DC细胞制备标准操作程序.docx
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DC细胞制备标准操作程序
DC细胞制备标准操作程序
1目的和范围:
1.1目的:
规范DC细胞培养操作流程,保证细胞产品制备的稳定性、均一性。
1.2范围:
适用于实验室细胞培养技术人员DC细胞培养的全过
程。
2原理:
2.1外周血PBMC经细胞因子诱导可分化为DC细胞。
3相关文件:
3.1CIK细胞制备标准操作规程
4记录
4.1DC-CIK细胞制备记录。
5物料:
5.1试剂:
75%酒精,碘伏,生理盐水,淋巴细胞分离液(Ficoll),GT-T551培养基,自体血清,DC因子-1,DC因子-2,肿瘤蛋白等。
5.2仪器设备:
生物安全柜,离心机,水浴锅,二氧化碳细胞培养箱,电动移液枪,10ul移液枪,医用剪刀,医用止血钳,试管架。
5.3耗材:
T25培养瓶(25cm2Flask),T75培养瓶(75cm2Flask)15ml离心管,50ml离心管,5ml移液管,10ml移液管,200ul枪头。
6职责:
6.1细胞培养技术人员应严格按照本规程的规定进行DC细胞培
养操作。
6.2QA负责监督细胞培养技术人员的操作全过程,确保DC细胞培养操作的规范性。
6.3审核人负责保证本规程的审核和全过程准确有效。
7工作程序:
7.1实验前准备:
7.1.1洁净区需经过紫外线照射,连续照射时间不得低于30min.,实验过程中风机始终保持开启状态。
7.1.2生物安全柜需经过开机紫外线照射,连续照射时间不得低于30min。
并且开启生物安全柜玻璃防护窗,待生物安全柜内部气流稳定后,才可使用。
7.1.3将实验所需器械放于物料传递窗进行紫外照射,(器械必须是经过高压灭菌锅消毒灭菌,并且在合格期以内)照射完毕后将器械盒用酒精进行擦拭消毒后,放入生物安全柜中备用。
7.1.4单核细胞分离液(Ficoll),培养基,应提前准备好放入生物安全柜中,以便其回复常温,否则将会影响实验效果。
7.1.5DC因子-1及DC因子-2在使用时置于冰块上方,即用即取,禁止在常温下长期放置。
7.2分离培养
7.2.1按照《CIK细胞制备标准操作程序》所述的方式分离
提取PBMC。
7.2.2接种:
7.2.2.1用GT-T551培养基(加10%自体血清)调整细胞浓度为5~6106/ml,铺入细胞培养瓶中,标记,水平放入37℃,5%CO2细胞培养箱内,若非透气孔培养瓶,应拧松瓶盖一圈。
7.2.2.2-3小时后(拧紧瓶盖),取出,(注意轻拿轻放)经消毒后放入生物安全柜中。
7.2.2.3沿培养瓶反面将细胞悬液全部倒入离心管中。
7.2.2.4用5mlGT-T551培养基(加10%自体血清)刷洗培养瓶,涮洗液也倒入离心管中。
7.2.2.5离心管中细胞悬液做CIK培养(详细步骤参照《CIK细胞制备标准操作程序》)。
7.2.2.6沿原培养瓶反面加入10mlGT-T551培养基(加10%自体血清)。
7.2.2.7加入DC因子-1,分装量10ul/支,每10ml培养基可添加1支(培养基不足10ml时按比例添加)。
7.2.2.8标记,水平放入37℃,5%CO2细胞培养箱培养。
7.3换液:
7.3.1第一次直接加液5ml,换液方式如下:
7.3.1.1准备耗材至生物安全柜:
15ml离心管1个,
GT-T551培养基(加10%自体血清),DC因子-1;
7.3.1.2配制试剂:
参考7.2.2.7步骤。
7.3.1.3从培养箱中取出培养瓶,将离心管中培养基沿反面倒入培养瓶。
7.3.2第二次开始半量换液,换液方式如下:
7.3.2.1按7.3.1.1—7.3.1.2的方式配制预添加量培养基。
7.3.2.2从培养箱中取出培养瓶,用移液管取半量培养基至15ml离心管中。
7.3.2.31200rpm,8min,去上清,加入已配制的培养基,重悬,混匀。
7.3.2.4沿培养瓶反面倒入培养瓶中,转移至CO2细胞
培养箱。
7.424h后添加DC因子-2:
分装10ul/支,每20ml培养基可添加1支(培养基不足20ml时,可按体积比例进行添加)。
7.5DC成熟后(一般约24h),将DC细胞悬液转移至CIK细胞悬液中共培养。
7.5.1核对CIK细胞培养袋信息是否与DC细胞信息相符。
7.5.2按CIK细胞制备标准操作规程(SOP-TC-001)
7.5.1-7.5.3的步骤链接对应CIK细胞培养袋和注射器。
7.5.3轻拍DC细胞培养瓶,使DC细胞完全悬浮,悬液倒入
注射器中或移液管转移至CIK细胞培养瓶中
7.5.4用5-10ml培养基(含10%血清)涮洗培养瓶,并冲洗细胞培养面,涮洗液也倒入注射器中或CIK培养瓶中。
7.5.5移去注射器,拧紧盖子,标记,放入CO2细胞培养箱。
7.5.6填写相关记录,清场。
7.6DC细胞收集回输:
当DC细胞直接用于回输时按以下步骤。
7.6.1复核DC细胞是否与回输计划信息相符。
7.6.2取样本,经酒精擦拭后放入生物安全柜。
7.6.3取50ml离心管,标记,打开离心管管盖。
7.6.4轻拍DC细胞培养瓶,使DC细胞完全悬浮,悬液倒入离心管中。
7.6.5用5-10ml生理盐水涮洗培养瓶,并冲洗细胞培养面,涮洗液也倒入离心管中,1200rpm,8min。
7.6.6去上清,加入45ml生理盐水重悬,取0.5ml中间层细胞悬液计数及活率。
7.6.71200rpm,8min,用15ml离心管取15ml上清做内毒素、革兰氏检测并留样,其余上清废弃。
7.6.8用生理盐水和自体血清重悬细胞至20ml(如无自体
血清,用5ml人血白蛋白和15ml生理盐水重悬细胞至20ml)。
7.6.9转袋。
(参照《CIK细胞制备标准操作程序》)
7.6.10用10ml生理盐水涮洗离心管,涮洗液也转入转移袋或生理盐水瓶。
7.6.11填写相关记录,清场。
7.7微生物检测控制点与回输质量控制:
7.7.1细胞接种前取单核细胞最后一次清洗上清2ml液做微生物检测(细菌培养和真菌培养)
7.7.2细胞回输前3-4天取样在培养的细胞悬液2ml做微生物检测(细菌培养和真菌培养)
7.7.3每次回输当日,取细胞上清做内毒素检测,革兰氏染色;待所有质检报告结果已出,质检人员出具细胞合格的质检报告单后,细胞制品方可实验室出库送往治疗室行细胞回输。
8参考文献:
8.1无。
9变更:
修订号
修订原因与内容
执行日期
00
新建
2016.3.1