姜黄素对肿瘤坏死因子诱导单核细胞趋化蛋白的影响.docx
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姜黄素对肿瘤坏死因子诱导单核细胞趋化蛋白的影响
姜黄素对肿瘤坏死因子诱导单核细胞趋化蛋白的影响
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【摘要】目的:
观察姜黄素对肿瘤坏死因子?
α(TNF?
α)引起的血管内皮细胞分泌单核细胞趋化因子?
1(MCP?
1)的影响.方法:
采用原代培养方法获得人脐静脉内皮细胞(HUVEC),随机分为对照组、TNF?
α刺激组和TNF?
α+姜黄素组.先用TNF?
α刺激血管内皮细胞,再加入不同浓度的姜黄素(,,25,50和100mg/L)共同孵育1h与单纯TNF?
α刺激作对照,采用MTT法、ELISA法和RT?
PCR法检测姜黄素对细胞及其上清液中MCP?
1蛋白表达的影响.结果:
HUVEC经TNF?
α刺激后,其MCP?
1表达为±,与对照组±相比明显增强(P<);再与不同浓度姜黄素共同孵育1h后,MCP?
1在细胞中的表达分别为:
±,±,±和±,与单纯给予TNF?
α刺激相比明显减弱(P<),且随着浓度升高有递增的趋势.结论:
姜黄素通过抑制炎症因子MCP?
1的表达调节血管内皮细胞的炎症反应,从而发挥保护血管内皮细胞,防止动脉粥样硬化的作用.
0引言
研究表明,单核细胞的趋化主要由单核细胞趋化蛋白?
1(MCP?
1)来实现,多种物质及细胞因子都可以诱导MCP?
1的表达[1].肿瘤坏死因子?
α通过诱导内皮细胞而产生MCP?
1,吸引单核细胞迁入动脉内膜而参与动脉粥样硬化的发生和发展.中药姜黄的有效成分姜黄素具有抗炎、抗动脉粥样硬化的作用,但目前的研究主要围绕其对脂质过氧化的抑制及对细胞间黏附分子?
1、血管细胞黏附分子?
1和P?
选择素等炎性因子的表达的抑制作用等方面[2-3],而对血管内皮细胞中MCP?
1表达影响的研究尚少见报道.本实验通过在离体状态下以肿瘤坏死因子?
α为诱导因子,观察姜黄素对MCP?
1的影响,旨在进一步阐明其保护内皮细胞,抗动脉粥样硬化的作用机制.
1材料和方法
材料新生儿脐带由第四军医大学唐都医院妇产科提供;倒置显微镜(日本Olympas公司);M199培养基、胰蛋白酶和Ⅰ型胶原酶(美国Gibco公司);胎牛血清(杭州四季青生物公司);姜黄素,TNF?
α(美国Sigma公司);噻唑蓝(北京华美公司);兔抗人MCP?
1mAb,ELISA试剂盒(北京中山试剂公司);Ⅷ因子多克隆抗体(武汉博士德公司);RT?
PCR试剂盒(大连宝生物有限公司);PCR所用引物由上海生工公司合成.
方法
人脐静脉内皮细胞(HUVEC)的培养及鉴定无菌条件下,取正常妊娠足月分娩的新生儿脐带约30cm,用PBS反复冲洗脐静脉至无血水流出,止血钳夹住脐带一端,注入/LⅠ型胶原酶10mL后夹住另一端,在50mL/LCO2孵育箱中消化30min后收集消化液,1000r/min离心8min后收集细胞,加入含80g/L胎牛血清的M199培养液,接种于25mL培养瓶中,在37℃,50mL/LCO2孵育箱中待细胞生长至融合状态用/L胰蛋白酶和/L乙二胺四乙酸混合液消化传代,实验采用第3代细胞,采用SP免疫组织化学染色法[3]检测人第Ⅷ因子相关抗原.
噻唑蓝(MTT)法观察姜黄素对内皮细胞的作用将对数生长期的细胞按密度为×104/L接种于96孔板中,每孔加100μL细胞悬液,当细胞贴壁后进行药物干预并在37℃,50mL/LCO2孵箱中继续培养.实验分为对照组:
M199培养液;TNF?
α刺激组:
M199培养液中加入终浓度为10μg/L的TNF?
α;TNF?
α+姜黄素刺激组:
先加入浓度为10μg/L的TNF?
α孵育细胞,再分别加入终浓度为,,25,50和100mg/L的姜黄素,各组均在37℃条件下孵育1h,每组设4个复孔.实验终止前每孔加入MTT10μL继续培养4h,终止培养.吸弃培养液,每孔加入二甲基亚砜100μL,振荡10min,置酶联免疫检测仪上测定570nm波长处的A值,计算细胞增殖抑制率.计算公式:
细胞生长抑制率(%)=(1-试验组A值/对照组A值)×100%
姜黄素对内皮细胞中MCP?
1表达的影响
法检测实验分组同主要步骤:
在含有兔抗人MCP?
1mAb包被的酶标板上,分别加入MCP?
1500,250,125,,,,和0ng/L标准品和1∶4稀释的待测细胞上清液各,37℃孵育1h;洗板后每孔加入辣根过氧化物酶标记的工作液,37℃孵育1h;清洗后加入邻苯二胺底物液,置暗处反应10min,每孔加入终止液终止显色反应.在酶联免疫检测仪上492nm波长处测各孔A值,每组6个样本,每个样本均设定复孔.
半定量RT?
PCR检测实验分组同按Trizol法提取细胞总RNA.逆转录合成cDNA,MCP?
1基因引物:
上游5′CTCATAGCAGCCACCTTCAT3′(20bp),下游5′TCACAGCTTCTTTGGGACAC3′(20bp);β?
αctin引物:
上游5′gggACCTgACTAACTACCTC3′,下游5′CAgTgATCTCCTTCTgCATC3′;PCR扩增条件:
94℃温育2min,94℃变性45s,57℃复性45s,72℃延伸1min,共35个循环,末次循环72℃延伸10min.反应结束后15g/L琼脂糖凝胶电泳后测灰度值.用目的基因与β?
actin基因扩增片段的灰度值之比计算表达水平.
统计学处理:
实验数据均以x±s表示,采用统计软件进行方差处理,采用LSD法进行检验,P<为差异具有统计学意义.
2结果
的鉴定相差显微镜下观察细胞大部分贴壁,呈单层扁平梭形相互嵌合或多角形细胞集落,排列呈“铺路石”样(图1A).经SP染色法后镜下可见细胞胞质丰富,并呈棕黄色染色颗粒,为阳性反应,证实细胞来源于HUVEC细胞(图1B).
A:
倒置显微镜下×100;B:
倒置显微镜下经Ⅷ因子染色×20.
图1原代培养的HUVEC细胞及鉴定(略)
黄素对TNF?
α损伤后内皮细胞的影响MTT检测显示,TNF?
α刺激组中细胞的抑制率为(±)%,明显高于对照组(16±)%,(P<);TNF?
α+姜黄素(,25,50和100mg/L)各浓度组抑制率分别为(±)%,(21±)%,(±)%和(±)%,与TNF?
α刺激组相比较内皮细胞的损伤明显减轻(P<).
姜黄素对TNF?
α损伤状态下内皮细胞MCP?
1表达的影响
姜黄素对MCP?
1蛋白表达的影响细胞经TNF?
α刺激后与对照组(±)相比,MCP?
1表达明显增加(±,P<);HUVEC细胞先经TNF?
α刺激后再加入,25,50和100mg/L不同浓度姜黄素继续作用1h后,与对照组相比较,可明显抑制TNF?
α介导的MCP?
1表达(±,±,±,±,P<)且呈现出浓度依赖趋势,但与对照组相比在低浓度时仍明显增高,说明姜黄素有部分逆转TNF?
α对细胞的损伤作用.
黄素对MCP?
1mRNA表达水平的影响HUVEC细胞经不同浓度姜黄素和TNF?
α分别干预后β?
actin基因的表达产物几乎保持不变,但目的基因表达产物在TNF?
α组中明显增多,在姜黄素组中随着浓度的升高逐渐减少(图2).计算结果显示,TNF?
α刺激组(±)与对照组(±)相比较MCP?
1表达水平明显升高(P<);而TNF?
α+姜黄素(,25,50和100mg/L)各浓度组与对照组相比MCP?
1表达水平虽仍有升高,但较TNF?
α刺激组明显降低(±,±,±,±,P<).
M:
markerDL2000;1:
对照组;2:
TNF?
α刺激组;3~7:
依次为姜黄素,,25,50和100mg/L不同浓度组.
图2各组MCP?
1mRNA表达RT?
PCR扩增产物电泳结果(略)
3讨论
姜黄素为姜科姜黄属植物姜黄的主要有效成分,本实验以内皮细胞损伤为基础,从MCP?
1的角度,在分子水平继续探讨姜黄素保护内皮细胞的机制[4].MCP?
1作为一种趋化因子,在致炎因子TNF?
α作用下可诱导其表达[5],MCP?
1表达升高后可引起单核细胞和内皮细胞表达黏附分子、促进炎症因子的释放,从而介导血管内皮细胞的损伤[6],不仅能够促进单核细胞在粥样斑块处的浸润,而且能促进血管壁平滑肌细胞的增殖,对动脉粥样硬化的形成起到重要的作用[8].目前,可抑制细胞中MCP?
1高表达的药物主要有胰岛素、噻唑烷二酮衍生物、二甲双胍、血管紧张素转移酶抑制剂和血管紧张素受体拮抗剂、他汀类药物等[9],而传统中药姜黄素与它们相比则具有毒副作用小,使用安全的优点.
本实验结果显示,常规培养的HUVEC细胞能分泌少量MCP?
1,在TNF?
α(10μg/L)刺激后,MCP?
1分泌显著增加(±)%,与文献报道一致[7-8],当用不同浓度的姜黄素作用于损伤细胞后,与TNF?
α刺激组相比能明显下调MCP?
1mRNA的水平(P<);同时ELISA法也显示,当姜黄素浓度达到100mg/L时,MCP?
1蛋白表达为±,与TNF?
α刺激组±比较,差异具有统计学意义(P<),并且随着姜黄素浓度的升高这种保护作用逐渐增强.我们的实验结果表明姜黄素可以抑制MCP?
1的表达,且具有浓度依赖趋势.因此,我们认为姜黄素抑制MCP?
1的部分机制是从MCP?
1转录水平上实现的,姜黄素所致的MCP?
1mRNA表达下调可减少TNF?
α对HUVEC细胞造成的损伤.核转录因子?
kB(NF?
kB)可能是介导MCP?
1表达和产生的最重要核转录因子,MCP?
1表达增加常与NF?
κB的活化相关[10].而姜黄素是否也通过直接或间接阻断NF?
kB的信号传导途径,抑制其活化,进一步减少MCP?
1的表达,从而起到保护血管内皮的作用还有待更深入的研究.
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