药学生物化学实验指导.docx
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药学生物化学实验指导
生物化学实验
一、实验目的
1．培养学生科学的思维方法和学习作风，独立工作能力。
2．学习基础生物化学实验方法，为今后的学习与研究准备更好的条件。
3．培养学生爱护国家财物、爱护集体、团结互助的优良道德品质。
4．培养学生的书面及口头表达能力。
二、实验的总要求
1．按教研室予先公布的实验进度表，了解各次实验的具体内容，并认真做好预习。
弄清各步骤的意义，避免教条或机械式做实验。
未预习者不得进实验室。
2．进行实验不仅要求结果良好，而且要求敏捷高效。
一切步骤都按正规操作方法进行；样品与试剂勿过量取用；注意力集中，避免差错。
3．实验中观察要仔细，记录要详尽、及时与客观。
无论实验成功与失败，都应直接记录在实验报告本中，不得于实验后追记。
对于失败的实验，要分析其原因。
4．实验室是集体学习与工作的场所，实验时应保持肃静，不得大声喧哗，以免影响他人的工作与思考。
5．注意保持实验室内的整洁。
实验用器具、试剂等应排列整齐有序。
实验时切勿将试剂、标本溅洒于实验台面、地面及衣物上，如果有溅出应及时处理。
实验后应清洗用过的仪器及清理自己的实验场所。
实验所用的器材、设备不得随意乱动。
实验室内的一切器材物品严禁携出。
6．实验时使用水、电、火、易燃易爆试剂、化学毒剂及传染标本等应注意安全，防止燃烧或爆炸，防止中毒等事故之发生。
7．对师长尊敬，对同学要团结友爱。
三、实验报告
实验报告的书写是培养学生书面表达能力和科学作风的重要手段之一，实验者应该重视。
实验报告的内容包括下列各项：
实验名称、实验日期、实验目的、实验原理、实验步骤，实验记录、计算、讨论或小结。
实验记录应包括随做随记的原始记录。
书写实验报告要字迹工整，语句通顺。
书写工整的实验报告，是尊师的重要表现之一。
四、玻璃仪器的洗涤
一般玻璃仪器用肥皂或去污粉以毛刷洗涤即足以满足要求，洗后应将肥皂或去污粉仔细冲掉，将水倾去后，器壁不挂水珠，视为合格。
铬酸洗液仅用于毛刷不能洗净的仪器，切勿滥用普通玻璃仪器之洗涤。
使用铬酸洗液时，仪器应干燥；过多的水份将使洗液迅速失效。
用过之铬酸洗液须加以保存以反复使用，直至为绿色后方可舍弃；其舍弃法与浓硫酸液相同。
用洗液浸洗过的玻璃仪器，应先用自来水冲洗，然后再用蒸馏水或去离子水清洗，清洗时，宜采用“少量多次”原则以节约蒸馏水，同时清洗的效率也高。
五、舍弃物的处理
舍弃物必须依照其性质作适当的处理。
以免造成实验材料的浪费，损坏水槽及下水管道，或污染实验环境。
1．所有固体舍弃物（例如用过的滤纸、损坏的软木塞及橡皮物、玻璃渣、火柴梗等）。
必须放入废物筒或篓中，切勿丢入水槽中。
2．废硫酸或洗液，应先倾入大量水中，再倒入水槽中，并以大量水冲走。
3．实验完成后的沉淀或混合物，若含有可提取或收回的贵重物品者，不可随意舍弃，应放入教师指定的回收器中。
分光光度计的使用
原理：
有色溶液颜色的深浅与其中呈色物质的含量成正比关系。
在定量分析中，利用比较有色物质溶液的颜色深浅来测定物质含量的分析方法称比色法。
被测物质中，有的本身就是有色物质，但多数被测物质本身无色或颜色很浅，须加入某些化学试剂使测物质与之发生反应生成有色物质。
物质的颜色是由于物质吸收某种波长的光线以后，通过或反射出某种颜色的结果。
当一定波长的单色光通过该物质的溶液时，该物质都能有一定程度的吸光作用，单位体积内的溶液中该物质的质点数越多，对光线吸收越多。
利用物质对一定波长光线吸收的程度来测定物质含量的方法，称为分光光度法。
分光光度法依据Lambert-Beer定律。
设一束单色光I0射入溶液，由于部分光线被溶液吸收，通过的光线为It，则It/I0之比为透光度，若透光度T（%）。
则
T=It/I0×100%
（1）
透光度（T）的倒数（1/T）反映了物质对光的吸收程度。
在实际应用时，取（1/T）的对数值，做为吸光度用A表示，即：
A=Lg（1/T）=-LgT
（2）
吸收度（A）又称消光度（E）或光密度（OD）。
根据Lambert-Beer定律推导，当一束平行单色光通过均匀、无散射现象的溶液时，在单色光强度、溶液温度等条件不变条件下，溶液对光的吸收度（A）与溶液的浓度（C）及液层厚度（L）的乘积成正比。
即：
A=KCL（3）
在实际比色时，标准溶液与被测溶液使用相同的比色杯，即液层厚度（L）相同。
K为常数。
测定同一种物质时，K标=K测。
所以，将比简化为仅是溶液对光吸收度（A）与其浓度（C）之间的关系。
即溶液的浓度越大，吸光度越大。
可以通过测定吸光度求知某一溶液的浓度。
设：
测定管的吸光度和浓度分别为A测和C测，标准管吸光度和浓度分别为A标和C标，根据（3）式A=KCL得知：
A测：
A标=C测：
C标
则C测=A测/A标×C标
上式中C标为已知，A测与A标可在比色时读出数值，把这些数值代入公式，即可求出测定管浓度。
操作方法：
1．接通电源，打开开关指示钮，打开比色箱盖，预热20分钟。
2．预热后，选择所需波长、转动灵敏度旋钮选择适宜灵敏度。
3．转动0旋钮，使检流针指针对准T为0，将空白液、标准液、测定液分别倒入4个比色杯中，将比色杯放入比色盒，再将比色盒放入比色箱中，使空白液对准光路，合上比色箱盖。
4．转动100旋钮，使T为100%（A为0），观察指针是否稳定。
5．反复几次调节T=0、T=100%即开盖调“0”，闭盖调“100”。
6．轻轻拉动比色槽拉杆，先后将标准液、测定液对准光路，纪录A标值和A测值。
7．比色完毕，恢复各旋钮至原来位置，关闭电源拔下插头，取出比色杯，合上比色箱盖，套上布罩。
将比色杯洗净后倒置晾干。
8．计算C测=A测/A标×C标
根据公式算出C测数值。
基础性实验
实验一：
总糖的测定---蒽酮比色法
实验目的
掌握蒽酮比色法测糖的原理和方法
实验原理
蒽酮比色法是一个快速而简便的定糖方法。
蒽酮可以与游离的已糖或多糖中的已糖基、戊糖基及已糖醛酸起反应，反应后溶液呈蓝绿色，在620nm处有最大吸收。
本法多用于测定糖原的含量，也可用于测定葡萄糖的含量。
实验器材及试剂
1、马铃薯干粉
2、可调试移液器或移液管
3、可见分光光度计（723型）
4、电子分析天平
5、水浴锅
6、电炉
7、蒽酮试剂：
取2g蒽酮溶解到80%H2SO4中，以80%H2SO4定容到1000ml，当日配制使用。
8、标准葡萄糖溶液（0.1mg/ml）：
100mg葡萄糖溶解到蒸馏水中，定容到1000ml备用。
操作：
1.制作标准曲线
取7支干燥洁净的试管，按表1顺序加入试剂，进行测定。
以吸光度值为纵坐标，各标准溶液浓度（mg/ml）为横坐标作图得标准曲线。
表1蒽酮比色法定糖——标准曲线的制作单位：
ml
管号
0
1
2
3
4
5
6
标准葡萄糖溶液
0
0.1
0.2
0.3
0.4
0.6
0.8
蒸馏水
1.0
0.9
0.8
0.7
0.6
0.4
0.2
置冰水浴中5min
蒽酮试剂
4.0
4.0
4.0
4.0
4.0
4.0
4.0
沸水浴中准确煮沸10min，取出用流水冷却，室温放10min,于620nm处比色
葡萄糖浓度（mg/ml）
A620nm
2.样品含量的测定
样品液的制作：
精确称取马铃薯干粉0.1g置于锥形瓶中—→加入30ml沸水—→沸水浴30min（不时摇动）—→取出，3000rpm离心10min（或过滤）—→反复洗涤残渣2次—→合并滤液—→冷却至室温—→定容到50ml的锥形瓶中—→再从中取出1ml，再定容到10ml的容量瓶中
样品液的测定：
（1）取4支试管，按照表2加样（加蒽酮时需要冰水浴5min冷却）
表2蒽酮比色法定糖——样品的测定单位：
ml
试管号
1
2
3
4
样液
0
1.0
1.0
1.0
蒸馏水
1.0
0
0
0
蒽酮
4.0
4.0
4.0
4.0
A620nm
（2）加样冷却完成后置沸水中煮沸10min，取出流水冷却放置10min，620nm处比色测量各管OD值。
（3）以1号试管作为调零管，2、3、4号管的OD值取平均后从标准曲线上查出样品液相应的含糖量。
3．结果计算：
C×V
w =————×100%
m，
式中w：
糖的质量分数（%）
C：
从标准曲线中查出的糖质量分数（mg/ml）
V：
样品稀释后的体积（ml）
m：
样品的质量（ml）
实验注意事项：
1.加样是实验成功的关键，一定准确。
2.试管做好标记。
实验报告：
总糖的测定
思考题：
如何减少其他糖结构类似物的影响？
实验二：
血清蛋白醋酸纤维薄膜电泳
实验目的：
1.掌握血清蛋白醋酸纤维薄膜电泳的方法及实验原理。
2.了解血清蛋白醋酸纤维薄膜电泳的临床意义及影响因素。
实验原理：
带电粒子在电场中移动的现象称为电泳。
血清蛋白质的等电点均低于pH7.4，因此，在pH比其等电点高的缓冲液中它们都电离成负离子，在电场中都会向正极移动。
因各种血清蛋白质等电点不同，在同一pH下所带电荷数量不同，加上分子量的差别等因素，它们在电场中的运动速度就不同。
蛋白质分子小而带电荷多的运动较快；分子大而带电荷少的运动较慢。
所以可利用电泳将血清蛋白质按其在电场中运动的速度快慢分为白蛋白、α1－球蛋白、α2－球蛋白、β－球蛋白及γ－球蛋白等五条区带。
可用分光光度法定量检测出五种蛋白质的含量和百分数，也可将染色后的膜条直接用光密度计测定。
实验器材：
【仪器】
1．试管、试管架、吸量管
2．电泳仪：
包括直流电源整流器和电泳槽两个部分，电泳槽内装有两个电极（用白金丝制成）。
3．醋酸纤维薄膜（2.5×8㎝）：
【试剂】
1．pH8.6，离子强度0.075的巴比妥缓冲液：
巴比妥钠15.45g，巴比妥2.76g，蒸馏水700～800ml，加热溶解，冷后补足蒸馏水至1000ml。
2．氨基黑10B染色液：
氨基黑10B0.5g，甲醇50ml，冰醋酸10ml，蒸馏水40ml，混合使溶解。
3．漂洗液：
甲醇45ml，冰醋酸5ml，蒸馏水50ml，混匀，分装甲乙丙三瓶备用。
4．新鲜血清
5．0.4mol/L氢氧化钠溶液
6．透明液：
冰醋酸25ml，无水乙醇75ml，混匀备用。
实验内容与方法：
1.电泳槽的准备：
将缓冲液加入电泳槽的两槽内，并使两槽液面在同一水平。
两槽内侧边各贴挂四层滤纸或纱布，浸入缓冲液中构成盐桥。
2．薄膜的准备与点样：
取2.5×8cm的膜条
（1）薄膜有光泽面向下，放入培养皿中的巴比妥缓冲液中使膜条充分浸透下沉，约浸泡10－20分钟，即膜条无白斑时。
（2）将充分浸透的膜条取出，用干净滤纸吸去多余的缓冲液，于薄膜的无光泽面距一端1.5cm处作为点样线。
（3）用点样器在盛有血清的表面血中蘸一下，点样器下端粘上薄层血清，然后将点样器竖直，使其沾有血清的顶端紧贴在薄膜点样线上，待血清全部渗入膜内后，移开点样器，注意点样的两端不可到边。
2．电泳：
将点样后的膜条置于电泳槽的盐桥上，放置时膜条无光泽面（即点样面）向下，以防薄膜干燥，点样端置于负极，槽架上以四层滤纸作桥垫，膜条与滤纸需贴紧。
盖好电泳槽的盖，待平衡5分钟后，即可通电。
调节电泳仪，使两极间距（指膜条与滤纸桥总长度）的电压为8～10V/cm长，或电流0.4～0.6mA/cm宽，通电50分钟左右关闭电源。
3．染色与漂洗：
通电完毕后，用镊子将薄膜取出，直接浸于盛有氨基黑10B的染色液中，染3分钟取出，立即浸于漂洗液中，分别在漂洗液甲、乙、丙三瓶中各漂洗5'，直至背景漂净为止。
用滤纸吸干薄膜，即得五条蛋白区带，从阳极至阴极端依次为白蛋白、α1－球蛋白、α2－球蛋白、β－球蛋白及γ－球蛋白，。
实验注意事项：
1．点样是实验成功的关键，点样不可太多或太少。
2．电泳和漂洗时不要拿错膜条。
实验报告：
血清蛋白醋酸纤维薄膜电泳
思考题：
血清蛋白质在pH8.6的巴比妥缓冲液中带什么电荷?
它们泳动的先后顺序如何?
为什么？
实验五血清总蛋白测定（双缩脲法）
实验目的：
1.熟悉血清总蛋白测定的原理及基本操作。
2.掌握血清总蛋白测定的临床意义。
实验原理：
蛋白质分子中的肽键（-CONH-）在碱性条件下能与Cu2+作用形成紫红色络合物。
此呈色反应与双缩脲（H2N-OC-NH-CO-NH2）在碱性溶液中与Cu2+作用产生紫红色的反应相似，故称为双缩脲反应。
反应中溶液颜色的深浅与蛋白质的含量成正比，可用分光光度法定量检测蛋白质的含量。
凡具有两个以上肽键结构的化合物均有此反应，因此双缩脲反应广泛用于肽及蛋白质定性、定量检测。
实验器材：
【器材】
恒温水浴箱、分光光度计、刻度吸管、试管、试管架。
【试剂】
1．6mol／L（24%）NaOH溶液称取NaOH（优级纯）240g，溶解于新鲜蒸馏水中并加至1000ml。
置聚乙烯瓶内盖紧室温保存。
2.双缩脲试剂 精确称取结晶硫酸铜（CuSO4·5H20）3.0g，酒石酸钾钠（NaKC4H4O6·4H2O）9.0g，碘化钾（KI）5.0g，分别溶解于是25m1蒸馏水中。
将酒石酸钾钠和碘化钾溶液倒入1000ml容量瓶中，加入6mol／L氢氧化钠溶液100ml，混匀，再加硫酸铜溶液，边加边摇，最后加蒸馏水稀释至1000ml。
置聚乙烯瓶内盖紧，室温保存。
3．10g/L酪蛋白标准液 酪蛋白要预先用微量凯氏定氮法测定蛋白质含量，再根据其纯度称量，用0.05mol/L氢氧化钠溶液配置，冰冻保存。
4.人血清用蒸馏水稀释10倍，使其蛋白质浓度在标准曲线测试范围内。
实验内容与方法：
取3支试管，按表操作：
加入物（ml）
测定管标准管空白管
血清稀释液
酪蛋白标准液
双缩脲试剂
0.1－－
－0.1－
5.05.05.0
充分混匀，置37℃水浴中10分钟（或25℃30分钟），在540nm波长处进行比色，以空白管调零，读取各管吸光度。
【计算】
【临床意义】
1.血清总蛋白降低
（1）合成障碍：
肝功能严重受损时，蛋白质合成减少，其中以清蛋白下降最为明显。
（2）丢失过多：
见于严重烧伤时大量血浆渗出，大失血，肾病综合征时大量蛋白尿，溃疡性结肠炎时肠道长期丢失一定量的蛋白质等。
（3）营养不良或消耗增加:
长期低蛋白饮食、慢性胃肠道疾病所引起的消化道吸收不良，使体内缺乏合成蛋白质的原料，或长期患消耗性疾病，如结核病、恶性肿瘤、甲状腺功能亢进等均可引起血清蛋白浓度降低。
（4）血液稀释：
静脉注射过多低渗溶液或各种原因引起的水钠潴留。
2.血清总蛋白增高
（1）血液浓缩：
急性失水（严重腹泻、呕吐、高热等），休克（毛细血管的通透性增加），慢性肾上腺皮质功能减退,急性失水尿钠增多引起继发性脱水。
（2）合成增加:
主要是球蛋白合成增加，如多发性骨髓瘤。
【正常参考范围】60～80g/L
实验注意事项：
1．由于各种蛋白质的分子量不同，故其浓度不宜用mol/L表示，而用g/L表示。
2.试管、吸管应清洁，否则会有混浊现象出现。
3.高脂、黄疸和溶血标本应作血清空白对照，以保证结果准确。
含脂类极多的血清，加入双缩脲试剂后会出现混浊，可用乙醚3ml抽提后再进行比色。
4.须于显色30分钟内比色，否则可有雾状沉淀产生，同时注意各管从显色到比色的时间应尽可能一致。
5.避免硫酸铜过量，否则生成氢氧化铜，其蓝色将掩盖紫红色，影响测定结果。
实验报告：
血清总蛋白测定（双缩脲法）
思考题：
蛋白质常见的呈色反应有哪些？
本实验结果如何，请分析。
实验六pH与温度对酶促反应的影响
实验目的：
1.通过实验观察pH对酶促反应的影响。
2.提高分析问题和动手能力。
实验原理：
淀粉在淀粉酶催化下水解，其最终产物是麦芽糖和葡萄糖。
在水解反应过程中淀粉的分子量逐渐变小，形成若干分子量不等的过渡性产物，称为糊精。
向反应系统中加入碘液可检查淀粉的水解程度，淀粉遇碘呈蓝色，麦芽糖对碘不显色。
糊精中分子量较大者呈蓝紫色，随糊精的继续水解，对碘呈橙红色。
根据颜色反应，可以了解淀粉被水解的程度。
在不同温度、不同酸碱度下，唾液淀粉酶活性不同，淀粉水解程度也不一样。
进而了解温度及pH对酶促反应的影响。
实验器材：
【器材】：
10mm×100mm试管、试管架、恒温水浴箱、沸水浴、记号笔、一次性杯子
【试剂】：
1．10g／L淀粉溶液：
配制方法：
取可溶性淀粉1克，加5毫升蒸馏水，调成糊状，再加蒸馏水约80毫升，加热，使其溶解，最后用蒸馏水稀释至100毫升，冰箱保存。
2．稀释唾液：
将痰咳尽，用水漱口（洗涤口腔），再含蒸馏水30毫升，作咀嚼动作，2分钟后吐入烧杯中待用。
3．缓冲溶液：
PH6.8磷酸盐缓冲液：
取磷酸氢二钠477mg，磷酸二氢钠397mg，蒸馏水溶解至100ml。
PＨ3.0缓冲液：
取0.2mol/L磷酸二氢钾（KH2PO42.722克加蒸馏水溶解至100ml）50ml，加0.2mol/L盐酸溶液20.3ml,混合后即成。
PＨ9.0缓冲液：
取0.2mol/LNa2HPO4溶液（磷酸氢二钠2.840克加蒸馏水溶解至100ml）60ml,0.2mol/L氢氧化钠溶液20ml,混合后即成。
4．碘溶液取碘化钾4g溶于少量蒸馏水中，再取碘2g，完全溶解后加蒸馏水至300ml，贮于棕色瓶中。
实验内容与方法：
一、PH对酶促反应的影响
取三支试管按下表操作：
表PH对酶促反应的影响
加入物
123
10g／L淀粉溶液
PＨ3.0缓冲液
PH6.8缓冲液
PH9.0缓冲液
10滴10滴10滴
10滴——
—10滴—
——10滴
摇匀后37℃恒温水浴中保温5分钟
稀唾液
5滴5滴5滴
将上面各管摇匀后放入37℃恒温水浴中保温。
放置10分钟后取出，分别向各管加入稀碘液1滴，观察3管中颜色的区别，说明PH对酶促反应的影响。
二、温度对酶促反应的影响：
取三支试管按下表操作：
表温度对酶促反应的影响
加入物
123
10g／L淀粉溶液
10滴10滴10滴
PH6.8缓冲液
10滴10滴10滴
摇匀后分别于37、沸水、冰浴5分钟
稀唾液
5滴5滴5滴
摇匀后分别于37、沸水、冰浴10分钟
取出后，分别向各管加入稀碘液1滴，观察3管中颜色的区别，说明温度对酶促反应的影响。
实验注意事项：
稀释唾液的制备是实验成功与否的关键。
制备稀释唾液时,口含的时间不能太长或太短，约1～2分钟。
实验报告：
pH、T对酶促反应的影响
思考题：
利用所学知识，说明T与pH对酶促反应的影响机制，分析结果。
实验七激活剂与抑制剂对酶促反应的影响
实验目的：
1.通过实验观察激活剂与抑制剂对酶促反应的影响。
2.提高分析问题和动手能力。
实验原理：
在激活剂或抑制剂存在时，唾液淀粉酶活性不同，淀粉水解程度也不一样，通过与碘反应的颜色可判断淀粉被水解的程度，进而了解激活剂与抑制剂对酶促反应的影响。
实验器材：
【器材】：
10mm×100mm试管、试管架、恒温水浴箱、沸水浴箱、记号笔、一次性杯子
【试剂】
1．10g／L淀粉溶液：
2．稀释唾液：
（同实验六）
3．PＨ6.8缓冲液
4．碘液取碘2g，碘化钾4g，溶于300ml蒸馏水中，贮于棕色瓶中。
5．170mol/L氯化钠溶液：
取氯化钠1克溶于蒸馏水至100ml。
6．63mol/L硫酸铜溶液：
取硫酸铜1克溶于蒸馏水至100ml。
实验内容与方法：
1．稀唾液和煮沸稀释唾液的制备：
2．取三支试管编号，按下表操作：
表激活剂与抑制剂对酶促反应的影响
加入物
123
10g／L淀粉溶液
PH6.8缓冲液
Nacl溶液
CuSO4溶液
蒸馏水（DH2O）
10滴10滴10滴
10滴10滴10滴
10滴————
——10滴——
————10滴
分别于37℃水浴10分钟
稀唾液
5滴5滴5滴
3．分别于37℃水浴中放置10分钟后取出，向各管加入稀碘液1滴，观察3管中颜色的区别，说明激活剂与抑制剂对酶促反应的影响。
实验注意事项：
稀释唾液的制备是实验成功与否的关键,口含的时间不能太长或太短，约1～2分钟。
实验报告：
激活剂与抑制剂对酶促反应的影响
思考题：
实验结果如何，分析结果。
实验八酶的特异性
实验目的：
1.通过实验说明酶具有特异性。
2.提高分析问题和动手能力。
实验原理：
淀粉在淀粉酶催化下水解，产物是麦芽糖和G。
麦芽糖和G具有还原性,可使班氏试剂中二价铜离子还原为一价铜离子，生成砖红色氧化亚铜沉淀。
而淀粉酶不能催化蔗糖水解生成G和F，蔗糖也不具有还原性，故不能使班氏试剂中二价铜离子还原，不能产生颜色变化。
实验器材：
【器材】：
10mm×100mm试管、试管架、恒温水浴箱、沸水浴、记号笔、一次性杯子
【试剂】：
1．10g／L淀粉溶液：
（同实验四）
2．10g／L蔗糖溶液
3．稀释唾液：
（同实验四）
4．PH6.8磷酸盐缓冲液：
（同实验四）
5．班氏试剂：
结晶硫酸铜（CuSO4。
H2O）17.3g溶于热蒸馏水100ml中，冷后稀释至150ml，此为第一液。
柠檬酸钠173g及无水碳酸钠100g，蒸馏水600ml，加热溶解，冷后稀释至800ml，此为第二液。
将第一液慢慢倒入第二液中，混匀后即为班氏试剂。
实验内容与方法：
取三支试管编号，按下表操作：
表酶的特异性
加入物（滴）
1
2
3
PH6.8磷酸盐缓冲液
10g／L淀粉溶液
10g／L蔗糖溶液
稀释唾液
煮沸稀释唾液
5
5
-
3
-
5
5
-
-
3
5
-
5
3
-
混匀，37℃水浴10分钟
班氏试剂
10
10
10
沸水浴10分钟
结果（颜色）
观察3管中颜色的区别，说明酶的特异性
实验注意事项：
稀释唾液的制备。
实验报告：
酶的特异性
思考题：
实验结果如何，分析结果。
实验十二：
血清ALT定量测定
实验目的：
1.掌握血清ALT定量测定实验的原理及临床意义。
2.提高分析问题和动手能力。
实验原理：
血清ALT以肝细胞中含量最多，因此当肝细胞有病变时，细胞中的酶释放入血液，血清中ALT活性增高。
丙氨酸+α-酮戊二酸→丙酮酸+谷氨酸
丙酮酸+2，4-二硝基苯肼→丙酮酸-2，4-二硝基苯腙
丙酮酸-2，4-二硝基苯腙在碱性溶液中显棕红色，在520nm处比色测定，根据丙酮酸生成量的多少可求得ALT的活性单位。
实验器材：
[器材]10mm×100mm试管、试管架、蜡笔、恒温水浴箱、分光光度计
[试剂]
1．0.1mol/L磷酸盐缓冲液（PＨ7.4）：
准确称取磷酸氢二钠（AR）11.928g和磷酸二氢钠（AR）2.1
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