人教版高中生物选修一专题五DNA和蛋白质技术知识点归纳.docx
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人教版高中生物选修一专题五DNA和蛋白质技术知识点归纳
Preparedon22November2020
人教版高中生物选修一专题五DNA和蛋白质技术知识点归纳
专题五DNA和蛋白质技术
课题一 DNA的粗提取与鉴定
一、提取DNA的溶解性原理包括哪些方面
在不同浓度NaCl溶液中溶解度不同;DNA不溶于酒精。
①DNA在不同浓度NaCl溶液中溶解度有何特点要使DNA溶解,需要使用什么浓度要使DNA析出,又需要使用什么浓度
在L时溶解度最小;较高浓度可使DNA溶解;L可使DNA析出。
②在溶解细胞中的DNA时,人们通常选用2mol/LNaCl溶液;将DNA分子析出的方法是向溶有DNA的NaCl溶液中缓慢注入蒸馏水,以稀释NaCl溶液。
酒精是一种常用有机溶剂,但DNA却不能溶于酒精(特别是95%冷却酒精),但细胞中蛋白质可溶于酒精。
2.从理论上分析,预冷的乙醇溶液具有以下优点。
一是抑制核酸水解酶活性,防止DNA降解;
二是降低分子运动,易于形成沉淀析出;
三是低温有利于增加DNA分子柔韧性,减少断裂。
3.采用DNA不溶于酒精的原理,可以达到什么目的
将DNA和蛋白质进一步分离。
4.提取DNA还可以利用DNA对酶、高温和洗涤剂的耐受性原理。
利用该原理时,应选用怎样的酶和怎样的温度值
蛋白酶,因为酶具有专一性,蛋白酶只水解蛋白质而不会对DNA产生影响。
温度值为60~80℃,因为该温度值蛋白质变性沉淀,而DNA不会变性。
补充:
DNA的变性是指DNA分子在高温下解螺旋,其温度在80℃以上,如在PCR技术中DNA变性温度在95℃。
5.洗涤剂在提取DNA中有何作用
洗涤剂将细胞膜上的蛋白质,从
而瓦解细胞膜。
6.当鉴定提取出的物质是否是DNA时,需要使用什么指示剂进行鉴定在沸水浴条件下,DNA遇二苯胺呈现蓝色。
原理总结:
通过利用不同浓度NaCl溶液溶解或析出DNA,可以从细胞中提取和提纯DNA;再利用酒精进一步将DNA与蛋白质分离开来,达到提纯的目的;最后利用二苯胺试剂鉴定提取的物质是否是DNA。
二、实验材料的选取
不同生物的组织中DNA含量不同。
在选取材料时,应本着DNA含量高、材料易得、便于提取的原则。
本实验用鸡血细胞做实验材料有两个原因。
一是因为鸡血细胞核的DNA含量丰富,材料易得;
二是鸡血细胞极易吸水胀破,而用动物肝脏细胞作实验材料常常需要匀浆和离心,对设备要求较高,操作繁琐,历时较长。
鸡血细胞破碎以后释放出的DNA,容易被玻璃容器吸附,所以在提取过程中为了减少DNA的损失,最好使用塑料的烧杯和试管盛放鸡血细胞液。
三、破碎细胞,获取含DNA的滤液
1、若选用鸡血和洋葱作实验材料,则怎样获取含DNA的滤液
在鸡血细胞液中加入一定量蒸馏水并用玻棒搅拌,过滤后收集滤液;切碎洋葱,加入一定量洗涤剂和食盐,搅拌研磨,过滤后收集滤液。
2.为什么加入蒸馏水能使鸡血细胞破裂
答:
蒸馏水对于鸡血细胞来说是一种低渗液体,水分可以大量进入血细胞内,使血细胞胀裂,再加上搅拌的机械作用,就加速了鸡血细胞的破裂(细胞膜和核膜的破裂),从而释放出DNA。
3.在以上实验中,加入蒸馏水、洗涤剂和食盐的作用分别是什么过滤时应当选用(滤纸、尼龙布)。
血细胞在蒸馏水中大量吸水而张裂;洗涤剂瓦解细胞膜;食盐溶解DNA物质;选用尼龙布进行过滤。
4.在处理植物组织时需要进行研磨,其目的是什么研磨不充分产生什么结果
破碎细胞壁,使核物质容易溶解在NaCl溶液中;研磨不充分会使DNA的提取量减少,影响实验结果,导致看不到丝状沉淀物、用二苯胺鉴定不显示蓝色等。
具体做法。
10mL鸡血+20mL蒸馏水→同方向搅拌→3层尼龙布过滤→滤液
三、去除滤液中的杂质
1.为什么反复地溶解与析出DNA,能够去除杂质
用高盐浓度的溶液溶解DNA,能除去在高盐中不能溶解的杂质;用低盐浓度使DNA析出,能除去溶解在低盐溶液中的杂质。
因此,通过反复溶解与析出DNA,就能够除去与DNA溶解度不同的多种杂质。
最初获得的DNA滤液含有蛋白质、脂质等杂质,需要进一步提纯DNA。
方案一的原理是DNA在不同浓度NaCl溶液中溶解度不同;方案二的原理是蛋白酶分解蛋白质,不分解DNA;方案三的原理是蛋白质和DNA的变性温度不同。
方案二与方案三的原理有什么不同
答:
方案二是利用蛋白酶分解杂质蛋白,从而使提取的DNA与蛋白质分开;方案三利用的是DNA和蛋白质
对高温耐受性的不同,从而使蛋白质变性,与DNA分离。
四、析出与鉴定
1.在滤液中仍然含有一些杂质,怎样除去这些杂质呢得到的DNA呈何颜色
滤液与等体积的冷却酒精混合均匀,静置2~3分钟,析出的白色丝状物就是DNA。
DNA呈白色。
2.怎样鉴定析出的白色丝状物就是DNA呢
具体做法。
试管2支,编号甲乙→各加等量5mLNaCl溶液→甲中放入少量白色丝状物,使之溶解→各加4mL二苯胺,混合均匀→沸水浴5min→观察颜色变化
五、实验操作
制备鸡血细胞液…………加柠檬酸钠,静置或离心
↓
破碎细胞,释放DNA…加蒸馏水,同一方向快速通方向搅拌
↓→过滤,除去细胞壁、细胞膜等。
溶解核内DNA…………加入NaCl至2mol/L,同一方向缓慢搅拌
↓
DNA析出………………加蒸馏水至L,过滤,在溶解到2mol/L溶液中
↓→除去细胞质中的大部分物质。
DNA初步纯化…………与等体积95%冷却酒精混合,析出白色丝状物
↓→除去核蛋白、RNA、多糖等。
DNA鉴定………………二苯胺,沸水浴,呈现蓝色
注意事项:
在鸡血中加入柠檬酸钠防止凝固;鸡血静置或离心以提高细胞悬液浓度;使用塑料烧杯;使用尼龙布过滤;玻棒沿同一方向搅拌;玻棒搅拌要缓慢(细胞破裂快速搅拌);玻棒不要碰到烧杯壁;二苯胺试剂要现用现配等。
课题二多聚酶链式反应扩增DNA片段
基础知识
PCR技术扩增DNA的过程,与细胞内DNA复制过程类似:
1.细
胞内DNA复制条件分析:
条件
组分
作用
模板
DNA的两条单链
提供复制的模板
原料
四种脱氧核苷酸
合成DNA子链的原料
酶
解旋酶
DNA聚合酶
打开DNA双螺旋
催化合成DNA子链
能量
ATP
为解螺旋和合成子链供能
引物
RNA
为DNA聚合酶提供合成的3’端起点
2.细胞内DNA复制过程的解析:
解旋:
解旋酶、ATP,DNA两条链打开,形成两条DNA单链。
引物结合:
在DNA单链3’端与DNA反向配对结合。
DNA聚合酶结合:
DNA聚合酶与模板链结合,标志着单链合成开始。
子链合成:
DNA聚合酶从引物3’端开始,将配对的脱氧核苷酸连接起来。
后续加工:
D
NA聚合酶I将引物切去,并合成空缺处的DNA单链,再由DNA连接酶将不连续的DNA子链连接起来(半不连续合成。
先导链,滞后链)
3.DNA分子复制的人工控制
实验操作步骤
照
PCR反应体系配方配制反应液;
②将PCR反应体系50μL用微量移液器转移到微量离心管()中;
③将微量离心管放到PCR仪中;
④设置PCR仪的工作参数。
⑤DNA在PCR仪中大量扩增。
4.实验注意事项
(1)避免外源DNA污染:
所用仪器、缓冲液、蒸馏水等
使用前高压灭菌。
(2)缓冲液和酶分装
成小份,-20℃低温保存。
(3)每添加一种反应成分,更换一个移液器的枪头。
(4)混匀后离心处理,使反应液集中在离心管底部。
总结、点评
课题三血红蛋白的提取和分离
一、实验原理
蛋白质的物化理性质:
形状、大小、电荷性质和多少、溶解度、吸附性质、亲和力等千差万别,由此提取和分离各种蛋白质。
1.凝胶色谱法(分配色谱法):
(1)原理:
分子量大的分子通过多孔凝胶颗粒的间隙,路程短,流动快;分子量小的分子穿过多孔凝胶颗粒内部,路程长,流动慢。
(2)凝胶材料:
多孔性,多糖类化合物,如葡聚糖、琼脂糖。
(3)分离过程:
混合物上柱→洗脱→大分子流动快、小分子流动慢→收集大分子→收集小分子
洗脱:
从色谱柱上端不断注入缓冲液,促使蛋白质分子的差速流动。
(4)作用:
分离蛋白质,测定生物大分子分子量,蛋白质的脱盐等。
2.缓冲溶液
(1)原理:
由弱酸和相应的强
碱弱酸盐组成(如H2CO3-NaHCO3,NaH2PO4/Na2HPO4等),调节酸和盐的用量,可配制不同pH的缓冲液。
(2)缓冲液作用:
抵制外界酸、碱对溶液pH的干扰而保持pH稳定。
3.凝胶电泳法:
(1)原理:
不同蛋白质的带电性质、电量、形状和大小不同,在电场中受到的作用力大小、方向、阻力不同,导致不同蛋白质在电场中的运动方向和运动速度不同。
(2)分离方法:
琼脂糖凝胶电泳、聚丙烯酰胺凝胶电泳等。
(3)分离过程:
在一定pH下,使蛋白质基团带上正电或负电;加入带负电荷多的SDS,形成“蛋白质-SDS复合物”,使蛋白质迁移速率仅取决于分子大小。
二、实验步骤
1.样品处理
红细胞的洗涤
洗涤红细胞
的目的是去除杂蛋白,采集的血样要及时采用低速短时间离心分离红细胞,然后用胶头吸管吸出上层透明的黄色血浆,将下层暗红色的红细胞液体倒入烧杯,再加入五倍
体积的生理盐水,缓慢搅拌10min,低速短时间离心,如此重复洗涤三次,直至上清液
中没有黄色,表明红细胞已洗涤干净。
②血红蛋白的释放
在蒸馏水和甲苯作用下,红细胞破裂释放出血红蛋白。
注:
加入蒸馏水后红细胞液体积与原血液体积要相同。
加入甲苯的目的是溶解细胞膜,有利于血红蛋白的释放和分离。
2.粗分离
①分离血红蛋白溶液
将搅拌好的混合溶液离心后,试管中的溶液分为4层。
第一层为无色透明的甲苯层,第2层为白色薄层固体,是脂溶性物质的沉淀层,第3层是红色透明液体,这是血红蛋白的水溶液,第4层是其他杂质的暗红色沉淀物。
将试管中的液体用滤纸过滤,除去之溶性沉淀层,于分液漏斗中静置片刻后,分出下层的红色透明液体。
②透析
取1mL的血红蛋白溶液装入透析袋中,将透析袋放入盛有300mL的物质的量的浓度为20mmol/L的磷酸缓冲液中,透析12h。
透析可以去除样品中分子量较小的杂质,或用于更换样品的缓冲液。
3.纯化
调
节缓冲液面:
打开色谱柱下端的流出口,使柱内凝胶面上的缓冲液缓慢下降到与凝
↓胶面平齐,关闭出口。
加入蛋白质样品:
用吸管将透析后的样品沿管壁环绕移动加到色谱柱的顶端。
加样后,
∣打开下端出口,使样品渗入凝胶床内,等样品完全渗入凝胶层后,
↓关闭出口。
调节缓冲液面:
加入20mmol/L的磷酸缓冲液到适当高度
↓
洗脱:
连接缓冲液洗脱瓶,打开下端出口,进行洗脱。
↓
收集分装蛋白质:
待红色的蛋白质接近色谱柱底端时,用试管收集。
4.纯度鉴定------SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳(选做)
三
、注意事项
电泳技术
电泳技术就是在电场的作用下,利用待分离样品中各种分子带电性质以及分子本身大小、形状等性质的差异,使带电分子产生不同的迁移速度,从而达到对样品进行分离、鉴定或提纯的目的。
2.红细胞的洗涤
如果分层不明显,可能是洗涤次数少、未能除去血浆蛋白的原因。
此外,离心速度过高和时间过长,会使白细胞和淋巴细胞一同沉淀,也得不到纯净的红细胞,影响后续血红蛋白的提取纯度。
3.如何检测凝胶色谱柱的装填是否成功
由于凝胶是一种半透明的介质,因此可以在凝胶柱旁放一支与凝胶柱垂直的日光灯,检查凝胶是否装填得均匀。
此外,还可以加入大分子的有色物质,观察色带移动的情况。
如果色带均匀、狭窄、平整,说明凝胶色谱柱的性能良好。
如果色谱柱出现纹路或是气泡,轻轻敲打柱体以消除气泡,消除不了时要重新装柱。
4.为什么凝胶的装填要紧密、均匀
如果凝胶装填得不够紧密、均匀,就会在色谱柱内形成无效的空隙,使本该进入凝胶内部的样品分子从这些空隙中通过,搅乱洗脱液的流动次序,影响分离的效果。
5.沸水浴处理加入洗脱液的湿凝胶的目的
不但节约时间,还能除去凝胶中可能带有的微生物和排除凝胶内的空气。
6.G-75
“G”代表凝胶的交联程度,膨胀程度及分离范围,75表示凝胶得水值,即每克凝胶膨胀时吸水。
7.装填完后,立即用洗脱液洗脱的目的:
使凝胶装填紧密
8.加入柠檬酸钠有何目的为什么要低速、短时离心为什么要缓慢搅拌
防止血液凝固;防止白
细胞沉淀;防止红细胞破裂释放出血红蛋白。
9.与其他真核细胞相比,红细胞的特点及这一特点对进行蛋白质的分离的意义
哺乳动物及人的成熟的红细胞是双面凹圆饼状,没有细胞核和细胞器。
其含有的血红蛋白是有色蛋白,因此在凝胶色谱分离时可以通过观察颜色来判断什么时候应该
收集脱液。
这使血红蛋白的分离过程非常直观,大大简化了实验操作。
10.如何检测血红蛋白的分离是否成功
如果凝胶色谱柱装填得很成功、分离操作也正确的话,能清楚地看到血红蛋白的红色区带均匀、狭窄、平整,随着洗脱液缓慢流出;如果红色区带歪曲、散乱、变宽,说明分离的效果不好,这与凝胶色谱柱的装填有关。