高表达JNK3增进表阿霉素诱导的细胞凋亡.docx

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高表达JNK3增进表阿霉素诱导的细胞凋亡

高表达JNK3增进表阿霉素诱导的细胞凋亡

【摘要】目的:

构建人cJun氨基结尾激酶3(JNK3)真核表达载体,转染HEK293细胞,成立稳固表达细胞系;以表阿霉素作为凋亡诱导剂研究JNK3与细胞凋亡关系.方式:

以pDBLeuJNK3质粒为模板PCR扩增人JNK3基因全长,DNA重组技术将其定向插入到真核表达载体mycHisB,经PCR和酶切鉴定,DNA测序正确,脂质体转染法转染HEK293细胞,通过G418选择培育,成立稳固表达细胞系.RTPCR,WesternBlot检测携带Myc标签的JNK3融合蛋白的表达,流式检测表阿霉素对稳固表达JNK3基因的HEK293细胞的促凋亡作用.结果:

成功构建了JNK3真核表达载体并已稳固转入HEK293细胞,成立了稳固表达细胞系,成功地表达目的基因;与对照细胞相较表阿霉素能明显增进高表达JNK3基因的HEK293细胞发生细胞凋亡.结论:

JNK3稳固表达细胞系的成立和高表达JNK3增进表阿霉素诱导的细胞凋亡,为进一步研究JNK3的功能提供了良好的实验基础.

【关键词】CJum氨基结尾激酶真核表达载体转染因表细胞凋亡

 

  0引言

  cJun氨基结尾激酶(cJunNterminalkinases,JNKs)为丝裂原活化蛋白激酶(mitogenactivatedproteinkinase,MAPK)超家族之一.在脊椎动物,JNK由jnk1,jnk2,jnk3三种基因编码,表达的JNK1,JNK2,JNK3蛋白要紧位于细胞质,为丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶.JNK3与JNK1,JNK2的不同在于:

JNK3有一个与位于JNK1,JNK2的N结尾保守的甲硫氨酸残基融合在一路的延长的N结尾区域[1];JNK1,JNK2在组织内普遍表达,JNK3在脑、心脏、睾丸等组织特异表达.最近几年来研究发觉JNK3参与神经细胞凋亡的调控,可增进缺血、缺氧和有毒化学物质致使的神经细胞的凋亡.目前对JNK3促细胞凋亡机制还不是很清楚.咱们通过构建稳固转染JNK3基因的细胞系,以表阿霉素作为凋亡诱导剂研究JNK3与细胞凋亡的关系,为研究JNK3增进细胞凋亡机制提供细胞模型.

  1材料和方式

  材料菌株JM109,质粒pDBLeuJNK3,mycHisB和HEK293细胞由本实验室保留.DMEM,G418(Gibco公司);胎牛血清(LifeTechnologies公司);PCR及酶切产物纯化试剂盒、质粒DNA小量提取试剂盒、反转录试剂盒(Promega公司);DNAMarker,DNA限制性内切酶(EcoRⅤ,XhoⅠ)、pyrobestDNApolymerase,rTaq酶(TaKaRa公司);T4DNA连接酶(NewEnglandBiolab公司);Trizol、转染试剂脂质体lipofectamine2000(Invitrogen公司);AnnexinⅤFITC试剂盒(晶美生物工程);Myc抗体、actin抗体、HRP标记的羊抗鼠IgG和ECL检测试剂(SantaCruz公司);其余试剂均为国产分析纯.

  方式

  引物设计与合成依照GenBank登录的人JNK3基因的序列(序列号为NM_002753)设计引物,上游引物为:

5′ccggatatcATGAGCCTCCATTTCTTAT3′,下游引物为:

5′ccgctcgagCGCTGCTGCACCTGTGCTG3′,别离在上游引物和下游引物的5′端加入EcoRV,XhoI的酶切位点和3个爱惜碱基,引物由赛百盛公司合成.

  人JNK3基因全长的获取以pDBLeuJNK3质粒为模板,采纳PCR扩增人JNK3基因,全长1269bp.PCR50μL反映体系中加pDBLeuJNK3质粒模板1μL,10×PCRBuffer5μL,mmol/LdNTPMix4μL,10μmol/LJNK3上下游引物各2μL,pyrobestDNApolymeraseμL,加无菌水至50μL.反映条件:

94℃5min;94℃30s,62℃30s,72℃80s,35个循环;72℃10min.PCR产物经10g/L琼脂糖凝胶电泳分离鉴定并胶回收纯化.

  人JNK3真核表达载体的构建将上述PCR产物和mycHisB质粒别离用限制性内切酶EcoRⅤ和XhoⅠ酶切后,10g/L琼脂糖凝胶电泳分离、胶回收纯化,经T4DNA连接酶连接后转化JM109感受态,铺在含氨苄青霉素的LB平板上挑选,选取阳性克隆进行菌落PCR和酶切鉴定,阳性克隆经测序分析后证明并命名为JNK3.

  成立稳固表达人JNK3的HEK293细胞系HEK293细胞在含100mL/L小牛血清的DMEM培育基中,于37℃,50mL/LCO2的饱和湿度下培育.待细胞融合至70%~80%时依照Lipofectamine2000操作说明书进行重组质粒JNK3和空质粒mycHisB的转染.转染48h后,用胰蛋白酶消化细胞,从头铺在直径为10cm的细胞培育皿中,待细胞贴壁后,换含有G418(1400mg/L)的选择性培育基加压培育2wk,每3d换液清除死亡细胞,待细胞培育皿中长出肉眼可见的单克隆时挑选单克隆并依次转移至96孔板、24孔板、6孔板、培育瓶内扩大培育.挑选出的稳固表达人JNK3和Myc标签的HEK293细胞系,别离命名为HEK293JNK3细胞和HEK293mock细胞.

  检测JNK3的表达搜集HEK293JNK3细胞和HEK293mock细胞,按Trizol试剂说明书抽提细胞总RNA,按反转录试剂盒说明书进行反转录.取1μg定量后的RNA,加水补至10μL,70℃10min,加10×反映缓冲液2μL,MgCl24μL,dNTP2μL,OligodT1μL,rRNasinμL,AMV(15U)μL.反映体系共20μL;42℃1h;95℃5min;4℃5min.以GAPDH(900bp)为内参进行PCR反映.在25μLPCR反映体系中加入cDNA模板1μL,10×PCRBufferμL,mmol/LdNTP2μL,10μmol/LJNK3和GAPDH上下游引物各μL,rTaq酶μL,加水补足至25μL,反映条件为:

94℃5min;94℃30s,58℃30s,72℃80s,30个循环;72℃10min.取等体积RTPCR产物进行10g/L琼脂糖凝胶电泳分析.

  Blot检测JNK3蛋白的表达搜集挑选细胞,用含蛋白酶抑制剂的单去污细胞裂解液裂解细胞,4℃,12000g,离心10min,搜集上清.对搜集的蛋白样品进行定量,取20μg处置后的蛋白样品进行SDSPAGE电泳,电转移至PVDF膜上,50g/L脱脂奶粉室温振荡封锁2h,与1∶2000稀释后的Myc一抗4℃孵育留宿,TBST洗膜3次.然后与1∶5000稀释后的HRP标记的二抗室温孵育1h,TBST洗膜3次,ECL显色系统检测目的蛋白,显影.

  流式细胞术检测细胞凋亡对数生长期的HEK293JNK3细胞和HEK293mock细胞,调整细胞计数为2×108/L,接种于50mL细胞培育瓶中,常规培育24h后,同时加入终浓度为,,mg/L的表阿霉素,空白对照组加入等量DMEM,继续培育48h后搜集细胞,进行AnnexinV/PI标记:

将细胞悬浮于250μL结合缓冲液中,调细胞数为1×109/L,加AnnexinV/FITC5μL,20mg/L碘化丙锭溶液10μL,混匀,室温避光孵育15min,用适量稀释缓冲液稀释,流式细胞仪检测.  2结果

  人JNK3基因的扩增PCR扩增产物用10g/L琼脂糖凝胶电泳进行鉴定,所得PCR片段约为1269bp,与预期的人JNK3cDNA全编码区的长度相符(图1).

  真核表达载体JNK3的构建和鉴定挑选出的JNK3阳性克隆质粒经EcoRⅤ和XhoⅠ酶切后取得2个条带(图2),1条为约1300bp大小的目的条带,1条为5500bp大小的空载体条带;以mycHisB载体上的通用引物进行测序,证明JNK3重组质粒插人片段的序列与人JNK3的cDNA序列完全一致,说明人JNK3的真核表达载体构建成功.

  1:

DNAMarker(DL2000);2:

JNK3PCR片段.

  图1人JNK3基因的PCR扩增(略)

  1:

DNAmarker(DL15000);2:

mycHisB;3:

JNK3.

  图JNK3重组质粒的双酶切鉴定(略)

  稳固细胞株的挑选和鉴定提取G418挑选出的稳固细胞株HEK293JNK3和HEK293mock细胞中的总RNA,RTPCR检测JNK3的表达.HEK293JNK3所提RNA能扩增出代表JNK3基因(1269bp)及内参GAPDH基因(900bp)的条带;而HEK293mock细胞所提RNA仅能扩增代表内参GAPDH基因的900bp的条带,说明JNK3基因在稳固细胞株中mRNA水平上取得了表达(图3).提取HEK293mock和HEK293JNK3细胞中的总蛋白,WesternBlot检测JNK3融合蛋白的表达,HEK293JNK3用Myc抗体检测到约46ku的JNK3融合蛋白条带,而HEK293mock对照细胞那么没有相应的条带,说明JNK3基因在稳固细胞株中蛋白水平上取得了表达(图4).

  1:

DNAmarker(DL2000);2:

HEK293mock;3:

HEK293JNK3.

  图3稳固细胞株中JNK3的RTPCR分析结果(略)

  1:

HEK293mock;2:

HEK293JNK3.

  图4稳固细胞株中JNK3融合蛋白的表达(略)

  流式细胞术检测表阿霉素诱导的细胞凋亡用,,mg/L终浓度表阿霉素处置HEK293mock细胞的凋亡率别离为25%,31%,78%;处置HEK293JNK3细胞的凋亡率别离为38%,61%,93%.与HEK293mock细胞相较表阿霉素能明显增进高表达JNK3基因的HEK293细胞发生细胞凋亡(P<).

  图5高表达JNK3增进表阿霉素诱导的细胞凋亡(略)

  3讨论

  JNK信号通路是MAPK中重要的通路之一.由JNK1,JNK2和JNK3成员组成,JNK1和JNK2在组织普遍表达,JNK3局限在大脑、心脏和睾丸表达.最近几年来研究发觉JNK3在帕金森综合征、阿尔茨海默、中风等神经退行性疾病中发挥重要作用[2].JNK3与细胞凋亡紧密相关.稳固转染JNK3p54的PC12细胞,能明显增强UV和紫杉醇诱导的细胞凋亡[3].JNK3和p38增进亚砷酸钠诱导的皮质神经元凋亡[4].JNK3基因敲除小鼠可拮抗兴奋性毒性氨基酸诱导的海马区神经细胞凋亡[5],减少局部脑缺血缺氧致使的神经细胞凋亡[6-7].

  由于JNK3在组织表达超级局限,与细胞凋亡的关系又超级紧密.咱们以pDBLeuJNK3质粒为模板,通过PCR的方式取得人JNK3基因全长,并成功地将其插入mycHisB载体的CMV启动子下面,构建了JNK3的真核表达载体.经PCR和酶切鉴定后,用载体通用引物测序证明序列准确无误后,通过脂质体介导将JNK3重组载体转染HEK293细胞,通过G418挑选成立了稳固表达细胞株,即HEK293JNK3[8].以空质粒转染HEK293细胞为对照,用RTPCR和WesternBlot方式别离从转录水平和蛋白水平检测了JNK3基因的表达,结果说明重组人JNK3基因在HEK293细胞中能被有效地转录和翻译,说明构建稳固表达JNK3细胞株成功.以表阿霉素作为凋亡诱导剂,与空质粒转染HEK293细胞对照相较表阿霉素能明显增进高表达JNK3基因的HEK293细胞发生细胞凋亡,为进一步研究JNK3增进细胞凋亡机制提供了细胞模型.

【参考文献】

 [1]GuptaS,BarrettT,WhitmarshAJ,etal.SelectiveinteractionofJNKproteinkinaseisoformswithtranscriptionfactors[J].EMBOJ,1996,15(11):

2760-2770.

  [2]ResnickL,FennellM.TargetingJNK3forthetreatmentofneurodegenerativedisorders[J].DrugDiscovToday,2004,9(21):

932-939.

  [3]WaetzigV,HerdegenT.ASinglecJunNterminalKinaseIsoform(JNK3p54)IsanEffectorinBothNeuronalDifferentiationandCellDeath[J].JBiolChem,2003,278

(1):

567-572.

  [4]NamgungU,XiaZ.ArseniteinducedapoptosisincorticalneuronsismediatedbycJunNterminalproteinkinase3andp38mitogenactivatedproteinkinase[J].JNeurosci,2000,20(17):

6442-6451.

  [5]YangDD,KuanCY,WhitmarshAJ,etal.AbsenceofexcitotoxicityinducedapoptosisinthehippocampusofmicelackingtheJnk3gene[J].Nature,1997,389(6653):

865-870.

  [6]KuanCY,WhitmarshAJ,YangDD,etal.AcriticalroleofneuralspecificJNK3forischemicapoptosis[J].ProcNatlAcadSciUSA,2003,100(25):

.

  [7]PirianovG,BryweKG,MallardC,etal.DeletionofthecJunNterminalkinase3geneprotectsneonatalmiceagainstcerebralhypoxicischaemicinjury[J].JCerebBloodFlowMetab,2007,27(5):

1022-1032.

  [8]杨俊霞,石华,魏丽丽,等,人MCHR2真核表达载体的构建及稳固转染细胞系的成立[J].第四军医大学学报,2007,28(3):

210-213.

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