检验样本采集手册版.docx

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检验样本采集手册版

检验样本采集手册

护理部

山东省警官总医院院感科联合制订

检验科

2013版

患者准备

根据所采样本的类型何所分析的物质而定。

样本采集前患者的状态对检测结果有一定影响，不同检测项目对样本采集前患者的状态有不同要求。

许多非疾病因素，如是否空腹、精神状况、体力活动、使用药物等都可能影响检验结果。

因此，在样本采集前，要根据需要对患者做好相应的准备。

1、一般要求患者处于安静状态，晨起时的精神、体力、情绪等因素的影响较少，是大部分样本采集的最佳时间。

2、患者最好停服干扰检测的药物。

3、许多检测对饮食和药物有特殊要求，如静脉采血前至少要空腹8小时。

4、血脂测定需禁食12-14小时后采血。

5、情绪紧张会使血糖升高。

6、吗啡、可卡因可使淀粉酶升高。

7、微生物培养最好在使用抗生素前。

8、采血之前按摩前列腺可引起酸性磷酸酶、前列腺特异抗原的升高。

9、尿液检查按不同项目分别留取晨尿、随机尿、计时尿。

10粪便潜血检查前要素食，禁食含动物血的食物。

采集样本所用材料的安全处置

为确保医务人员及患者的生命安全，采集样本所用材料应安全处置。

所用消耗材料如手套、棉签等应当作为医用垃圾处理，所用的利器如针头应放入锐器盒当做医用垃圾处理，污染的台面、器具应严格消毒处理。

真空采血管采血顺序

优先采嗜氧血液培养瓶，其次采厌氧血液培养瓶→血液生化管（红帽，无抗凝剂）→凝血试验管（蓝帽，柠檬酸钠1:

9抗凝）→血粘度管（绿帽，肝素钠抗凝）→血沉管（黑帽，柠檬酸钠1:

4抗凝）→血常规管（紫帽，EDTAK2抗凝）。

样本采集与标示

1、确认患者身份：

在样本采集前必须确认患者身份与申请单一致，嘱咐患者做好采集样本前的准备工作，并告知相关注意事项。

2、样本容器选择：

按规定选用适合的容器。

采集抗凝血样时，应选择合适的抗凝剂，抗凝剂与血液的量务必准确。

3、样本标示：

样本容器上须清楚标示与患者信息、检测目的一致条形码。

4、样本采集：

采集静脉血时，要正确使用真空采血管取血至刻度，在取下采血管的同时，立即将含抗凝剂的采血管轻轻颠倒混匀5-8次，不可剧烈摇晃以免造成样本溶血。

5、复核样本：

样本采集后，应再次核对条形码上的患者信息、检验目的与患者和样本管是否一致。

6、样本放置：

已采集的样本，若不能及时送检，要严格按检验规定的储存条件暂存。

未按要求采集、储存、运送的样本将被视为不合格样本处理。

样本采集注意事项

1、正确的采集样本是保证检验质量的基础：

1.1避免干扰物的污染，特别是定量分析样本。

1.2样本采集部位和方法要正确。

1.3样本标示清晰无误。

1.4无人为的溶血和浑浊因素：

如采集样本时抽血困难、收集样本时用力震荡等会造成溶血；餐后采血会出现脂血导致血清、血浆浑浊。

1.5合理使用抗凝剂及防腐剂。

1.6微生物检验样本采集应严格无菌概念。

1.7样本采集后要尽快送至实验室。

2、样本采集时间：

2.1空腹样本：

一般指空腹8小时以后采集的样本。

清晨空腹血液样本常用于临床生化定量测定，受食物、体力活动、生理活动等的影响较少，易于发现和观察病理情况，而且重复性较好。

2.2随时或急诊样本：

指无时间限制或无法规定时间而必须采集的样本，患者一般无法进行准备。

随时或急诊样本主要用于体内代谢比较稳定以及受体内因素干扰少的物质的检查，或者急诊、抢救患者必须做的检查。

2.3指定时间样本：

即指定采集时间的样本。

根据不同的要求，有不同的指定时间。

如24小时尿蛋白定量、葡萄糖耐量试验等。

检验科样本拒收规定

1、样本属性不清、标记错误或无标记。

2、抗凝剂比例错误、抗凝血未及时混匀导致凝块产生。

3、样本收集管使用错误。

4、储存、运送不当。

5、痰、粪便样本已干。

6、尿培养样本未使用无菌管留取。

7、厌氧培养样本未按要求取材、送检。

8、其他无菌部位取材及送检时已被污染的样本。

样本采集方法

血液检验样本采集方法

血液检验样本分为全血、血浆、血清等。

全血样本主要用于临床血液学检查，例如血细胞计数和分类、形态学检查等；血浆样本适合内分泌激素、血栓和止血检查；血清样本多适合临床化学和免疫学的检测。

按照血样本采集部位的不同，分为静脉血、动脉血和毛细血管血三种。

绝大多数检查采用静脉血，少数检查如血气分析、乳酸和丙酮酸测定等需要采集动脉血，毛细血管血主要用于各种微量法检查或大规模普查。

静脉血是最常用的实验室检查样本，真空采血法是最好的静脉血采集技术。

基本原理是将双向针的一端在持针器的帮助下刺入静脉，有回血后将另一端插入真空试管内，血液在负压作用下自动流入试管内。

由于在完全封闭的状态下采血，避免了血液外溢引起的污染，并有利于样本的转运和保存。

标准真空采血管采用国际通用的头盖和标签颜色显示采血管内添加剂种类和检测用途，可根据需要选择相应的盛血试管。

静脉血采集方法、注意事项和采集样品所用材料的安全处置：

静脉血采集方法及注意事项：

1.止血带或压脉器：

采集静脉血时，止血带压迫静脉时间不宜过长，以不超过2分钟为宜，否则容易引起淤血、静脉扩张，并且影响某些指标的检查结果，如乳酸升高、PH值降低、K+、Ca2+、肌酸激酶升高等。

2.采血时间与部位：

大多数化验检查要求清晨、空腹，采集静脉血应尽可能避免在输液同时取血，输液不仅使血液稀释，而且对实验室检查结果发生严重干扰，特别是血糖和电解质。

如果因病情需要，输液患者的静脉血采集应在未输液侧肢体采集。

任何情况下，都不能在留置管中采集血样。

3.避免溶血、杂质污染：

采血器具必须无菌、干燥、洁净。

避免特别用力抽吸和推注、避免化学污染和细菌污染、避免因剧烈震荡引起的溶血。

因为红细胞的某些成分与血清（浆）不同，样本溶血可使红细胞某些成分释放，影响实验室检查结果。

4.血样的采集：

血样要求在每一天的同一时间采集，理想时间时早晨7:

00到8:

00，尤其是监测为目的时，更要保证样本采集时间的统一。

最后一次食物和液体摄入应在前一天下午6:

00到7：

00（急诊检查例外）。

血样采集应在不服药期间，如在早晨服药前。

血样采集时，患者应仰卧位，采血点应在同一静脉区，通常为手臂静脉。

5.样本采集后须立即送检，放置过久影响检验结果。

当取血不顺利时，切忌在同一处反复穿刺，易导致样本溶血或有小凝块，影响检测结果。

6.采集血培养样本时，如果用注射器采血，应将血液先注射厌氧瓶，尽量减少接触空气时间。

如果是用负压采血瓶，应先用嗜氧瓶采血，再用厌氧瓶采血。

采集样品所用材料的安全处置：

使用后的采血针、注射器针头等锐器物应当直接放入不能刺穿的利器盒内或毁型器内进行安全处置，禁止对使用后的一次性针头复帽，禁止用手直接接触使用过的针头、刀片等锐器物；注射器针筒、棉签等其他医疗废物放入黄色医疗废物袋中，医疗废物和生活垃圾分类收集存放。

消毒毁形后的医疗废物必须交给指定的医疗废物处理厂，不得擅自废弃。

一、临床化学、免疫检验样本

临床化学/免疫检验多用于非抗凝血样本，最好使用真空负压采血管。

样本采集主要注意事项有：

1、化学项目大多数需要空腹采静脉血，多个单项化学检测项目组合检验时一般可采1管血：

2、采血量视检查项目多少不同而异，通常为4.0-5.0ml;

3、多个组合检测项目同时采血时应按下列顺序采血：

血培养→无添加剂管→有添加剂管

有添加剂管的顺序为：

枸橼酸盐管（如凝血四项、血沉等）→肝素管（如血流变）→EDTA管（如血常规）→草酸盐/氟化钠管

4、不论是抗凝血还是非抗凝血，为了缩短血清或血浆与红细胞的接触时间，血液样本收集后，须尽可能早的将血清或血浆从全血中分离出来，避免由此而影响检验结果的准确性。

从血液样本采集开始，必须在2h内将全血处理为血清或血浆。

1）血清（非抗凝血）：

采血后样本于22-25℃（室温）15-30min后可自行（自发）完全凝固禁用木棍和玻璃等玻璃凝块：

冷藏样本凝集较慢，加促凝剂者凝集加快。

2）血浆（抗凝血）：

应采用抗凝管采血，采血后立即颠倒混合5-10次，采血后数分钟内可离心分离血浆。

3）冷藏样本：

用于稳定血液中温度依赖性成分（抑制细胞代谢）的检测项目，样本于2-8℃冷藏（样本采集后立即置于冰箱中，冷藏必须充分）；样本需冷藏的测定项目有：

儿茶酚胺、胃泌素、甲旁素、PH/血气、NH3、乳酸、丙酮酸等。

全血样本一般不冷藏，血钾测定样本冷藏不得＞2h。

全血样本切记冷冻。

4）代谢抑制剂和防腐剂的应用：

用于抑制细胞代谢。

血样本中加入氟化钠后，血细胞未分离情况下血样本中GLU，22-25℃稳定24h,2-8℃稳定48h；氟化钠不适用于新生儿及儿童的GLU测定（因儿童PCV高，细胞糖酵解难以控制）；氟化钠-麝香草酚混合剂不适合酶学检测（因氟化钠-麝香草酚混合剂抑制酶活性）；甲醛草酸钾抗凝保存剂不适应于血糖测定。

二、红细胞沉降率（血沉，ESR）检测样本

静脉采集枸橼酸钠抗凝血，黑帽管

采血注意事项：

1、单独采1管血，准确采血至两个刻度线之间（抗凝剂：

全血=1:

4）

2、采血后立即上下颠倒混合5-10次

3、采血后应尽快送检（必须2h内检测）

三、血常规（全血细胞分析）检验样本

一般用EDTA1.5-2.2mg/ml抗凝，紫帽管

采血注意事项：

1、采血后立即上下颠倒混匀，5-10次，不可用力震荡：

2、应按抗凝管刻度采血至2ml，可不用空腹；

3、采血后应尽快送检（需显微镜观察形态的样本采血后应及时推片固定，因为超过2小时时WBC形态会发生改变）；

4、血型、网织红细胞计数与血常规可采1管血。

四、75克葡萄糖耐量试验（OGTT）/胰岛素释放试验、C-肽释放试验

1、病人准备：

试验前3日，每日进食碳水化合物量不低于250-300克，且维持正常活动，影响实验的药物（如：

咖啡因、口服避孕药、水杨酸盐等）应在3日前停用，试验前病人应10-16小时不进食。

2、标本采集：

临床上常用方法是清晨抽空腹血后，口服75克葡萄糖，再于给糖后1、2、3小时各采血2ml/1次（共4次）。

3、标本保存：

采血后1小时内分离血清并及时冷藏送检。

4、注意事项：

胰岛素测定受溶血影响较大，采血时应避免溶血。

尿液常规检验采集

尿标本种类

按检查目的，常可用下列标本：

1、晨尿：

最好，安静状态下留取清晨第一次尿，该标本为浓缩尿。

其细胞、管型等形态完整，适合做各种有型成分的检查和尿蛋白、尿糖等项目的测定。

2、随机尿：

较常用，适用于门诊和急诊人常规检验。

结果易受多种因素影响。

3、空腹或餐后尿：

适用于糖尿病、尿胆原、尿蛋白等的检查。

4、24h尿:

用于尿液成分定量检查分析，需准确量取24小时混合尿液的量。

1）24h尿采集方法：

留尿当日早晨8时排空尿液，之后每次排尿均收集与一大容器内。

至次日早晨8时最后一次尿液共24小时之间的所有尿液全部收集与洁净容器内。

在收集期内每次尿液标本均应放冰箱（2℃-8℃）或阴凉处保存。

全部收集完毕测量并记录24h总尿量，混匀后取20-30毫升置于有盖容器内送检即可。

2）24h尿可用于检测Cr、Bun、K、Na、CL、Ca、蛋白、UA、P等。

5、特殊实验尿（如3h、8h、12h等计时尿和餐后尿等），则应按医嘱要求进行留尿，并注明用药时间，便于分析对比。

6、清洁尿（中段尿、导管尿、膀胱穿刺尿）：

用于病原微生物培养、鉴定和药敏。

、

尿液标本收集容器要求

1、清洁、干燥、有盖、便于标记和转送、一次性使用，有较大开口便于收集；

2、避免阴道分泌物、精液、粪便等污染，还应注意避免烟灰、纸屑等异物混入；

3、无干扰化学物质（如表面活性剂、消毒剂）混入，不可使用未经洗涤的装药物或试剂的器皿收集标本；

4、能收集足够尿液，最好大于50ml，如收集定时尿，容器应足够大，并加盖，必要时加防腐剂；

5、如需培养应在无菌条件下，用无菌容器收集中段尿液。

尿液采集方法

尿液常规检查标本应按照以下原则进行采集：

1、尿液检验最好留取新鲜标本及时检查，否则尿液生长细菌，使其中的化学成分发生变化。

新鲜晨尿最佳，以清晨第一次尿为宜，较浓缩，条件恒定，便于对比。

门、急诊患者亦可随即留取。

在留取24h小时或12h尿液时，尿液标本最好至冰箱保存，也可根据检测目的加入防腐剂。

2、尿标本的采集方法多采用自然排尿法，需要注意避免阴道分泌物、精液、粪便等污染；对自然排尿困难或需细菌培养者，可在无菌操作下用导尿法或膀胱穿刺法采集。

3、尿中某些化学物质及有形成分不稳定，一经排出后易发生物理、化学变化；而原尿中原有或污染的细菌生长也可导致成分改变，如葡萄糖被分解。

因此，采集的尿应加盖后就尽快送检，在采集后2h内完成有关检查。

4、如不能及时送检或收集较长时段尿样，可采取化学防腐（不能用于微生物检查）、冷藏等保存措施；尿液标本冰箱可保存6-8h，但细胞等有形成分会有破坏，会有结晶析出。

5、根据不同检测目的选择不同的防腐剂：

临床最多的尿液防腐剂为：

1）甲醛，用于尿液有形成分检查，浓度为400mg/L尿液，即40%；

2）甲苯，常用于尿糖和尿蛋白等化学成分的定性或定量检查，5-20ml/L尿液；

3）浓盐酸，用于定量测定尿醛固酮、儿茶酚胺等，浓度为1ml/L尿液。

6、沉渣检查：

清晨空腹第一次尿，应在1h内送检。

标本置于干燥、洁净的容器尿杯中，至少10ml。

一般情况下，由患者自己采集中段尿。

女性患者应清洗外阴部后留取。

7、特殊实验外，晨尿或随机尿要留取中段尿送检，女性在经期不宜做尿液检查。

尿液采集注意事项

1、尿液标本必须新鲜，并按要求留取。

从排出到检测应在2h内完成，否则会影响尿化学成分及有形物质的改变。

如不能及时分析，应置4℃下冷藏保存，但冷藏时间最长不得超过8h。

有时冷藏后一些结晶析出会影响结果，因此从冰箱取出的尿标本应在室温中放置一定时间，使尿标本温度平衡到温室后再进行混匀，然后取样检测。

尿标本不能冰冻，否则会影响某些成分的检测。

如无特殊要求，均应采集清晨起床的第一次尿，即晨尿检查。

对于门诊和急诊的患者，可采集随即尿，易受食物、体位、活动等的影响。

2、标本留取后应及时送检，以免细菌繁殖、细胞溶解或被污染等。

送检标本时要置于有盖容器内，以免尿液蒸发影响检测结果。

3、常规检验留取中段尿送送检。

细菌检验尿标本留取方法见后述。

4、特殊检验项目标本留取请随时与检验科联系。

5、尿总蛋白测定注意避免血红蛋白的污染，否则会使尿总蛋白假性升高；尿液中如含有免疫球蛋白链会使蛋白假性降低；应用多肽类药物治疗的病人，血液中的多肽会排泄入尿，可导致尿蛋白假性升高，如怀疑尿中有成分，建议将尿液浓缩后作蛋白电泳。

粪便常规检验标本采集

粪便常规检查标本采集方法及注意事项

1、采集粪便标本的方法因检查目的不同而有差别，一般检验留取新鲜的自然排出的粪便3-5g,必要时可肛拭子采取，放入干燥、清洁、无吸水性的有盖容器内，贴好标识送检。

标本容器最好用内层涂蜡的硬纸盒便于检查后焚毁。

细菌检查的粪便标本应收集于灭菌封口的容器内，勿混入消毒剂及其他化学药品。

2、盛粪便标本的容器必须有盖，有明显标识。

要选取粪便的脓、血、黏液等异常成分进行检查，表面无异常时应从粪便表面、深处及粪便多处取材；采取标本后及时送检否则可因PH及消化酶等影响，而使粪便中细胞成分破坏分解。

3、不应留取尿壶或便盆中的粪便标本。

若标本中混入尿液，可导致某些项目检测结果出现错误。

粪便标本中也不可混入植物、泥土、污水等异物，易混淆实验结果。

不应该从卫生裤或衣裤、纸尿裤等物品上留取标本，不能用棉签有棉絮端挑取标本。

4、做大便隐血试验时，应嘱患者于检查前3d内禁食肉类、含动物血的食物、某些蔬菜，禁服铁剂和维生素C等对实验有干扰作用的药物。

选取外表及内层粪便收集于合格容器内及时送检，长时间放置可使反应的敏感度降低。

5、检验蛲虫卵需用透明塑料薄膜于半夜12pm或早晨排便前，于肛门周围皱襞处拭取标本，并立即送检。

6、检查血吸虫卵时应取黏液、脓、血部分，如须孵化毛蚴应留取不少于30g的粪便，并尽快送检，必要时留取整份粪便送检。

7、检查痢疾阿米巴滋养体时，应床边留取新排出的粪便，从脓血和稀软部分取材，并立即保温送实验室，并且实验室接收标本后应立即进行检查。

8、细菌检查用标本应全部用无菌操作收集于灭菌封口的容器内。

特殊检验项目留取标本时请预先联系。

浆膜腔积液检验标本采集

浆膜腔积液检查标本

1、浆膜腔积液标本一般由临床医生行无菌穿刺术采集标本。

2、送检标本量：

理学检查、化学检查、细胞学检查各留取2ml；细菌学检查用无菌管采集标本，厌氧菌培养留取1ml，结核菌检查留取10ml。

3、标本采集后必须立即送检（否则可出现细胞变性，标本凝集，细菌溶解）。

4、用于细胞学检查时，可在标本中加适量的EDTA-2K盐抗凝。

但还需留取1管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性；化学检查标本宜用肝素抗凝。

脑脊液标本采集

1、由临床医师行腰椎穿刺术采集标本。

2、采集后的脑脊液分别收集于3个无菌试管中，每管1-2ml，第一管做细菌培养，第二管做化学分析和免疫学检查，第三管做一般性状及显微镜检查（脑脊液常规）。

3、标本必须立即送检，放置过久影响结果，如细胞破坏、变性或细胞包裹于纤维蛋白凝块中，使细胞计数降低，分类不准确等；存放的脑脊液葡萄糖会分解，使检测结果降低。

胸、腹水标本采集

1、有临床医师行无菌穿刺术，最好留取中段液体于消毒容器内，立即送检。

2.为防止出现凝块、细胞变性、细菌破坏自溶等，标本中应加入抗凝剂。

常规及细胞学检查宜用EDTA-2K抗凝，生化检查标本宜用肝素抗凝。

3、胸、腹水常规检测需采集两管各10ml,一管抗凝，另一管不抗凝。

关节腔穿刺液

标本采集后第1管作微生物及一般性状检查，第2管用肝素抗凝作细胞学及化学检查。

前列腺和精液检查

前列腺液标本应由临床医师进行前列腺按摩术采集，可直接滴在玻片上；若按摩不出前列腺液，可检查按摩后的尿液。

疑为前列腺结核、脓肿或肿瘤的患者禁忌前列腺按摩。

一次按摩失败或检查结果阴性，而明确有临床指征者，可隔3—5天后重新复查。

精液采集最好在实验室附近，室温应控制在20-35℃，采集标本前禁欲3-7天，采集精液前排净尿液。

可用手淫法或其他方法，将一次射出的全部精液直接排入洁净、干燥的容器内。

因精子生成日间变动较大，不能仅凭一次检查结果做诊断。

一般应间隔1-2周检查一次，连续检查2-3次。

细菌培养之脑脊液、胸腹水穿刺液、关节腔穿刺液标本采集

1、应在用药前采集，由临床医生以无菌条件下进行腰椎穿刺采集脑脊液3-5ml，因脑膜炎球菌易自溶，流感嗜血杆菌也易死亡，故盛于无菌试管或小瓶中保温立即送检。

或将脑脊液5ml直接注射于血培养儿童瓶中送检即可。

2、穿刺液包括胸水、腹水、心包液、关节液及鞘膜液。

一般由临床医生穿刺抽取。

标本的采集应在患者用药之前，或停药1-2天后进行。

胸水、腹水可抽取5-10ml，心包液、关节可抽取2-5ml,将所得穿刺液分盛于含有和不含有抗凝剂的无菌试管或小瓶中，充分混匀后，立即送检。

微生物检验标本采集

微生物学检验标本的正确采集、运送及处理，与细菌的培养、鉴定结果有十分密切的关系；对可疑烈性呼吸道传染病患者采集标本时，必须按国家规范化要求严格注意生物安全；医生、护士、检验人员均应重视微生物检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣传和指导。

微生物学检验标本采集、运送、验收和处理事项

1、标本采集

1）申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、病历号、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室能够合理选择培养环境和培养基；

2）尽量在抗生素应用前采集标本，以提高阳性检出率和避免漏检；

3）标本采集应严格执行无菌操作；

4）咽拭、肛拭、伤口拭子等拭子标本，应插入运送培养基送检；

5）痰、尿液、伤口拭子等混有正常菌群的标本，不可放入肉汤培养基内送检；

6）采集标本的容器必须经灭菌处理，但不可用消毒剂。

2、标本运送

1）标本采集后应尽快送到微生物实验室；

2）标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，可视为不合格样本。

3、注意事项

1）微生物检验样本必须按要求采集转运，否则将影响检查结果，并给评价其意义带来麻烦甚至误导。

2）微生物样本极易被污染，污染的样本杂菌大量繁殖抑制病原菌生长，条件致病菌也是致病菌，如污染条件致病菌将误导临床，造成对患者的损害以及经济和时间的浪费。

3）某些标本离体极易死亡，应在床边采取和接种或立即保温送至实验室检验。

室温放置或延迟送检，可使检出的阳性率降低；不能使用冷藏的样本检验。

微生物检验标本采集和处理

1、尿液标本采集和处理

通常留取晨起第一次尿液；尿液采集后要及时送检，并保证2h内接种；不能及时送检和接种时，尿液应置4-8℃冰箱保存；冷藏标本应于8h内接种；淋球菌培养的标本不能冷藏。

怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2w左右采集尿液，怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2w采集尿液，上述时间此时阳性率高。

尿液微生物学检验标本采集方法如下：

1）中段尿采集法：

成年男性和女性分别用肥皂水或1：

1000高锰酸钾水溶液清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水冲洗尿道口，无菌生理盐水冲去消毒液，然后排尿弃去前段尿液，收集中段尿5-10ml盛于带盖的无菌容器内送检。

2）导尿法：

用导尿管导取10-15ml尿液，置灭菌容器内送检；长期留置导尿管者应更换新导尿管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检。

3）集尿法：

怀疑结核分枝杆菌感染时，于清洁容器内留取24h尿液，取其沉渣10-15ml送检。

4）耻骨上膀胱穿刺法：

培养结果与临床病情矛盾时可采取此法，一般较少用。

5）肾盂尿采集法：

必须由临床医生采集

注意事项：

正常人的尿液是无菌的，除外尿道有正常菌群外，还有条件致病菌，而这些细菌又是尿路感染中常见的致病菌，故应该注意无菌采集。

2、粪便标本采集和处理

1）采集时间

1腹泻患者于急性期，尽量在用药前采集粪便；

2伤寒患者于发病2w以后采集粪便

3怀疑霍乱时立即采集粪便送检。

2）采集方法：

1自然排便法：

取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2～3g或1～2ml,盛无菌容器内或置于保存液或增菌液内送检;若疑似霍乱者应置于碱性蛋白胨水中（ph8.6）。

2直肠拭子法：

难以获得粪便或排便困难患者及幼儿可采用此法，将拭子前端用无菌甘油或生理盐水湿润，然后插入肛门约４～５ｃｍ（幼儿２－３ｃｍ），轻轻在直肠内旋转。

擦取直肠表面黏液后取出，盛于无菌试管中或保存液中送检。

３、痰及下呼吸道标本采集和处理

1）自然咳痰法：

①晨痰为佳;②先冷开水洗漱、清洁、口腔和牙齿；③再用力咳出呼吸道深部的痰，吐至无菌容器内；④痰量不得少于1ml；⑤痰咳出困难时可先雾化吸入NaCl溶液使痰容易咳出。

查结核分枝杆菌，应留取24小时痰。

2）小儿取痰法：

用弯压舌板向后压舌，将拭子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在拭子上即可送检。

3）支气管镜、支气管穿刺、支气管肺胞灌洗等采集法，此采集法必须由医生操作。

①气管导管法：

气管插管吸取下呼吸道痰液。

②气管镜采集法：

用气管镜在肺内病灶附近用导管吸取或用支气管刷直接取得。

4）呼吸道标本采集方法：

鼻咽拭子法，先用清水漱口，对光做，头向上仰，口张大，用压舌板轻压舌根，用棉拭子在病人咽后壁，悬雍垂后侧涂抹数次，立即放入无菌试管中。

注意事项：

痰经过口腔，所以患者应用清水漱口数次，尽量排除口腔内的大量杂菌。

痰液标本要求涂片镜检，达到低倍镜视野中≤10个鳞状上皮细胞，以及≥25个白细胞方可送检。

4、血液及骨髓培养标本

1）血培养标本采集指征：

对入院的危重患者未进行系统性抗生素治疗前，应及时进行血培养，患者出