生物化学实验报告137030032.docx
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生物化学实验报告137030032
孝感学院生命科学技术学院实验报告
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实验二油脂酸价的测定
一、目的与要求
初步掌握测定油脂酸价的原理和方法；了解测定油脂酸价的意义。
二、实验原理
油脂在空气中暴露过久，部分油脂会被水解产生游离脂肪酸和醛等物质，并且这些物质具有刺激性气味，使油脂产生酸价。
酸败的程度使以水解产生的游离脂肪酸的多少为指标的，常以酸价或者是酸值来表示。
同一油脂若酸价高，则说明水解产生的游离脂肪酸就多。
酸价是指中和1g油脂中游离脂肪酸所需的氢氧化钾的毫克数。
酸价越高，油脂的质量也越差。
三、主要仪器、实验材料和试剂
1.锥形瓶（250mL）3个；2.量筒（50mL）1支；3.碱式滴定管1支；4.花生油、菜油、芝麻油等；5.乙醇-乙醚混合液（1:
1,V/V）；6.0.1％KOH（1克KOH溶于1000mL纯水中）。
四、操作步骤
1.准确称取1~2g油脂于250mL锥形瓶中。
2.在瓶内加入乙醇－乙醚混合液50mL，充分振荡，使油脂样品完全溶解成透明溶液。
待油样完全溶解后，加入1％酚酞指示剂3～5滴，立即用0.1％KOH标准溶液滴定至溶液成微红色（放置30S内不褪色）为终点，并记录用去的KOH的体积，并按下式进行计算。
酸价＝2（V2-V1）/W
V2：
滴定油样时耗用氢氧化钾溶液的毫升数
V1：
滴定空白对照耗用氢氧化钾溶液的毫升数
W：
油样重（g）
注：
滴定过程中如出现混浊或分层，表明由碱液带进水过多，乙醇量不足以使乙醚与碱溶液互溶。
一旦出现此现象，可补加乙醇，促使均一相体系的形成。
五、实验结果
油脂名称
起始刻度
终点刻度
体积（mL）
酸价
备注
空白对照
六、思考题
请对你的实验结果进行分析。
批阅教师：
年月日
孝感学院生命科学技术学院实验报告
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实验三蛋白质的提取及浓度测定（紫外吸收法）
一、目的与要求
掌握蛋白质的提取方法；学习紫外分光光度法测定蛋白质含量的原理；熟练掌握紫外分光光度计的使用方法。
二、实验原理
大部分蛋白质都可溶于水、稀盐、稀酸或碱溶液，少数与脂类结合的蛋白质则溶于乙醇、丙酮、丁醇等有机溶剂中，因些，可采用不同溶剂提取分离和纯化蛋白质及酶。
由于蛋白质中存在着含有共轭双键的酪氨酸和色氨酸，因此蛋白质具有吸收紫外光的性质，最大吸收峰在280nm波长处。
在此波长范围内，蛋白质溶液的光密度OD280nm与其浓度呈正比关系，可作定量测定。
三、实验材料、主要仪器和试剂
1.试验材料：
萌发3天的小麦种子
2.主要仪器
（1）紫外分光光度计，
（2）离心机（3）试管与试管架，（4）刻度吸量管（5）研钵（6）100mL容量瓶
3．试剂：
标准牛血清蛋白溶液：
准确称取经凯氏定氮法校正的结晶牛血清蛋白，配制成浓度为1mg/mL（0.5克标准牛血清蛋白纯水定容至500mL）的溶液。
四、操作步骤
1．蛋白质（淀粉酶）的提取
称取1g萌发3天的小麦种子（芽长约1cm），置于研钵中，加入少量石英砂和2mL蒸馏水，研磨匀浆。
将匀浆倒入离心管中，用6mL蒸馏水分次将残渣洗入离心管。
提取液在室温下放置提取15～20min，每隔数分钟搅动1次，使其充分提取。
然后在3,000r/min转速下离心10min，将上清液倒入100mL容量瓶中，加蒸馏水定容至刻度，摇匀，即为蛋白质原液，用于蛋白质浓度的测定。
2.标准曲线制作
按表1分别向每支试管内加入各种试剂，混匀。
以光程为1cm的石英比色杯，在280nm波长处测定各管溶液的光密度值OD280nm。
以蛋白质浓度为横坐标，光密度值为纵坐标，绘出标准曲线。
批阅教师：
年月日
表1蛋白质标准曲线制作
管号
标准蛋白质溶液（mL）
蒸馏水（mL）
蛋白质浓度（mg/mL）
OD280nm
1
0
4
0
2
0.5
3.5
0.125
3
1.0
3.0
0.25
4
1.5
2.5
0.375
5
2.0
2.0
0.50
6
2.5
1.5
0.625
7
3.0
1.0
0.75
8
4.0
0
1.0
3.样品测定
取提取的蛋白质溶液，按上述方法测定280nm的光密度，并从标准工作曲线上查出提取蛋白质溶液的浓度。
若提取蛋白质溶液的浓度大于2.0，超出测量范围，则稀释后再测，计算蛋白质浓度时乘以稀释倍数。
蛋白质浓度=
五、思考题
1.为何要在280nm波长下测定蛋白质浓度？
在其它波长下测定可以吗？
2.如果考虑核酸的存在，蛋白质浓度的实际的值比测量值是大还是小？
为什么？
孝感学院生命科学技术学院实验报告
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实验四淀粉酶活力的测定
一、目的与要求
学习和掌握测定淀粉酶（包括α-淀粉酶和β-淀粉酶）活力的原理和方法。
二、实验原理
淀粉是植物最主要的贮藏多糖，也是人和动物的重要食物和发酵工业的基本原料。
淀粉经淀粉酶作用后生成葡萄糖、麦芽糖等小分子物质而被机体利用。
淀粉酶主要包括α-淀粉酶和β-淀粉酶两种。
α-淀粉酶可随机地作用于淀粉中的α-1,4-糖苷键，生成葡萄糖、麦芽糖、麦芽三糖、糊精等还原糖，同时使淀粉的粘度降低，因此又称为液化酶。
β-淀粉酶可从淀粉的非还原性末端进行水解，每次水解下一分子麦芽糖，又被称为糖化酶。
淀粉酶催化产生的这些还原糖能使3,5-二硝基水杨酸还原，生成棕红色的3-氨基-5-硝基水杨酸。
淀粉酶活力的大小与产生的还原糖的量成正比。
用标准浓度的麦芽糖溶液制作标准曲线，用比色法测定淀粉酶作用于淀粉后生成的还原糖的量，以单位重量样品在一定时间内生成的麦芽糖的量表示酶活力。
淀粉酶存在于几乎所有植物中，特别是萌发后的禾谷类种子，淀粉酶活力最强，其中主要是α-淀粉酶和β-淀粉酶。
两种淀粉酶特性不同，α-淀粉酶不耐酸，在pH3.6以下迅速钝化。
β-淀粉酶不耐热，在70℃15min钝化。
根据它们的这种特性，在测定活力时钝化其中之一，就可测出另一种淀粉酶的活力。
本实验采用加热的方法钝化β-淀粉酶，测出α-淀粉酶的活力。
在非钝化条件下测定淀粉酶总活力（α-淀粉酶活力+β-淀粉酶活力），再减去α-淀粉酶的活力，就可求出β-淀粉酶的活力。
三、实验材料、主要仪器和试剂
1．实验材料
萌发的小麦种子（芽长约1cm）
2．仪器
（1）离心机
（2）离心管（3）研钵（4）电炉（5）容量瓶：
50mL×1,100mL×1
（6）恒温水浴（7）20mL具塞刻度试管×13（8）试管架（9）刻度吸管：
2mL×3,1mL×2,10mL×1（10）分光光度计
3．试剂（均为分析纯）
（1）标准麦芽糖溶液（1mg/mL）：
精确称取100mg麦芽糖，用蒸馏水溶解并定容至100mL。
（2）3,5-二硝基水杨酸试剂：
精确称取3,5-二硝基水杨酸1g，溶于20mL2mol/LNaOH溶液中，加入50mL蒸馏水，再加入30g酒石酸钾钠，待溶解后用蒸馏水定容至100mL。
盖紧瓶塞，勿使CO2进入。
若溶液混浊可过滤后使用。
（3）0.1mol/LpH5.6的柠檬酸缓冲液
A液：
（0.1mol/L柠檬酸）：
称取C6H8O7·H2O21.01g，用蒸馏水溶解并定容至1L。
B液：
（0.1mol/L柠檬酸钠）：
称取Na3C6H5O7·2H2O29.41g，用蒸馏水溶解并定容至1L。
取A液55mL与B液145mL混匀，既为0.1mol/LpH5.6的柠檬酸缓冲液。
（4）1%淀粉溶液：
称取1g淀粉溶于100mL0.1mol/LpH5.6的柠檬酸缓冲液中。
批阅教师：
年月日
四、操作步骤
1．麦芽糖标准曲线的制作
取7支干净的具塞刻度试管，编号，按表1加入试剂：
表1麦芽糖标准曲线制作
试剂
管号
1
2
3
4
5
6
7
麦芽糖标准液（mL）
0
0.2
0.6
1.0
1.4
1.8
2.0
蒸馏水（mL）
2.0
1.8
1.4
1.0
0.6
0.2
0
麦芽糖含量（mg）
0
0.2
0.6
1.0
1.4
1.8
2.0
3,5-二硝基水杨酸（mL）
2.0
2.0
2.0
2.0
2.0
2.0
2.0
吸光度值
摇匀，置沸水浴中煮沸5min。
取出后流水冷却，加蒸馏水定容至20mL。
以1号管作为空白调零点，在540nm波长下比色测定光密度。
以麦芽糖含量为横坐标，光密度为纵坐标，绘制标准曲线。
2．淀粉酶液的制备
称取1g萌发3天的小麦种子（芽长约1cm），置于研钵中，加入少量石英砂和2mL蒸馏水，研磨匀浆。
将匀浆倒入离心管中，用6mL蒸馏水分次将残渣洗入离心管。
提取液在室温下放置提取15～20min，每隔数分钟搅动1次，使其充分提取。
然后在3000r/min转速下离心10min，将上清液倒入100mL容量瓶中，加蒸馏水定容至刻度，摇匀，即为淀粉酶原液，用于α-淀粉酶活力测定。
吸取上述淀粉酶原液10mL，放入50mL容量瓶中，用蒸馏水定容至刻度，摇匀，即为淀粉酶稀释液，用于淀粉酶总活力的测定。
3．酶活力的测定：
取6支干净的试管，编号，按表2进行操作。
表2酶活力测定取样表
操作项目α淀粉酶活力测定α＋β-淀粉酶活力测定
Ⅰ-1Ⅰ-2Ⅰ-3Ⅱ-4Ⅱ-5Ⅱ-6
淀粉酶原液（mL）1.01.01.0000
钝化β-淀粉酶置70℃水浴15min，冷却
淀粉酶稀释液（mL）0001.01.01.0
3,5-二硝基水杨酸（mL）2.0002.00.0
预保温将各试管和1%淀粉溶液分别置于40℃恒温水浴中保温10min
1%淀粉溶液（mL）1.01.01.01.01.01.0
保温在40℃恒温水浴中准确保温5min
3,5-二硝基水杨酸（mL）02.02.002.02.0
将各试管摇匀，置沸水浴中煮沸5min。
取出后流水冷却，加蒸馏水定容至20mL。
以1号管（做标准曲线时用过的）作为空白调零点，在540nm波长下比色测定光密度，记录测定结果。
管号
Ⅰ-1
Ⅰ-2
Ⅰ-3
Ⅱ-4
Ⅱ-5
Ⅱ-6
吸光度
麦芽糖含量
五、结果计算
计算Ⅰ-2、Ⅰ-3光密度平均值与Ⅰ-1光密度之差，在标准曲线上查出相应的麦芽糖含量（mg），按下列公式计算α-淀粉酶的活力。
＝
计算Ⅱ-5、Ⅱ-6光密度平均值与Ⅱ-4光密度之差，在标准曲线上查出相应的麦芽糖含量（mg），按下式计算（α＋β）淀粉酶总活力（单位同上）。
（α＋β）淀粉酶总活力
＝
β-淀粉酶活力＝（α＋β）淀粉酶总活力－α-淀粉酶活力＝
六、思考题
1．为什么要将Ⅰ-1、Ⅰ-2、Ⅰ-3号试管中的淀粉酶原液置70℃水浴中保温15min？
2．为什么要将各试管中的淀粉酶原液和1%淀粉溶液分别置于40℃水浴中保温？
孝感学院生命科学技术学院实验报告
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实验五 醋酸纤维薄膜电泳法分离血清蛋白质
一、目的
学习醋酸纤维薄膜电泳的操作，了解电泳技术的一般原理。
二、原理
带电质点在电场中移动的现象称为电泳。
电泳有很多类型，如，纸电泳、醋酸纤维薄膜电泳、纤维素或淀粉粉末电泳、淀粉凝胶电泳、琼脂糖凝胶电泳、聚丙烯酰胺凝胶电泳等。
任何一种物质的质点，由于其本身在溶液中的解离或由于其表面对其他带电质点的吸附，会在电场中向一定的电极移动。
例如，氨基酸、蛋白质、酶、激素、核酸及其衍生物等物质都具有许多可解离的酸性和碱性基团，它们在溶液中会解离而带电。
不同的质点在同一电场中泳动速度不同，据此可将不同带电物质分开。
醋酸纤维薄膜电泳是用醋酸纤维薄膜作为支持物的电泳方法。
醋酸纤维薄膜由二乙酸纤维素制成，它具有均一的泡沫样的结构，厚度仅120微米，有强渗透性，对分子移动无阻力，作为区带电泳的支持物进行蛋白电泳有简便、快速、样品用量少、应用范围广、分离清晰、没有吸附现象等优点。
目前已广泛用于血清蛋白、脂蛋白、血红蛋白和同功酶的分离及用在免疫电泳中。
三、器材及试剂
1．器材：
①醋酸纤维薄膜（2×8cm）
⑥玻璃板
②常压电泳仪
⑦竹镊
③点样器（盖玻片）
⑧白磁反应板
④培养皿（染色及漂洗用）
⑨人血清或鸡血清
⑤粗滤纸
2．试剂：
①巴比妥缓冲液（PH8.6）：
巴比妥2.76克，巴比妥纳15.45克，加水至1000毫升。
②染色液：
氨基黑10B0.25克，甲醇50毫升，冰醋酸10毫升，水40毫升（可重复用）。
③漂洗液：
含甲醇或乙醇45毫升，冰醋酸5毫升，水50毫升。
④透明液：
含无水乙醇7份，冰醋酸3份。
四、操作步骤
1．浸泡：
用镊子取醋酸纤维薄膜1张（识别出光泽面与无光泽面，并在无光泽面角上用铅笔做上记号）放在缓冲液中浸泡20分钟。
2．点样：
把膜条从缓冲液中取出，夹在两层粗滤纸内吸干多余的液体，然后平铺在玻璃板上（无光泽面朝上），将点样器先在白磁板上的血清中沾一下，再在膜条一端2—3厘米处轻轻地水平落下并随即提起，这样即在膜条上点上了细条状的血清样品。
批阅教师：
年月日
+
膜条
样品
3．电泳：
在电泳槽内加入缓冲液，使两个电极槽内的液面等高，将膜条平悬于电泳槽支架的滤纸桥上。
（先剪裁尺寸合适的滤纸条，取双层滤纸条附着在电泳槽的支架上，使它的一端与支架的前沿对齐，而另一端浸入电极槽的缓冲液内。
用缓冲液将滤纸全部润湿并驱除气泡，使滤纸紧贴在支架上，即为滤纸桥。
它是联系醋酸纤维薄膜和两极缓冲液之间的“桥梁”。
）膜条上点样的一端靠近负极。
盖严电泳室。
通电。
调节电压至160V，电流强度0.4—0.7毫安/厘米膜宽，电泳时间约为60分钟。
4．染色：
电泳完毕后将膜条取下并放在染色液中浸泡10分钟。
5．漂洗：
将膜条从染色液中取出，置漂洗液中漂洗数次至无蛋白区底色脱净为止，可得色带
清晰的电泳图谱。
6．定量（了解）：
有两种方法
（1）将上述漂净的薄膜用滤纸吸干，剪下各种蛋白质色带，分别浸于4.0ml0.4mol·L-1NaOH溶液中（37℃）5—10分钟，色泽浸出后，比色（590nm）。
设各部分的光密度分别为：
OD白、ODα1、ODα2、ODβ、ODγ。
则光密度总和（OD总）为：
OD总=OD白+ODα1+ODα2+ODβ+ODγ
白蛋白%=
×100α1球蛋白%=
×100α2球蛋白%=
×100
β球蛋白%=
×100γ球蛋白%=
×100
（2）把薄膜放在滤纸上用电吹风吹干，待薄膜完全干燥后，浸入透明液中约5—10分钟，取出，平贴于干净玻璃片上，自然干燥或用电吹风冷风吹干，即得背景透明的电泳图谱，可用刀片刮开并从玻板上取下图谱。
能用光密度计测定各蛋白斑点。
此图谱可长期保存。
五、思考题
1．点样端为何放在负极？
2．实验中应注意哪些事项？
孝感学院生命科学技术学院实验报告
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实验六氨基酸的分离鉴定――纸层析法
一、实验目的
通过氨基酸的分离，学习纸层析法的基本原理及操作方法。
二、实验原理
纸层析法是用滤纸作为惰性支持物的分配层析法。
层析溶剂由有机溶剂和水组成。
物质被分离后在纸层析图谱上的位置是用Rf值（比移）来表示的：
Rf=原点到层析中心的距离/原点到容剂前沿的距离
在一定的条件下某种物质的Rf值是常数。
Rf值的大小与物质的结构、性质、溶剂系统、层析滤纸的质量和层析温度等因素有关。
本实验利用纸层析法分离氨基酸。
三、器材
1、层析缸2、毛细管3、喷雾器4、培养皿5、小烧杯6、长颈漏斗7、层析滤纸（新华一号）8、电吹风
四、试剂
1、扩展剂正丁醇:
88%甲酸:
水＝15:
2.5:
2.5（体积比），平衡溶剂与扩展剂相同。
每组配制40mL。
2、氨基酸溶液0．5％的赖氨酸、脯氨酸、缬氨酸、亮氨酸溶液及它们的混合液（各组份浓度均为0．5％）。
3、显色剂50～l00mL0.1％水合茚三酮正丁醇溶液。
五、操作
1．将盛有扩展剂10mL的小烧杯和培养皿置于密闭的层析缸中。
2．戴手套取层析滤纸（长22cm、宽14cm）一张。
在纸的一端距边缘2～3cm处用铅笔划一条直
线，在此直线上每间隔2.5cm作一记号。
3．点样：
用毛细管将各氨基酸样品分别点在这5个位置上，干后重复点一次，直径最大不超过3mm。
缝成筒状，两边不能接触。
点样面朝外，点样端朝下，盖上层析缸盖，平衡约10~30分钟。
4．展层 用长颈漏斗，扩展剂的液面需低于点样线1cm。
溶剂扩展至滤纸上沿约5厘米时，取出滤纸，用铅笔标出溶剂前沿界线，干燥。
5．显色 用0.1%茚三酮丙酮溶液均匀浸透，用热风吹干。
脯氨酸、羟脯氨酸产生黄色物质外，所有α－氨基酸及一切蛋白质都能和茚三酮产生兰紫色物质。
批阅教师：
年月日
6．计算各种氨基酸的Rf值。
六、实验结果
各种氨基酸的Rf值：
赖氨酸
脯氨酸
缬氨酸
苯丙氨酸
亮氨酸
Rf值
七、思考题
1.实验过程中切勿用手直接接触滤纸和显色剂，为什么？
2.点样过程中必须在第一滴样品干后再点第二滴，为什么？
孝感学院生命科学技术学院实验报告
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实验七基因组DNA的快速提取---碘化钾法
一、实验目的
了解碘化钾法提取动物组织基因组DNA的原理；掌握DNA提取的相关操作技术。
二、实验原理
快速、经济地从血液、组织或培养细胞中得到高产量、高纯度的DNA对于基因研究非常重要。
目前国内外基因组DNA的提取方法有传统的蛋白酶K消化法、尿素法、氯化锌法、辛酸法等，这些方法存在操作步骤繁杂或者使用蛋白酶，且国内许多实验室不易得到方法中使用的试剂。
高浓度碘化钾可直接将细胞膜、核膜破坏、使DNA释放出来，然后用异丙醇沉淀DNA。
实验表明，KI的浓度对DNA的提取效率有影响，5mol/L的KI提取DNA效果较好。
KI法操作简便，不用价格较高的蛋白酶K。
DNA丢失少。
该方法提取的DNA与经典的蛋白酶K法提取的DNA比较电泳结果基本一致。
三、实验材料、试剂及主要器材
1.实验材料
冷冻的新鲜动物肝脏。
2.试剂
氯仿/异戊醇（24∶1）:
异戊醇21mL加入到500mL的氯仿试剂瓶中，混匀；5mol/L碘化钾：
（41.5克碘化钾溶于50mL纯水中）；0.9%NaCl：
4.5克NaCl溶于500mL纯水中；无水乙醇。
3.主要器材
台式高速（冷冻）离心机、移液器（10,100，1000µL），旋涡混合器、Eppendorf管等。
四、实验步骤
1.取黄豆粒大小冷冻肝组织于EP管中（EP管上写上自己学号的最后两位数），有眼科剪捣碎；
2.加50µL5mol/LKI，旋涡振荡30s，静置3min；
3.加0.9%NaCl375µL，氯仿/异戊醇（24:
1）600µL，充分振荡10min，10000r/min离心5min；
4.吸取水相层（上清）于另一Ependorf管中，加-20度预冷乙醇1000µL，轻轻混匀（此时应能看到DNA的絮状沉淀），12000r/min离心5min弃上清；
5.加冷无水乙醇1000µL，12，000r/min离心3min弃净乙醇，待干（可在37℃烘干约10min）；以50µL无菌双蒸水溶解DNA，备用。
2.加50µL5mol/LKI，旋涡振荡30s，将沉淀物混匀3min；
3.加0.9%NaCl250µL，氯仿/异戊醇（24∶1）375µL，充分振荡10min，10000r/min离心5min；
4.吸取水相层（上清）于另一Ependorf管中，加-20度预冷乙醇（-20度）300µL，轻轻混匀（此时应能看到DNA的絮状沉淀），-20度冰箱静置5min后12000r/min离心5min弃上清；
批阅教师：
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5.加冷无水乙醇1000µL，12，000r/min离心3min弃净乙醇，待干（可在37℃烘干约10min）；以50µL无菌双蒸水溶解DNA，备用。
五、思考题
1）在DNA提取过程中乙醇的作用是什么？
为什么用-20度预冷的乙醇效果更好？
2）实验所用的EP管和枪头等需要高温灭菌吗，为什么？
孝感学院生命科学技术学院实验报告
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实验八琼脂糖凝胶电泳技术――DNA样品检测
一、实验目的
学习与掌握琼脂糖凝胶电泳的技术方法，利用琼脂糖凝胶电泳检测DNA含量以及分子量，分离不同大小DNA片段。
二、实验原理
琼脂糖凝胶电泳是以琼脂糖凝胶为支撑物的区带电泳。
不同大小、不同形状和不同构象的DNA分子在相同的电泳条件下（如凝胶浓度、电流、电压、缓冲液等），有不同的迁移率，所以可通过电泳使其分离。
凝胶中的DNA可与荧光染料溴化乙锭（EB）结合，在紫外灯下可看到荧光条带，籍此可分析实验结果。
三、试剂配制
1.5×TBE：
Tris54g；硼酸27.5g；0.5MEDTA（pH8.0）20mL；加双蒸水至1L。
用时5倍稀释。
2.EB：
用水配制成10mg/mL的贮存液，分装，避光，4℃保存（1g溴乙锭于100mL水中）。
3.6×加样buffer：
0.25%溴酚蓝；40%（W/V）蔗糖；溶于水中，贮存于4℃。
四、实验操作
1.胶模水平放置胶模。
2.制胶量取200mL1×TBE缓冲液倒入三角烧瓶中，称取1.6克琼脂糖加入，在微波炉上加热至全熔（清澈透明）。
凝胶加热时间不宜过长，以免蒸干。
3.倒胶用琼脂糖封好胶模，待凝胶冷至50℃左右时（手感容器能耐受），缓缓倒入制胶模中，迅速放好梳子。
凝胶的厚度在3～5mm之间。
避免产生气泡，尤其梳子周围不能有气泡，若有气泡，可用吸管小心吸去。
4.凝胶条件凝胶通常需要在室温中放置２0～30分钟。
5.电泳缓冲液凝胶完全凝固后，将凝胶放入电泳槽中（点样孔在负极），加入1×TBE电泳缓冲液，液面应高出凝胶表面1mm。
6.拔梳子小心移去梳子和隔离板，保持点样孔完整。
7.点样用移液器取1-2µL配制好的LoadingBuffer，分别与需要电泳的样品或Marker混合（5-10µL），点样，记录点样次序。
注意：
每次电泳每块胶需留一孔点DNAmarker。
加样时Tip头不必插入孔中，可对准加样孔，在孔的上方加样，样品会
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