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天然药物化学试验指导试验室注意事项doc

 

天然药物化学实验指导

 

室注意事⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯

(1)

一芦丁的提取分离与定

⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯

(2)

二艾叶及丁香中油的提取定

⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯

(5)

三从辣椒中分离色素

⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯

(7)

咖啡因的提取与分离

⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯

(8)

薯皂苷元的提取与分离

⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯(

10)

甘草皂苷元的提取与分离

⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯(

10)

自主⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯(

15)

 

实验室注意事项

 

天然药物化学实验课具有实验周期长、使用有机溶剂品种多,用量较大等特点,

所用的药品多数是挥发性、易燃、有毒、有腐蚀性、刺激性、实验操作经常在加温,减压下进行,需要使用各种热源和电器,再加上实验室较为拥挤,若操作不慎,易引起着火、触电、中毒、爆炸等事故,为确保实验安全顺利进行,特作如下要求。

一、实验前必须预习实验内容,了解实验原理和操作程序,检查仪器是否完整,

装置是否正确,检查合格后方可开始实验。

二、实验室内要保持严肃、安静,不得大声说话打闹;室内严禁吸烟,实验进行

时不得擅自离开,必要时委托专人看管。

三、未经教师允许不得擅自使用明火,需使用明火时,实验台周围不得放置易燃

有机溶剂,如发生火情,应保持镇静,立即报告指导教师,同时切断火源,移走易燃品!

用湿布闷盖或用灭火器进行灭火,切勿轻易用水,以免扩大火势。

四、实验时要做到整齐、清洁、用过的仪器要及时清洗并收人仪器柜内,保持水

槽、仪器、桌面、地面四洁。

五、回流、蒸馏有机溶剂时,注意检查冷凝水是否通畅,装置不得密闭,接收有机溶剂时不得使用广口仪器,溶剂瓶不得敞口存放。

在进行减压操作时,必须使用安全瓶,弄清操作程序,以免造成回水等事故。

六、使用挥发性试剂或喷显色剂时,应在窗口或通风橱内操作,不慎溅在桌面上

的化学药品必须立即清除。

身体直接接触化学物品后应及时用肥皂及大量水冲洗,如

碱性试剂可用l%HAc溶液冲洗,酸性试剂可用3%NaHCO3溶液冲洗。

不要用酒精、丙酮等洗涤皮肤上的有机物,以免增加皮肤对有毒物质的吸收,眼睛里溅入化学试剂

后,应立即用大量水冲洗,及时到校医室就诊。

七、使用电器设备(如水浴锅、紫外灯、旋转蒸发仪、循环水泵等)一定要按操作规程进行,不得在烘箱内干燥带有易燃性有机溶剂的仪器或物品,仪器发生故障时及时报告指导教师,不得擅自拆卸。

八、每次实验结果后的产品,应妥善包装好,贴好标签,写明级别、产率等,放入干燥器内保存,不得随意丢失。

九、实验结束后,值日生应做好实验室清洁卫生工作,整理好公共仪器、药品,检查水、电、门窗,经教师检查后方可离去。

 

1

 

实验一芦丁的提取分离与鉴定

 

一、实验目的

1、掌握碱-酸法提取黄酮类化合物的原理和操作。

2、掌握化学鉴别试验、苷水解、衍生物制备、熔点和薄层层析检查等手段在苷类结构鉴定中的应用。

二、黄酮类化合物的结构与性质

芦丁(Rutin)广泛存在于植物界中,现已发现的含芦丁植物至少在70种以上,

如烟叶,槐花米、荞麦和蒲公英中均含有,其中尤以槐花米(为植物Sophorujaponica的未开放的花蕾)和荞麦中含量最高,可作为大量提取芦丁的原料。

提取芦丁的方法很多,目前我国多采用碱提取-酸沉淀法,其提取原理是依据芦

丁结构中含有酚羟基,能与碱反应,生成盐而溶于水中,向此盐溶液中加入酸.则芦

丁游离析出,此外,还可采用水和醇提取法。

芦丁具有Vp样作用,有助于保持及恢复毛细血管的正常弹性。

主要用作防治高血压病的辅助治疗剂,多作口服,也可作注射用。

芦丁为淡黄色针晶,含三分子结晶水物的熔点174~178℃。

无水物熔点188~

190℃,微溶于乙酸乙酯、丙酮,不溶于苯、乙醚、氯仿、石油醚等溶剂。

溶解度情况见下表:

 

结构式如下:

OH

 

HOOOHOH

OH

O

OH

O

OH

OO

CH2

CH3

O

OH

OHOH

OH

OH

HOO

 

OH

OHO

芦丁

槲皮素

槲皮素为芦丁的苷元,含两分子结晶水物为黄色针晶(稀乙醇)

,于

95~97℃失

水,313~314℃分解,槲皮素可溶于甲醇、乙醇、丙酮、乙酸乙酯、吡啶,不溶于水、

 

2

 

乙醚、苯、氯仿、石油醚。

三、芦丁的提取分离和纯化

1、于500ml烧杯中加入水

300ml,硼砂1g

[1]加热至沸,投人槐花米粗粉

20g,

继续直火煮沸2~3分钟,在搅拌下小心加入石灰乳(

1gCaO+10ml蒸馏水),调PH

至8.5-9

[2]

,保持微沸30分钟,趁热滤。

2、将滤液放冷至室温,在

60~70℃下用浓盐酸调

PH至4

[]

3,静置6小时以上,

析出沉淀,抽滤,用蒸馏水洗沉淀

1~2次至中性。

所得沉淀为芦丁粗品。

3、重结晶,将沉淀悬浮于蒸馏水中,加热煮沸

15

分钟,趁热抽滤。

滤液充分静

置至不再析出沉淀,过滤,所得沉淀于

60~70℃干燥,得芦丁精制品。

注:

[1]加硼砂目的是因其能与芦丁结合,

起保护邻二羟基不被氧化破坏的作用,

实验证明提取时加入硼砂,产品质量要好些。

[2]加入石灰乳既可达到碱溶解提取芦丁的目的,又可除去槐花米中大量的多糖类粘液质,但pH不能过高,否则钙能与芦丁形成螯合物而沉淀析出,煮沸时间不可过长,因其可导致芦丁的降解。

[3]pH过低会使芦丁形成烊盐而降低收率。

[4]利用芦丁冷热水中溶解度差异来达到结晶目的。

得到的沉淀要粗称一下,按照芦丁在热水中1∶200的溶解度加蒸馏水进行重结晶。

四、芦丁的鉴定

1、芦丁的定性反应:

取芦丁3~4mg,加乙醇5~6ml使溶,分成3份,做下述试验:

 

(1)取上述溶液1~2rn|,加少许镁粉,再加2滴浓盐酸,注意观察颜色变化。

(2)取上述溶液1~2ml,滴加2%的ZrOCl2的乙醇溶液,注意观察颜色变化情况,

再加2%柠檬酸乙醇溶液,详细记录颜色变化情况

5

(3)α一萘酚反应(Molish'sReaction):

取上述溶液

1~2ml,然后加等体积的

10%α一茶酚乙醇溶液,摇匀,沿管壁滴加硫酸,注意观察两液界面产生的颜色变化。

注:

[5]在样品溶液中加入

2%ZrOCl2的乙醇溶液后,如溶液呈黄色示可能有

C3-OH或C5-OH,如再加入

2%柠檬酸乙醇溶液,黄色不褪示有C3-OH,如黄色褪去,

加水稀释后转为无色,示无

C3-OH,但有C5-OH。

(上述两种条件下生成的络合物对

酸的稳定性不同,其中

C3-OH、4一酮基络合物稳定性大于

C5-OH、4一酮基络合物

的稳定性)。

2、芦丁水解后苷元与糖的鉴定

(1)芦丁水解:

称取精制芦丁约1g,研细,加2%H2SO4100ml装人250ml锥形瓶

中,加入沸石,直火沸腾后保持2小时,放冷后抽滤,滤液保留作糖的鉴定。

水洗沉

淀后,粗品用95%乙醇约10rnl煮溶回流,趁热过滤,放置加水至50%左右浓度,得

黄色针晶。

(2)苷元的鉴定

1>苷元的碱降解

 

3

 

OH

OH

OHOH

OH

HOOOH-

加热+

OHHOOH

OHO

 

COOH

槲皮素间苯三酚原儿茶酸

 

取苷元50mg,加水和95%乙醇各5ml,加氢氧化钾4g在石棉网上直火加热回流

5小时,反应后挥去乙醇,用稀盐酸调成酸性(pH约为2),用乙醚振摇萃取,取醚层

回收醚,残液进行缓冲纸层析,然后用Sulphanilicacid[6]试剂显色,并与间本三酚和

原儿茶酸标准品对照层析结果[7]。

注:

[6]Sulphanilicacid试剂组成:

A液:

10%Na2CO3水溶液;

B液:

0.5%sulphanilicacid;C液:

0.5%NaNO2水溶液。

先喷A液,然后再喷B和C的等量混合液(B与C用时临时混合)。

.[7]苷元降解产物的层析结果如下图:

 

1、间苯三酚

2、降解液

3、原儿茶酸

 

123

 

2>槲皮素五乙酰化物的制备:

称取精制槲皮素0.2g,置25ml干燥的锥形瓶中,加6ml醋酐和1滴浓硫酸,振

摇使完全溶解,接上空气冷凝管,于水浴上加热30分钟,放冷,搅拌下倾入100ml

冰水中,搅至油滴消失,得灰白色粉末状沉淀,放置,抽滤,洗涤,用95%乙醇将沉

淀重结晶,无色针晶,为五乙酰化槲皮素,熔点192~194℃。

(3)芦丁和桷皮素的薄层层析鉴定

吸附剂:

青岛硅胶G(10~40u)以0.3%CMC-Na水溶液为粘合剂制板,105℃

活化半小时。

展开剂:

(任选一种)

A、氯仿一甲醇一甲酸(15:

5:

1)

 

4

 

B、氯仿一丁酮一甲酸(5:

3:

1)

显色剂:

1%三氯化铁和1%铁氰化钾水溶液,临用时等体积混合

(4)糖的鉴定

1>纸层析鉴定:

取水解溶液10ml,于水浴上加热,在搅拌下加BaCO3或Ba(OH)2细粉中和至

中性,滤除生成的BaCO3沉淀,滤液小心浓缩至1~2rnl(水浴浓缩,注意防止炭化),得样品液以葡萄糖、鼠糖标准品作对照进行纸层析。

展开剂:

正丁醇一冰醋酸一水(4:

1:

5上层)径向展开。

显色剂:

邻苯二甲酸一苯胺试剂,喷于滤纸上,于105℃加热数分钟至斑点出现,观察结果并记录。

2>脎的制备及鉴定

余下的水解液小心用40%NaOH液中和,滤除棕红色沉淀,水浴上加热浓缩至约

30ml,滤后加1g盐酸苯肼,2gNaAC,沸水浴上加热30~40分钟,析出黄色混合糖脎,停止加热,冷却后取结晶少许,于显微镜下观察,鼠李糖脎为簇状针晶,葡萄糖

膝为扫帚状聚针晶。

滤取糖脎结晶,水洗,干燥后,溶于丙酮,滤除不溶物,滤液加

水使成30%丙酮液即析出葡萄糖脎,抽滤后以少量丙酮重结晶一次,熔点

209℃,母

液加水稀释,析出鼠李糖脎,稀乙醇重结晶,熔点

185℃。

五、芦丁、槲皮素的光谱鉴定

1.UV光谱法:

将适量分离得到的芦丁、槲皮素精制品溶解与适量甲醇中,在200~400nm测定紫外光谱;然后加入诊断试剂,再在200~600nm测定紫外光谱,分析

数据,确定结构。

2.NMR法:

将芦丁、槲皮素精制品溶解与DMSO-d6中,测定其1H-NMR13C-NMR光谱,分析图谱,推断结构,指出峰归属。

 

附:

实验二艾叶及丁香中挥发油的提取鉴定

 

一、实验目的

1、掌握挥发油的提取方法、原理;

2、通过对比掌握两种挥发油提取器的构造和使用。

3、了解TLC法在鉴定挥发油成分中的应用。

二、实验材料

艾叶50克,丁香30克,5%香草醛浓硫酸液,小标本缸1个,环已烷:

乙酸乙酯(9:

1)5ml,石油醚:

乙酸乙酯(3:

1)5ml,3克硅胶G,9ml蒸馏水,载玻片

10片。

三、实验内容

 

5

 

(一)艾叶中挥发油的提取、鉴定

艾叶为菊科植物艾(Artemisiaargyileve,etVant)的干燥叶,其同属植物野艾

(ArtemisiaVulgarisL—)的干燥叶也可作艾叶用。

艾叶中挥发油的主要成分是水芹烯

(Phellandrene),毕澄茄烯(Cadinene),侧柏醇(Thujylalcohol)等。

艾叶油呈兰绿色。

辛辣气味,比重小于1。

1、提取

取艾叶50克放入1000ml圆底烧瓶中,接挥发油提取器(比重小于1),回流3

小时后,取出油作TLC鉴定。

2、鉴定

硅胶G硬板,105℃活化半小时,点样,用环己烷—乙酸乙酯(9:

1)展开,5%

香草醛浓硫酸液显色,观察班点颜色、个数,计算Rf值。

(二)丁香挥发油的提取鉴定

丁香油为桃金娘科植物丁香(Syzygiumaromaticum[L.]Merv.etPerry)的干燥

花蕾经蒸馏所得的挥发油。

为淡黄色或无色的澄明油状液体,有丁香的特殊芳香气。

露置空气中或贮存日久则渐浓厚而色变棕黄。

不溶于水,易溶于醇,醚或冰醋酸中,

比重为1.038-1.060。

丁香油中主要成分是丁香油酚(Eugeud),乙酰丁香油酚,?

-

石竹烯(?

-Caryophyllene)以及甲基正戊基酮,水杨酸甲酯,律草烯(Humulene),

苯甲醛、苄醇、间甲氧基苯甲醛,乙酸苄酯,胡椒酚(Chavicot)等。

1、提取

丁香20克置500rnl圆底烧瓶中,上接挥发油提取器(比重大于1),回流3小时,

取出油作TLC鉴定。

2、鉴定

2.1TLC法:

硅胶G硬板,105℃活化半小时,点样,用石油醚—乙酸乙酯(3:

1)展开,5%香草醛浓硫酸溶液显色,观察斑点颜色,个数,计算Rf值。

CH2CH=CH2

 

OCH3

OH

丁香酚

2.2气相色谱法:

用微量注射器吸取1μl挥发油,由进样器注入,样品被载

气带入色谱柱,由于各组分在两相中的分配系数不等,各组分将按分配系数大小的顺序依次被载气带出色谱柱,经检测器检测,记录器记录色谱峰,记录下各峰的保留时间。

2.3GC/MS法:

用微量注射器吸取1μl挥发油,由进样器注入气相色谱—质

 

6

 

谱仪,经分离后得到的各个组分依次进入分离器,浓缩后的各组分依次进入质谱仪。

质谱仪对每个组分进行检测和结构分析。

实验三红辣椒中红色素的分离

 

一、实验目的

1、掌握薄层色谱板、色谱柱的制作及用以分离天然化合物的技术;

2、了解红辣椒所含色素的性质及其分离法。

二、红辣椒中的红色素

红辣椒是辣椒Capsicumannum的成熟果实,含有几种色泽鲜艳的色素,主要为红色素。

在红辣椒色素的薄层色谱中,可观察到一个大的鲜红色的斑点。

红辣椒的深红

色主要由此色素产生。

研究结果证实这种红色素由辣椒红的脂肪酸酯组成。

 

CH

辣椒红

CH3

OR2

3

CH3

CH3

O

CH3

CH3

CH3

CH3

CH3

CH3

R1O

辣椒红

R1=R2=H

O

辣椒红脂肪酸酯

R1=R2=

(CH2)n—CH3

 

三、实验内容

1、材料:

红辣椒粉0.5~1g,二氯甲烷20ml,柱层析用硅胶10g,薄层层析用硅胶

2g,2×20cm色谱柱1支,载玻片6块,层析槽1个,棉花少许,磁蒸皿1个。

2、操作:

2.1薄层色谱的制备:

取6块载玻片洗净,干燥,平铺于台面,称薄层用硅胶

2g于小烧杯内,按硅胶蒸馏水(1:

3)的比例加水,用玻璃棒将硅胶与水充分混匀,

均匀地倒在备好的玻片上,再抖动玻片,使硅胶铺平,晾干后于105℃活化30分钟,或80℃烘2小时,取出放冷后,放入干燥器备用。

2.2

提取:

称取红辣粉

0.5g放入25ml或50ml圆底烧瓶中,加

2粒沸石,加

10mlCH2Cl2,回流20分钟,放至室温,过滤,得滤液,备用。

2.3

柱色谱分离红色素:

1〉装柱:

取色谱柱洗净,干燥,放一小块脱脂棉在基底部,然后慢慢加入层析硅胶10克,同时用一段木条轻轻敲柱,以利于硅胶均匀沉降,至硅胶顶面不再下降为止,装柱完毕。

这是干法装柱的一种方法。

此外还有湿法装柱。

2〉拌样:

取一洗净、干燥的磁蒸皿称重,然后在磁蒸皿中放入0.2克层析硅胶,

 

7

 

将此装有硅胶的磁蒸皿置于水浴上,同时滴入辣椒色素提取液拌匀,挥干溶剂至磁蒸皿恒重。

3〉上样:

将样品轻轻放在柱顶(注意不能破坏柱顶面),敲打色谱柱至样品带厚

薄均匀,表面平滑,然后再在样品带上轻轻铺一层白硅胶及一块脱脂棉,以保护样品带。

4〉色谱分离:

缓缓倒入

CH2Cl2约10ml进行洗脱,洗脱剂展至柱底即停止层析。

可见硅胶柱上呈现两条明显的色带。

将两色带分别挖出,用CH2Cl2分别洗脱,即得红

色素。

2.4红色素的鉴定:

1〉薄层色谱鉴定:

用毛细管将滤液点于色谱板上(注意斑点直径不得大于0.3crn),薄层板斜放于盛有少量展开剂(CH2Cl2)的层析槽内(注意点样斑点不要浸在展开剂

中),盖上盖子后开展层析,待展开剂行至薄层板顶端时,取出、立即划出溶剂前沿线,记录各斑点颜色,计算Rf值,(辣椒红Rf值约为0.6)

2〉红外光谱鉴定:

取所得红色素少许,交光谱室,做成盐片扫描,将图谱与标准红外光谱比较。

2.5柱色谱的注意事项:

1〉装柱过程不能间断,装好的色谱柱不应有气泡、裂痕。

2〉吸附剂的置一般不超过色谱柱长度的3/4。

3〉装好的柱子其吸附剂的顶面一定要平

4〉上样时,样品厚度要一致,表面平滑。

 

实验四咖啡因的提取与分离

 

一、实验目的:

1、掌握生物碱的提取分离方法。

2、了解咖啡因的性质及鉴定方法。

二、来源与性质:

咖啡因(Caffeine)即咖啡碱,属黄嘌岭类生物碱,分子式C8H11O2N4,分子量195,熔点238℃,于178℃升华。

存在于茶叶,咖啡、可可及其制成品中。

为人们普遍服

用。

药物咖啡因用作心脏、呼吸器官和神经兴奋剂,过度使用咖啡因会增加抗药性和产生轻度上瘾。

O

CH3

H3CN

N

O

N

N

CH3

8

 

咖啡因

本实验以茶叶为原料即山茶科植物茶(Camelliasinensiso.Ktze)的芽叶。

(茶叶中含咖啡因一般在2%~4%,咖啡因的PKa1.22)。

用热水提取,加碳酸钙沉淀鞣质及黄酮类,重结晶即得咖啡因,并用混合熔点法、红外光谱等进行鉴定。

三、实验方法及注意事项:

1、咖啡因的提取与分离:

取茶叶30g,碳酸钙粉30g,加入500ml圆底烧瓶内,再加入250ml蒸馏水,水

浴90℃加热回流25分钟,溶液趁热过滤,滤渣弃去,滤液用水浴冷却,然后将此滤

液用三氯甲烷萃取三次,每次三氯甲烷25ml,萃取液倒入圆底烧瓶内,于水浴上加热蒸馏回收三氯甲烷。

粗咖啡因即残留在烧瓶内,称重并记录咖啡因的近似重置,计算

干茶叶中粗咖啡因的含量。

2、粗咖啡因的纯化:

在上述烧瓶内加入约10ml丙酮,水浴上加热至沸,使咖啡因粗品完全溶解,将

此溶液倒入的50ml烧杯中,放冷,滤出晶体,再用丙酮作溶剂进行重结晶,直至得到纯净的白色晶体。

(注:

由于咖啡因在丙酮中很容易溶解,所以每次用丙酮重结晶

时,要保持沸腾到热溶液中开始有晶体形成。

)称重,计算收率。

3、咖啡因的升华

咖啡因在常压情况下加热能升华而不分解,所以由茶叶中提取咖啡因可以采用

升华法。

将茶叶烘干,磨成粉末,且平底锅内,均匀摊成约2寸厚的落层,锅上加帽

形的木制锅盖,盖上有一小孔,于锅下用直炎均匀地加热,起初茶叶中的含有的挥发

性成分和有机物因破坏而生成的焦油蒸出,随后咖啡因缓缓升华,至升华完毕后(可

用一纸条放人木盖的孔中,借以观察生成的焦油,至油稀少时,咖啡因升华也已完毕),

停止加热,冷后,去盖,冷凝在茶叶末表面约1厘米厚的白色针状结晶体,即为精制

咖啡因。

取出晶体,再经脱色和重结晶可得纯品。

表面一层茶叶末可能仍含有少量咖啡因,可供第二次再升华用。

4、咖啡因的鉴定:

(1)测定熔点:

在b型管内用甲基硅油为加热介质,测定所得产品熔点,如有咖啡因标准品和产品做混合熔点测定。

(2)红外光谱鉴别:

作25%饱和咖啡因的三氯甲烷溶液,测定其红外光谱,并与标准图谱或标准品图谱对照。

四、实验指导

(—)实验安排:

需8学时,一次实验在一天内完成。

(二)实验讲解要点:

(1)咖啡因提取分离中的溶剂萃取法及重结晶法。

(2)咖啡因升华方法介绍。

(三)预习思考题

(A)咖啡因的碱性如何?

为什么?

 

9

 

(2)咖啡因采用什么提取分离方法?

什么鉴定方法。

(四)仪器与药品(一组计)

仪器:

圆底烧瓶500ml

1个

冷凝器

1个

分液漏斗250ml

l个

烧杯50ml

1个

b型管

1个

自选实验薯蓣皂苷元的提取与分离

 

一、实验目的

1、掌握甾体皂苷元(亲脂性中性成分)的提取方法。

2、了解薯蓣皂苷元的性质及鉴定方法。

二、薯蓣皂苷元的结构和性质

薯蓣皂苷元(Diosgenin)是一种甾体皂苷元分子式

C27H42O3分子量414.6,为白

色结晶,mp204~207℃〔α〕25D129.3°(CHC13),溶于一般有机溶剂和醋酸。

不溶

于水。

薯蓣皂苷元是目前多种甾体药物如口服避孕药(

I号,Ⅱ号避孕药片)和甾体

激素(如可的松)等的重要原料。

在植物界分布在薯蓣科薯蓣属(

Dioscorea)植物中,

我国的薯蓣属植物有80余种。

已用于生产的主要有盾叶薯蓣

(D.ZinglberensisC,H,

w。

ringht),穿龙薯蓣(D.nipponicaMakino),黄山药(D。

PanthaicaprainetBurkill),紫黄姜(D.nippomcaMakinoVarrosthaniprainetBurlt)等。

在植物体内薯蓣皂苷元是与葡萄糖、鼠李糖结合成薯蓣皂苷(Dioscin)而存在。

提取分离时,一般是先用稀酸

将薯蓣皂苷水解成薯蓣皂苷元与单糖(葡萄糖、鼠李糖),因薯蓣皂苷元不溶于水,混存于植物残渣中,故可用有机溶剂(如石油醚)直接从植物残渣中提取出薯蓣皂苷

元。

 

10

 

O

CH3

O

水解

H+,加热

(鼠李糖)2—O—葡萄糖—O

薯蓣皂苷

 

O

CH3

O

 

+葡萄糖+鼠李糖

HO

薯蓣皂苷元

 

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