后立即上下颠倒混匀（5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。

）;

 采血后应尽快送检（为保证结果准确需显微镜观察形态的标本采血后应及时推片固定，因为超过2hWBC形态会发生改变）.

2、凝血检测（PT、APTT、TT、FBG）标本   

静脉采集抗凝血（最好真空负压系统采血）,抗凝剂用枸橼酸钠（109mmol/L，即32。

06g/L，抗凝剂：

全血=0.2:

1。

8）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、蓝绿色帽）.采血注意事项：

1）空腹采静脉血（餐后脂血影响检测结果，使因子Ⅶ活化，导致PT延长）；

2）采血时患者应保持平静状态30min以上（剧烈活动可使因子Ⅷ活化，APTT明显缩短）；

3）应单独1管血,必须准确采血至刻度线2ml;

4）血后应立即上下颠倒混匀5～10次,不可有凝块；

5）采血后应尽快送检（必须2h内检测）。

3、血型与血交叉标本

用EDTA—2K（EDTA—K2•2H2O）1.5-2。

2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、紫色帽）采血（EDTA抗凝管有2ml和5ml两种规格）。

采血注意事项：

1）按抗凝管刻度准确采静脉血,采血量分别为2ml（血型）和5ml（交叉配血）； 

2）  采血后立即上下颠倒混匀（5～10次），不可有凝块，且不可用强力振荡，以免造成溶血。

 最好血型与血交叉各采1管血，便于标本保存。

4、红细胞沉降率（血沉，ESR）检验标本

   静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管采血，黑色帽）。

注意事项：

1）单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至1.6ml（抗凝剂：

全血=0.32:

1。

28）；   

2）采血后立即上下颠倒混合5～10次，不可用强力振荡; 

3） 采血后应尽快送检（为保证结果准确，必须2h内检测）.

5、临床生化/免疫检验标本

临床生化/免疫检验多用非抗凝血标本，应使用真空负压采血管.临床生化检验血标本采集主要注意事项是:

1）多项临床生化/免疫检验一般各采1管血，生化检验1管,免疫检验1管；

2）采血量视检查项目多少不同而异，单管通常为4。

0～5。

0ml；

（四）真空采血操作顺序

1、使用扎脉带，嘱病人握紧拳头;

2、皮肤消毒后将采血针刺入静脉；

3、见回血后，用穿刺针穿真空管胶塞，血液自动流入试管;

4、血液一流入管中，便解开扎脉带;

5、采血完毕后，先拔出采血针，待滴血停止后再拔出试管端穿刺针；

6、如需多管血样，待第一管采集完,将试管端穿刺针拔出刺入另一真空管即可。

7、如管内有抗凝剂，需立即颠倒混匀5～10次，防止血液凝固，其余各管依次按本要求操作。

（五）真空采血注意事项

1、胶塞穿刺针上的乳胶套能防止滴血,采血时不能取下；

2、穿刺针需从真空管胶塞中心垂直穿刺；

3、多管采血时，枸橼酸钠管需第一管采血；

4、采血针软管的容积为0.4ml，采血时可酌情提前拔出采血针；

5、抗凝管采血后需及时上下颠倒5~10次，颠倒动作应轻缓；

6、采血针刺入静脉后,如穿破静脉，回血撤回，此时不必惊慌，可将采血针顺原路缓慢退回，见回血即可。

（六）抽血时应注意的事项

1、要注意选择部位：

选择易见易触的大血管采血;

2、病人的姿势要合适；

3、采血前应向患者耐心解释，以消除不必要的疑虑和恐惧；

4、为了避免淤血和浓缩,压脉带压迫时间不可过长,最好不超过１分钟；

5、抽完血液后,必须先松开止血带，松开拳，再拔出针头，以免血液流到皮肤上；

6、部分肥胖或全身浮肿患者，浅在静脉难于发现或触摸不到时,可根据解剖部位进行穿刺；

7、老年人因皮下脂肪少，皮肤松驰，血管易于滑动，针头不易刺入,可采用先刺入皮下，再刺入血管的方法。

（七）抽血时常遇到的障碍

1、注射器或采血针漏气；

2、针头太细,抽血不畅，时间长，致血液容易凝固在针头中；

3、针头位置未固定，抽血中途脱出血管；

4、针头刺入皮下太深，刺入血管下面的组织,常因左手拉皮不够紧，血管未固定之故;

5、针头斜面一半刺入血管腔，一半在皮下，虽可抽出血但不顺畅，有时可形成血肿；

6、血管清析，穿刺亦正常,但就是抽不出血，常见于局部抽血或注射次数太多,血管壁增厚腔变小所致;

7、标本溶血（原因很多）。

（八）血液标本常见溶血原因

1、注射器、针头或容器不干燥；

2、压脉带捆扎时间太久，淤血过久；

3、穿刺不畅，损伤组织过多；

4、抽血速度太慢或太快;

5、血液注入容器时未取下针头；

6、抗凝血混合时，振荡力量过大；

7、血液未完全凝固前进行振荡；

8、血液存放时间过长；

9、静脉采血时，为增加血流而挤压采血部位；

10、血液标本在送检验或运输过程中,挤压或振动过大等。

（九）常用血液标本的采集量及送检时间

　　项　目　　　　采血量　　　送检时间　完成检验时间

　血常规分析等　２ml及时送检　　2小时内

　　凝血试验　　　２ml及时送检　　4小时内

　血液流变学　　　５ml及时送检　　4小时内

　　　血沉　　　　1.6ml立即送检　　2小时内

　临床化学标本１

（含肝肾功、血脂　　4—5ml及时送检　　4小时内

　肿瘤因子等）

　临床化学标本２

（含血钾、血糖、　　4-5ml立即送检　　2小时内

　心肌酶等）

　免疫学标本　　4—5ml及时送检　　4小时内

（十）特殊血液标本的采集与送检

1、血气标本的采集与送检

　　血气标本可采动脉血、静脉血、混合静脉血及动脉化毛细血管血，但因后三者不能真实地反映患者的血气水平，故一般推荐动脉采血法。

　　采血部位:

股动脉、肱动脉、桡动脉等,一般采肱动脉或桡动脉。

　　应用器材：

注射器（0。

5ml玻璃或塑料均可）、针塞（用橡皮或木塞，使针尖密闭）、冰水（作冷却标本用，若30分钟内送检则不需要）、肝素或肝素钠（作抗凝用）、利多卡因（局部麻醉用）、其它消毒用品。

　采血前的准备：

1）用注射器吸取0.3ml抗凝剂（肝素或肝素钠）,浸润注射器内壁后，除残留于死腔部分外，尽量排出抗凝剂．

2）必要时在采血部位作局部麻醉，但注药不能过多，否则不易触及搏动．

采血（股动脉）：

1）腹股沟内侧能触及股动脉搏动处用皮肤常规消毒．

2）穿剌者戴无菌手套，铺无菌洞巾，并将股动脉固定于左手中指和食指之间．右手持注射器,其针尖斜面向上,以垂直或与股动脉45°角方向进行穿剌．以右手指固定穿剌针的方向及深度，严防针头或穿剌移动，左手拉动筒栓至所需血液量．迅速拔出针头,并用无菌纱布压迫针眼片该，以防出血．

3）如果注射器内进入少量空气，应尽快将注射器针头垂直向上排出气泡，并将针头剌入针塞，及时送检．

（十一）、葡萄糖耐量试验的标本的采集与运送

　1、患者准备:

1）试验前应禁食12小时；

2）试验前三天,禁服影响试验的药物，停用胰岛素治疗；

3）整个试验过程中，患者不得喝茶、喝咖啡、抽烟、进食.

　2、标本采集：

1）清晨空腹抽血2ml作空腹血糖测定；

2）将75g无水葡萄糖溶于200-300ml水中，５分钟内饮完，对儿童可按1.75g/公斤体重计算葡萄糖用量；

3）服糖后准确于30min、1h、2h和3h各取静脉血２ml立即送检，测定血糖浓度;

4）将各标本测定结果，绘成曲线与正常曲线比较

二、尿液标本的采集与运送

（一）尿液标本的种类

1、晨尿标本：

留取清晨第一次尿，经长时间睡眠后，尿液趋向于浓缩和酸化，各种有型成份相对集中，且不受饮食、药物、运动等的影响，故最适合于尿常规检查。

特别适合于住院患者和肾脏患者及泌尿系统疾病的动态观察和早期妊娠试验、本周氏蛋白测定等.

2、随意尿标本：

留取随时自然排尿标本，适用于尿液一般定性检查，为门诊急诊患者所常用。

易受饮食、药物、运动等的影响，能使低浓度或临界浓度的病理性物质和有型成份漏检，并可出现饮食性糖尿。

3、１２小时尿标本：

患者可正常进食，晚上８点排尿，弃去.以后１２小时尿液全部收集于一洁净容器内,常用于细胞、管型等有型成份的计数，如Addis

计数等（夏季应先加入1ml福尔马林于容器内防腐）.

4、２４小时尿标本:

患者早晨８点排尿弃去，以后２４小时（包括次晨８时）的全部尿液收集于一个带盖的洁净容器内，应在容器内加入适量合适的防腐剂（根据检验目的不同选择不同的防腐剂）.临床上常用于检测体内代谢产物，如肌酐、蛋白质、激素、电解质、17—羟、17—酮以及用于尿浓缩沉渣或检查培养结核菌等.

5、培养用尿标本：

用于肾或尿路感染病人的病原微生物培养鉴定以及药敏试验的尿液标本．要求避免污染,常采作：

中段尿标本、导尿标本或耻骨上膀胱穿剌获得的尿标本。

（二）专用尿液标本的采集

1、体位性蛋白尿试验标本的收集：

　　在夜间入睡前先令患者排尿，使膀胱排空，此次尿液不要，次日起床后立即排尿，并将标本留检。

再令患者站立及走动,两小时后再次排尿留检。

若第一次标本蛋白呈阴性而第二次为阳性,则可确诊。

2、尿三杯试验：

　　取尿杯３个，标明1,2，3。

嘱患者连续排尿,分别收集于３个尿杯中。

第１杯和第３杯各收集10ml即可，大部分尿留在第２杯中。

尿要一次排出,中间不可间断.标本收集完后立即3送检。

（三）尿标本的送检及保存

1、尿标本除特殊规定外，一般需留取10ml左右．

2、尿标本收集后应及时送检，以免有型成分破坏和有机物质分解．

3、常用防腐剂:

　　甲醛（每100ml尿加400g/L的甲醛0.5ml）：

尿液有型成分，如３小时尿沉渣、１２小时尿沉渣（Addis计数）等。

　　甲苯（每100ml尿加甲苯0.5ml）：

尿糖、尿蛋白测定。

　　盐酸（每1Ｌ尿加浓盐酸１０ml）:

尿钙、17-羟、17—酮、儿茶酚胺。

（四）尿液常规检查标本采集注意事项

1、新鲜晨尿最佳，门诊病人亦可留随机尿； 

2、尿液采集于干净带盖容器中，不可使用未经洗涤的装药物或试剂的器皿；  

3、避免混有经血、白带、精液和粪便；

4、尿液成分定量检查应留取24h防腐混合尿20~50ml（须记取24h尿液总量）。

（四）尿常规检查标本的具体采集方法

1、尿常规

1）使用清洁干燥容器，住院病人以清晨第一次尿为主，门、急诊患者可随时留取新鲜尿液约20ml送检。

2）尿标本应避免经血、白带、粪便等混入。

3）标本留取后及时送检，不得超过1小时，以免细菌在尿中生长繁殖。

2、24小时尿标本

1）准备清洁干燥带盖的广口容器,容量为3000~5000mL。

2）病人于晨8时将尿全部排尽弃去,然后开始留尿，将24小时内历次所排尿液均留于容器中，包括次日晨8时所排最后一次尿。

3）测量尿液总量（ml）并记录，将全部尿液充分混匀后，取出20～50m1，置于清洁干燥有盖容器中立即送检。

4）若天气炎热，可根据检验要求放入适量的防腐剂。

三、粪便标本的采集与送检

（一）患者的准备

1、患者应于治疗之前留取标本。

2、留作隐血试验的标本应于３日前禁食肉类及动物性食物,并禁服铁剂及维生素Ｃ等药物。

（二）标本的采集与送检

1、自然排便采集法：

自然排便后,挑取有脓血、粘液部分粪便2—3g,若稀水样则应取约2ml，于适当容器中送检。

若作虫卵检查则不少于20g。

阿米巴或其它原虫滋养体检查，标本必须新鲜，立即送检，冬天尚需采取保温措施。

2、指肠指诊法:

可由直肠指诊时所用手套取得粪便,于适当容器中尽快送检。

3、粪便掏管采集法：

如不易获得粪便时或排便困难的患者及幼儿，可用采便掏管采集。

将清洁无菌干燥的玻璃掏管盲端小心插入肛门3cm—5cm深处，并转动掏管，或来回拉动掏管数次。

抽出掏管,此时掏管的圆孔内室有粪便。

（三）注意事顶

1、供各种检查用的粪便标本务求新鲜且不可混入尿液、消毒液及污水等,以免有型成分破坏，病菌死亡和污染腐生性原虫

2、灌肠及服油类泻剂后的粪便常因过稀及混有油滴等影响检验结果，不适于作检查标本。

3、标本采集后应于1-2小时内检查完毕，否则可因pH及消化酶等影响导致有型成分破坏分解。

四、痰液标本的采集与送检

（一）自然咯痰法：

1、要求患者清晨刷牙漱中后，用力咯出气管深处的第一口痰于清洁干燥、无菌的容器内，及时送检.主要用于一般常规检验、一般细菌检验及结核菌检验。

2、对于无痰或者少痰患者，可用450C加温的100g/LNaCl水溶液雾化吸入或改变体位，以使痰液易于咯出；对于小儿可用消毒棉拭剌激喉部引起咳嗽反射,用棉拭采集标本。

3、如用漂浮或浓集法查结核菌时需留取12—24小时痰液送检.

（二）上呼吸道标本：

采用无菌棉拭子。

（三）气管洗涤液：

取8～9号消毒导管，从鼻腔插入气管内，缓慢注入灭菌蒸馏水5ml，取出导管。

留取病人在3小时内咳出的痰液，放入灭菌瓶内送检。

五、微生物标本的采集与送检

（一）微生物标本采集与送检原则

1、收集真正病灶处的标本，且不得受到邻近区域微生物的污染。

例如作咽喉溃疡的涂片与培养时，须小心地从溃疡处采集标本,不在受到口腔分泌物的污染。

2、采用灭菌地的器皿收集标本，并装于无菌容器内,标本处理后容器应尽快灭菌。

3、收集“足量"的标本，譬如作脓液检查，最好收集数毫升，若用棉花拭子收集时，最好多采取几根拭子。

4、不要直接以棉拭子运送标本到检验科.因拭子所能采集的标本量有限，极易干燥，所以需将拭子装于特制的运送培养基中。

5、尽可能在患者服用抗生素或伤口治疗之前收集标本.若患者已服抗生素，采集标本者应将其记录于检验申请单上。

6、不要在标本中添加任何防腐剂,以免干扰病原菌的分离.

7、尽可能取原标本作直接涂片。

8、装标本的容器上须贴上标签，包括患者姓名、住院号、标本来源、收集时间以及有关的诊断及用药等.

9、收集标本时，须小心避免他人受到感染。

10、即刻将标本送至检验室，不可拖延.标本收集时间应加以准确记录,使检验人员接种时能判断标本是否延误.

（二）微生物学检验标本采集、运送、验收和处理注意事项

1、标本采集

1）申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等）,以便实验室能够合理选择培养环境和培养基;

2）尽量在抗生素应用前采集标本,以避免漏检和提高阳性检出率;

3）标本采集应严格执行无菌操作；

4）咽拭、肛拭、伤口拭子等拭子标本，应插入运送培养基送检;

5）痰、尿液、伤口拭子等混有正常菌群的标本，不可放入肉汤培养基内送检；

6）采集标本的容器必须经灭菌处理，但不可用消毒剂。

2、标本运送   

1）标本采集后应尽快送到微生物实验室;

   2）标本采集后在室温下超过2h未送达实验室,可视为不合格标本.

3、标本验收

 1）实验室只能接受和处理合格标本;

  2）实验室对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联系。

（三）微生物学检验标本采集和处理

1、尿液标本采集和处理

   通常留取晨起第一次尿液（此时尿液在膀胱内储存4h以上）；尿液采集后要及时送检，并保证2h内接种；尿液微生物学检验标本采集方法如下。

1）中段尿采集法：

成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部,再用灭菌水冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌容器中留取中段尿液5~10ml。

2）导尿法：

用导尿管导取10～15ml尿液,置灭菌容器中送检；长期留置导尿管者应更换新导尿管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检（不可采集尿液收集袋中的尿液送检）

3）集尿法：

怀疑结核分枝杆菌感染时,于清洁盛器中留取24h尿液，取其沉渣10~15ml送检；

2、粪便标本采集和处理

   1）采集时间:

   ①腹泻患者于急性期,尽量在用药前采集粪便;

   ②伤寒患者于发病2天以后采集粪便；

   ③怀疑霍乱时立即采集粪便送检。

   2）采集方法：

   ① 自然排便：

取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2—3g或1—2ml，盛无菌容器内或置于保存液或增菌液内送检;

   ②直肠拭子：

用于难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿,标本采集后插入灭菌试管内送检。

3、痰及下呼吸道标本采集和处理

   1） 自然咳痰法:

清晨痰量多，含菌量亦大，嘱病人先用洁口液，再用清水漱口,以除去口腔中细菌，深吸气后用力咳出1－2口痰于培养皿或瓶中，痰量极少可用45℃10％氯化钠溶液雾化吸入导痰.

2）建立人工气道，如气管切开或气管插管者，戴无菌手套或用无菌镊子取一次性无菌专用吸痰管，一头缓慢插入气管致隆突（叶支气管）水平,一头接电动吸引器,螺旋式抽吸，吸引痰液.

注意事项：

以清晨第二口痰为佳；防止唾液及上呼吸道分泌物污染;在抗生素使用前采集价值高。

连续采集3～4次，采集间隔时间>24h。

4、血培养标本采集与运送

   1）采集方法

a）培养瓶消毒程序：

消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。

b）皮肤消毒程序:

用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5cm以上，待消毒液挥发干燥后采血。

c）静脉穿刺和培养瓶接种程序:

用真空采血针无菌穿刺，采血直接注入血培养瓶，先采血10ml于厌氧培养瓶,再采血10ml于需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固或严格按厂商推荐的方法采血。

2）注意事项

a）血液标本采集后应立即送检，不能及时送检者应置室温暂存，勿放冰箱.检验单需注明抗菌药物（特别是磺胺、青霉素）使用情况，采集时间和部位（如左臂等），可疑的诊断。

b）采血部位：

通常为肘静脉,疑为细菌心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。

对于成人患者，每次发热时应该分别在两个部位采集血标本以帮助区分是病原菌还是污染菌。

在不同部位取血，2次分离出同样菌种才能确定是病原菌。

不应从留置静脉或动脉导管取血,因为导管易被固有菌群污染。

c）采血时机：

在患者发热期间越早越好，最好在抗菌治疗前，以正在发冷发热前半个小时为宜或在停用抗生素24小时后。

d）采血次数及间隔：

对需马上做抗菌治疗的急性发热性疾病（如脑膜炎、细菌性肺炎）或需紧急手术的患者，如（急性骨髓炎、化脓性关节炎等），应立即从两臂分别取2份标本.对感染性心内膜炎患者，在24h内取血3次,每次间隔不少于30min；必要时次日再做血培养两次。

对发热原因不明者两次抽血间隔60min；必要时于24~48小时后再抽血2次.因为1次血培养不足以说明问题，且会遗漏阳性结果。

国外有人统计1次血培养可检出菌血症的80%，2次检出90％，3次检出99%.国内统计17家医院1次血培养阳性率10.8%,18家医院2次以上血培养阳性率14。

8％

e）采血量：

成人菌血症或败血症的血液中含菌量较少，平均1~3ml血液中仅有1个细菌.所以采血量一定要足够。

以培养基与血液之比10:

1为宜,以稀释血液中的抗生素、抗体等杀菌物质。

采血量过少会明显降低阳性率。

成人每次每培养瓶采血10ml（含100ml培养基），婴幼儿每次每培养瓶采血5ml（含50ml培养基）

f）将血注入培养基前不需要更换针头,用无菌干棉球按压瓶塞，并尽可能避免血培养瓶橡皮塞上的残留消毒液影响结果。

g）每日每例采血至少两次，间隔0.5～1h。

5、脑脊液培养标本

  1）采集时间：

怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最是在应用抗生素之前采集脑脊液。

2）采集方法：

无菌腰穿采集脑脊液3~5ml，分装到3个无菌小瓶中（各1～2ml）。

用于细菌和病毒检测时脑脊液量不少于1ml；用于真菌和抗酸杆菌检测脑脊液量不少于2ml。

3）注意事项：

a）用于细菌检测:

收集脑脊液后15分钟内送检,脑脊液不可放冰箱保存。

b）用于病毒检测：

脑脊液标本应放置冰块，在4℃15分钟内送检。

c）行腰穿过程中，严格无菌操作。

6、穿刺液培养标本

   1）采集时间：

一般在用抗生素等抗菌药物治疗之前,或在停止使用抗菌药物之后2—3d采集标本。

   2）采集方法：

   ①无菌操作穿刺抽取标本或外科手术采集标本；

   ② 标本采集量应＞1ml（结核分支杆菌培养时应为1～5ml）；

   ③ 标本采集后注入无菌小瓶或无菌试管中送检；

   ④可在容器中先加入灭菌肝素然后再加入穿刺液，以防止穿刺液凝固（0。

5ml肝素可抗凝5ml标本）

7、胃液及胆汁培养标本

   抽取空腹胃液5ml,置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁,采集胆汁量为5ml，置无菌管内送检；胃液和胆汁采集后必须立即送检。

  8、化脓和创伤标本

1）标本采集

a）开放性感染：

标本采集前清创创口，然后用无菌拭子采取脓汁及病灶深部分泌物于无菌管中立即送检.

b）闭锁性脓肿：

无菌操作，穿刺抽取标本于无菌管中立即送检。

2）注意事项

a）用药前采集标本，样本申请时，应该详细注明样本内容物，采集部位等。

b）如不能立即送检标本，放4℃保存，但培养淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌标本除外。

9、泌尿生殖道培养标本

1）尿道分泌物：

清洗尿道口采取尿道口溢出的脓性等分泌物，或用无菌拭子插入尿道2~4cm处轻轻转动后取出，置无菌试管中送检.

 2）阴道、宫颈分泌物：

通过阴道扩张器，用灭菌拭子采取阴道口或宫颈管1～2cm处分泌物，置无菌试管中送检。

   3）前列腺液:

清洗尿道口冲洗膀胱后用前列腺按摩法采取前列腺液送检。

   4）精液：

受检者应5d未排精，清洗尿道口后手淫或体外排精法，射精于无菌容器内送检。

   5）溃疡分泌物：

灭菌生理盐水溶液清洗患处，用无菌拭子取其边缘或基底部的分泌物，置无菌试管中送检.

10、烧伤感染培养标本

   烧伤12h后用无菌棉拭子无菌操做采集标本；要注意从多个创面取样；烧伤严重感染时易发生败血症,创面取样的同时应该采集血样送做血培养（最好同时做需氧菌培养和厌氧菌培养）。

11、厌氧菌感染培养标本

    1）标本采集

   ①要注意避免标本污染和与空气接触,严格遵守