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植物细胞工程重点

绪论:

生物技术:

以生命科学为基础,利用生物体系和工程学原理,生产生物制品和创造新物种的一种综合技术。

植物细胞工程:

指在植物细胞水平上进行的遗传操作。

植物细胞工程就是应用植物细胞生物学和分子生物学的理论和技术,在细胞水平上离体培养或遗传操作,以达到快速繁殖、改良品种或生产更多更好的植物产品的工程学科。

植物细胞工程的内容研究植物器官、组织、细胞在离体培养时需要的有机营养、无机营养、植物激素、温度、湿度、光照等环境条件以及发育阶段和基因等的遗传操作。

植物细胞工程内容可分为:

器官培养,胚胎培养,组织培养,原生质体培养。

延伸内容:

植物脱毒培养、突变体筛选、细胞杂交、超低温冷冻储藏和人工种子等。

植物细胞的全能性:

每个植物细胞在适合条件下具有发育成完整植物个体的潜在能力。

原理:

生物体的每一个细胞都包含有该物种所特有的全套遗传物质,都有发育成为完整个体所必需的全部基因。

(1)受精卵的全能性最高

(2)受精卵分化后的细胞中,体细胞的全能性比生殖细胞的低。

分化:

细胞在形态、结构和功能上发生永久性的适度变化的过程。

脱分化:

有高度分化能力的组织或器官产生愈伤组织的过程。

再分化:

脱分化后的细胞再次分裂、分化并形成不同组织、进而构成器官和植株的过程。

愈伤组织:

当将离体组织或器官放在培养基上进行离体培养事,这样离体组织或器官就会进行细胞分裂,形成一种高度液泡化的呈无定形的薄壁细胞,称为愈伤组织。

外植体:

指用于植物培养的接种材料,包括植物体的各种器官、组织、细胞和原生质体等

植物培养条件:

基本培养基、适宜的植物激素、适宜的温度空气、无菌环境、适合的pH、适时光照等。

胚状体:

指植物细胞、组织或器官的离体培养中,起始于一个非合子细胞,并经过胚胎发育过程分化出的类似胚一样的细胞群。

胚状体产生的四种方式:

1.直接在器官上发生、2.培养物先形成愈伤组织,再由愈伤组织分化成胚状体、3.在花药培养中,由小孢子发育成胚状体、4.在单细胞和原生质体培养中,先由细胞行程一个胚性细胞团,再由胚性细胞团上的细胞发育成胚状体

诱导胚状体途径的优点:

1数量多2.速度快3.结构完整

植物细胞工程的应用:

1.快速繁殖2.快速繁殖实现工厂化育苗特点:

繁殖快,性状稳定,整齐一致,无病虫害,周期短,周年生产。

3.种苗脱毒(茎尖培养可以得到无病毒苗木)4.细胞育种

(1)利用培养变异,筛选优良突变体

(2)利用细胞融合技术,克服远缘杂交不亲和性。

4.药用植物的工厂化生产

第一章:

实验室设计:

应选择采光好、通风好、环境干净的地点,以利于培养的顺利进行和降低培养过程的污染率。

植物组织培养的实验室,通常包括通用实验室,接种室,恒温培养室,检查培养情况并做记录的细胞学实验室。

对玻璃器皿要求:

1.耐腐蚀;耐高温、高压2.透明度好;3.便于接种。

第二章:

培养基的成分:

1.无机营养物(无机盐)2.碳源和能源3.维生素类4.氨基酸及有机附加物(氨基酸、维生素、肌醇、天然复合物)5.植物生长调节物质6.琼脂7.活性炭

无机营养物(无机盐):

大量元素CHONPSKCAMgCl微量元素FeMnBZnMoCuCo

N:

蛋白质、酶、叶绿素、维生素、核酸、磷脂、生物碱等的组成成分,在植物生命活动中占有重要的位置。

满足培养物对氮的需求,胚胎发生所需要的元素之一

P:

磷脂的主要成分,参与植物生命活动中核酸以及蛋白质合成、光合作用、呼吸作用以及能量储存、转化与释放等重要的生理过程

K:

对碳水化合物合成、转移、以及氮素代谢等有密切关系。

Mg、S、Ca:

叶绿素的组成成分,又是激酶的活化剂,对核蛋白体结构具有稳定作用;

S:

含S氨基酸的蛋白质的组成成分。

Ca:

构成细胞壁的成分,对细胞分裂,稳定质膜结构有显著作用,此外,Ca及钙调素在细胞信号转导中起重要作用。

铁:

氧化酶的组成成分,又是叶绿素形成的必要条件。

硼:

与蛋白质合成、糖类运输有着密切的关系;

铜:

某些氧化酶的成分,能够促进离体根的生长;

锰:

与植物的光合、呼吸代谢;

钼:

参与氮素的代谢;

氯:

光合作用水光解的活化剂。

VB1:

促愈伤组织产生,提高活力

VB6:

促根生长 

Vpp(烟酸):

与代谢和胚发育有关

Vc:

防组织褐变

肌醇:

促进愈伤组织生长、胚状体和芽的形成,对组织细胞繁殖、分化的促进作用

天然复合物:

提供一些必要的微量营养成分、生理活性物质和生长激素等

碳源和能源:

主要是蔗糖、葡萄糖。

作为离体组织赖以生长的碳源,使培养基维持一定的渗透压

植物生长调节物质:

1.生长素类种类:

IBA—吲哚丁酸;IAA—吲哚乙酸;NAA—萘乙酸;2,4-D---2,4-二氯苯氧乙酸。

作用 诱导愈伤组织和根分化,促进细胞分裂和伸长。

配制生长素可溶解在稀NaOH中或溶于乙醇。

2.细胞分裂素类(CTK)种类:

6-BA---苄氨基腺嘌呤、Kt---激动素、2-iP---异戊烯腺嘌呤、ZT-玉米素、TDZ作用:

促进细胞的分裂和器官的分化,延缓组织的衰老,增强蛋白质的合成,一直顶端优势,促进侧芽的生长及显著改变其他的激素作用。

生长素/细胞分裂素:

高:

有利于根的形成和愈伤组织的形成;适中:

有利于根芽的分化;

低:

有利于芽的形成

赤霉素:

促茎伸长,促胚发育成植株;打破休眠;一般在器官形成后加入。

琼脂:

固化作用

活性炭:

吸附作用,利于某些植物生根,有利于胚胎培养

抗生素:

抑制内生菌

抗氧化物:

防止氧化

配制培养基母液时要用蒸馏水或重蒸馏水,以保持母液及培养基成分的精确性,防止贮藏过程发霉变质。

药品:

应选取等级较高的化学纯(CP)或分析纯(AR)

母液(贮备液,stocksolution)配制的目的:

1)方便配制其他培养基;

2)保证各物质成分的准确性及配制时的快速移取

3)便于低温保藏。

母可分别配成大量元素、微量元素、铁盐、有机物和激素类等。

母液配制方法:

(1)单配法:

将培养基配方中的各种成分分别配成一定浓度的母液。

(2)混配法:

将几类营养成分按配方中的用量扩大一定倍数称量,分别溶解后每一类混合在一起定容到一定体积配成混合母液.

培养基的种类:

根据其态相不同分为固体培养基和液体培养基,根据培养物的培养过程分为初代培养基和继代培养基,根据其作用不同分为诱导培养基、增殖培养基、生根培养基,根据其营养水平不同分为基本培养基和完全培养基。

第三章

茎尖是最好的部位:

形态已基本形成,生长速度快,遗传性稳定,也是获得无病毒苗的重要途径

外植体选择的原则:

1.培养材料的来源是否保证

2.是否会引起不良变异。

3.叶片的来源最有保证,许多植物的组织培养以叶片为外植体。

4.对一些培养较困难的植物,利用子叶或下胚轴

取材季节:

在生长开始的季节取材,若在生长末期或已进入休眠时取样,则外植体可能对诱导反应迟钝或无反应。

器官的生理状态和发育年龄:

1.通常年幼组织比年老组织有较高的形态发生能力,容易培养,有较大的再生能力。

2.植物上部器官的生长时间虽短,其生理年龄却较老。

而越向基部,则生理年龄越小。

3.上部组织容易形成花器官,下部组织越易形成营养器官。

选取适宜大小:

材料太大易污染;材料太小,难于成活。

外植体的灭菌方法

预处理:

先对植物组织修整,去掉不需要的部分,流水中冲洗干净。

70%的酒精中约30s,用0.1%的升汞(HgCl2)中浸泡5-10min,无菌蒸馏水冲洗3~5次

污染——是指在组织培养过程中培养基和培养材料滋生杂菌,导致培养失败的现象。

第四章:

接种:

把经过表面消毒后的植物材料切碎或分离出器官、组织、细胞,并将它们转到无菌培养基上的全部操作过程。

注意接种操作,防止污染,分布均匀(外植体必须与培养基紧密接触,在培养容器内均匀分布,以保证营养的充分利用,以及光照条件均匀一致),注意对象:

2.种子和分生组织:

培养时通常将其贴放在培养基表面,而不是插到培养基内部,以免供氧不足。

3.接种茎段:

注意形态学下端插入培养基内,而形态学上端露于空气中

4.接种带腋芽的茎段:

将茎段平放在培养基上,可破除顶端优势,有利腋芽生长。

培养方法:

固体培养和液体培养。

固体培养:

优点:

简单,应用广泛。

缺点:

1.外植体或愈伤组织只有底部表面接触培养基、吸收养分,造成各部分营养浓度差异,影响生长。

2.外植体插入培养基后,气体交换不畅及排泄物质积累,影响组织吸收和造成毒害。

3.受光不均匀,生长不一致。

液体培养:

分静止培养和振荡培养(连续浸没,定期浸没)

静止液体培养优点:

1.培养基中不出现营养物浓度差异的现象,用来进行许多营养方面的研究工作。

2.静止培养不需增添专门设备,适合于某些原生质体培养;

振荡液体培养:

(1)连续浸没:

搅动或振动培养液使组织悬浮于培养基中。

培养液的体积约占容器体积的20%,以确保最大的气相表面,造成较好的通气条件。

(2)定期浸没:

组织块时而在液体中时而在气体里,这样既可保证培养基的充分混和,又保证了组织块呼吸所需的气体交换。

外植体的培养条件:

光照、温度、湿度、氧气和培养基的pH值、气体等

褐变:

是指外植体在培养过程,自身组织从表面向培养基释放出褐色物质,以致培养基逐渐变成褐色,外植体也随之变褐而死亡的现象。

褐变的原因

1.褐变与外植体组织中所含的酚类化合物和多酚氧化酶有关。

2.通常酚类化合物和多酚氧化酶分隔存在,比较稳定。

3.当切割外植体后,切口附近的分隔作用破坏,酚类与多酚氧酶接触,酚类迅速氧化成褐色的醌类物质和水,

4.醌类又会在酪氨酸酶等的作用下,与体内的蛋白质发生聚合,进一步引起其他酶系统失活,从而导致代谢紊乱,生长停滞,最终衰老死亡。

防止褐变的措施:

1.温度过高或光照过强,诱导多酚氧化酶的活性提高,从而加速外植体的褐变。

2.液体培养基可有效克服外植体褐变。

原理:

在液体培养基中,外植体溢出的有毒物质可以很快扩散,因而对外植体造成的伤害较轻。

3.培养基中无机盐浓度过高,酚类物质将会大量外溢。

4.黑暗条件下,生长调节物质的存在会影响褐变。

细胞分裂素6-BA或KT不仅能促进酚类化合物的合成,而且还能刺激多酚氧化酶的活性。

生长素类如2,4-D和IAA可延缓酚类化合物的合成,减轻褐变现象发生。

5.加抗氧化剂6.加吸附剂、活性炭6.培养基的pH值较低时,可降低多酚氧化酶活性和底物利用率,从而抑制褐变。

外植体的玻璃化:

指组培苗出现的一种生理失调或生理病变,叶、嫩梢呈水晶透明或半透明、发生异常的现象。

玻璃化的危害性:

由于其组织畸形,吸收养料与光合器官功能不全,分化能力大大降低,因而很难继续用作继代培养和扩大繁殖的材料;加上生根困难,很难移栽成活。

预防玻璃化的措施:

1)适当提高培养基中蔗糖和琼脂的浓度

2)适当降低细胞分裂素和赤霉素的浓度

3)适当控制培养基中无机营养成分

4)增加自然光照,控制光照时间

5)控制好温度

6)改善培养器皿的气体交换状况

7)在培养基中添加其它物质

第五章:

愈伤组织的形成:

从外植体脱分化形成典型的愈伤组织大致可分为三个时期:

起始期,分裂期,形成期。

起始期:

1.细胞准备进行分裂的时期。

2.外植体的细胞处在静止状态。

3.刺激因素(如机械损伤、改变光照强度、增加氧等)和激素的诱导作用,使外植体细胞的合成代谢活动加强,蛋白质和核酸的合成,诱导细胞开始分裂。

分裂期:

外植体细胞经过诱导以后脱分化,不断分裂增生子细胞的过程。

细胞的主要表现:

1.外层细胞在外源激素的作用下,迅速分裂,使得外层细胞数目增加,

2.细胞体积缩小,细胞的核和核仁增大到最大。

逐步回到分生组织状态。

3.随着细胞不断分裂和生长,细胞总干重、蛋白质和核酸量大大增加,新细胞壁合成极快。

细胞分裂快,结构疏松,缺少有组织的结构,维持其不分化的状态,颜色浅而透明。

形成期:

指在分裂期的末期,细胞内开始出现一系列形态和生理上的变化,从而使愈伤组织内产生不同形态和功能的细胞。

细胞特点:

1.细胞分裂部位和方向发生改变:

内部细胞发生分裂,形成像维管束或类似分生组织,组成的鸟巢状结构。

2.细胞的体积相对稳定,不再减少。

3.出现了各种类型的细胞:

如管胞、纤维细胞、薄壁细胞、分生细胞、色素细胞等。

4.生长旺盛的愈伤组织呈乳白色、白色或浅绿色,老化的多转化为黄色或褐色。

愈伤组织生长周期:

愈伤组织生长周期为2-4周。

1.在培养基上生长一段时间以后,由于营养物质枯竭,水分散失,或有毒代谢物的积累,导致愈伤组织停止生长,甚至老化变黑、死亡。

2.转移到新鲜培养基:

定期地将它们分成小块,接种到新鲜的培养基上,可以长期保持旺盛的生长。

影响愈伤组织形成的主要因素

(1)不同植物和外植体诱导愈伤组织能力的差异。

(2)培养基种类对愈伤组织诱导的影响。

(3)外源激素对愈伤组织诱导的影响---重要因素。

(4)培养条件对愈伤组织诱导的影响:

湿度条件、温度条件、光照条件。

愈伤组织中的形态发生方式:

愈伤组织器官发生和通过体细胞胚胎/胚状体途径再生植株

愈伤组织器官发生:

1.先不定芽,在茎基部长根2.先长根后长芽3.在不同部位分别形成根和芽

影响愈伤组织器官发生的因素:

(1)外植体自身因素(内因)①母体植株的遗传基础②外植体的类型

(2)植物激素的作用(外因):

适宜的植物激素配比在器官分化中有着重要的作用。

生长素/细胞分裂素

体细胞胚发生途径:

胚状体/体细胞胚(embryoid):

指植物细胞、组织或器官的离体培养中,起始于一个非合子细胞,并经过胚胎发育过程分化出的类似胚一样的细胞群。

体细胞胚的产生方式

1)直接在器官上发生

2)悬浮培养细胞发生途径

3)愈伤组织发生途径:

幼胚、胚和子叶

4)单细胞发生途径:

花药培养中的小孢子发育成

4)原生质体发生途径

体细胞胚状体诱导的影响因素

1)生长素

2)其他植物生长物质的作用

3)氨源形态的影响

4)其他培养条件对胚状体发生的影响

体细胞胚途径再生植物的优点:

1)数量比不定芽多

2)获得速度快

3)结构完整

4)胚状体可制成人工种子,便于运输和保存;

5)胚状体的有性后代遗传性更接近母体植株。

人工种子:

人工种子是指外面包裹一层有机薄膜的植物胚状体。

胚状体或芽:

有生命的物质结构。

人工胚乳:

供胚状体维持生命力。

人工种皮:

保护作用。

人工种子的优点:

1)结构完整,体积小,便于贮藏与运输,可直接播种,易于机械化操作;

2)不受季节限制,不受环境制约,胚状体数量多、繁殖快、有利于工厂化生产;

3)有利于繁殖生育周期长、自交不亲合、珍贵稀有的一些植物,也可大量繁殖无病毒材料;

4)加入抗生素、农药、菌肥等成分,提高人工种子活力和品质;

5)由无性繁殖体系产生胚,固定杂种优势。

局限性:

1.人工种皮尚不尽如人意,贮藏困难

2.生产成本高

3.流程复杂

第六章:

营养器官培养:

主要指植物根、叶、茎、花、果实等器官在离体条件下,在无菌的人工环境种做进一步培养发育,最终长成幼苗的过程。

特点:

能保持它们所具有的特征性结构,通过器官培养可快速大量地繁殖。

离体根的无性系:

由单个直根衍生,并经继代培养而保持遗传性一致的根的培养物。

根培养的意义:

v1)进行根系生理、代谢研究的最优良实验体系;

v2)研究器官分化、形态建成的良好体系;

v3)可建立快速生长的根无性系。

茎的培养分为茎尖培养和茎段培养

茎段培养:

指带有腋(侧)芽或叶柄、长数厘米的茎节段进行离体培养。

植物生长调节剂的影响

◆植物生长抑制剂三碘苯甲酸促进嫩茎增殖。

◆6-BA1-3mg/L促进茎增殖有效,浓度高会减少茎的伸长,也对下一步生根起抑制作用。

◆赤霉素抑制月季茎的增殖。

茎培养的意义:

v无性系快速繁殖;

v培养无病毒苗,品种改良;

v理论基础研究。

叶的培养:

很多植物的叶片具有很强的再生能力,由于取材方便,数量多且均一性较强,可以作为适宜的外植体。

叶培养的意义:

1)研究叶形态建成、光合作用、叶绿素形成的好方法

2)通过叶组织的脱分化与再分化证实叶细胞的全能性

3)通过叶组织培养,探索离体叶组织培养的条件和影响因素

4)建立体细胞快速无性繁殖体系

5)叶细胞培养物经诱变筛选突变体。

第七章

植物离体快速无性繁殖:

利用离体培养技术,用优良植株的外植体进行培养,在短期内获得大量遗传一致的个体的方法;所获得的株群称单株无性系或单芽无性系。

与传统无性繁殖方式的区别:

繁殖速度快,不受自然的干扰,使育苗工厂化。

植物快繁的类型与器官形成方式:

1不定芽型2器官型3器官发生型4胚状体发生型5原球茎发生型

不定芽型:

诱导顶端分生组织产生不定芽,再生成植株的方式。

特点:

1.繁殖率高

2.利用外植体原有的芽,包括隐芽在内繁殖数量大,

3.能保持物种遗传稳定性。

器官型:

从器官外植体诱导不定芽,再生成植株的方式。

特点:

遗传稳定性较好,但繁殖速度慢。

器官发生型:

从器官外植体诱导愈伤组织,经愈伤组织细胞的分化再生成植株的方式。

器官发生型的特点:

1.繁殖速度快,2.由于经愈伤组织而再生成植株,遗传稳定性较差。

胚状体发生型:

由植物器官、组织和细胞培养而直接发生胚状体,最后以胚状体成苗的方式。

胚状体发生型的特点:

⏹遗传稳定性一致,

⏹部分植物体细胞发生数量相当大。

兰球茎型大:

部分兰花属于这一类型。

原球茎是兰花种子萌发时产生的呈珠粒状、缩短的、类似嫩茎的器官。

继代培养:

是初代培养之后的连续数代的扩繁殖培养过程。

继代培养过程中会产生两两种现象,即驯化现象和衰退现象

驯化(acclimation):

在开始继代培养需要加入生长调节物质,其后加入少量或不加入生长调节物质就可以生长的现象。

原理:

继代培养中细胞积累了较多的生长物质,因此逐渐减少对外源生长物质的需要。

衰退(recession):

长期培养的材料也会逐渐衰退,丧失形态发生能力,表现为生长不良,再生能力和增殖率下降等。

分化能力衰退的机理:

1)愈伤组织中含有从外植体启动分裂时就包括进来的成器官中心(分生组织),当重复继代会逐渐减少或丧失,影响形成维管束,只能保持无组织的细胞团。

2)继代培养过程中,逐渐消耗了原有的与器官形成有关的特殊物质。

3)内源生长调节物质的减少或丧失。

4)细胞染色体出现畸变,数目增加或丢失。

影响继代培养的因素:

(1)植物材料的影响

(2)培养基及培养条件

(3)继代培养时间长短

(4)季节的影响

植物脱毒方法:

物理方法,化学方法,生物方法

物理方法:

(一)高温处理又称温热疗法

某些病毒受热以后不稳定,失去活性

(1)温汤浸渍处理

(2)热风处理

热处理的局限性

1.并非所有的病毒都对热处理敏感。

只对等径、线状的病毒和类菌质体起作用。

2.延长热处理时间,病毒钝化效果好,同时也可能会钝化植物组织中的抗性因子而降低处理效果。

3.影响植株存活。

(二)低温处理,亦称冷疗法。

化学方法:

化学处理,又称化学疗法。

一些化学药品如嘌呤和嘧啶类似物、氨基酸、抗生素处理,可抑制植物体内或离体叶片内病毒的合成,但仍不能使病毒失活。

生物学方法:

茎尖培养

微体嫁接脱毒

愈伤组织脱毒

珠心胚培养脱毒

花药培养脱毒

为什么茎尖培养能够除去病毒?

1.病毒的移动2条途径:

2.一是通过维管系统,而分生组织中尚未形成维管系统;二是通过胞间连丝,但这条途径病毒移动速度非常慢,赶不上茎尖和根尖细胞不断分裂和活跃的生长速度。

微体嫁接脱毒:

小茎尖(0.14~1.0mm)嫁接到无病毒的试管实生苗砧木,培育在培养基上,可获得无病毒的幼苗

愈伤组织脱毒:

感染病毒的愈伤组织细胞并非全部含有病毒。

原因:

可能因为细胞增殖速度快过病毒复制速度,或者细胞产生变异,获得对病毒感染的抗性,最终表现出脱毒现象。

缺陷:

后代变异的几率大;有的愈伤组织不能分化成苗。

珠心胚培养脱毒:

珠心胚:

柑橘类多胚品种中除一个受精胚以外,尚有多个由珠心细胞形成的无性胚;

原理:

珠心胚与维管束系统无联系,因此由珠心胚产生的植株全部均无病毒。

珠心胚大多是不育的,必须分离培养才能发育成正常的幼苗。

花药培养脱毒:

花药培养获得单倍体植物,经染色体加倍后即为无病毒植株。

脱毒植物鉴定:

鉴定原因:

1.脱毒率非常低,有时无毒株只占千分之几。

2.病毒具有延迟的恢复期,所以在最初18个月中每隔一定时间仍需进行鉴定。

鉴定方法:

直接测定法、指示植物法、抗血清鉴定法、酶联免疫吸附法、电子显微镜检查法、免疫吸附电镜法。

脱毒苗在生产中的应用:

脱毒苗用于生产可以明显提高产量和质量,一般产量可提高30%以上。

无病毒苗的长期保存:

在培养基中加生长延缓剂,低温保存,超低温保存

第八章

花粉是花粉母细胞(小孢子母细胞)经过减数分裂而形成的,因此,花粉是单倍体的生殖细胞。

单倍体细胞(haploidcell):

植物的花粉是花粉母细胞经减数分裂形成的,其染色体数目只有体细胞的一半。

花粉和花药的培养(pollenandantherculture)是指花粉在培养基上改变其正常发育和机能,不经受精而发生细胞分裂,由单个花粉粒发育成完整植株的技术。

单倍体植物(haplobiont):

用离体培养花药的方法使花粉发育成一个完整的植株。

花药培养:

是将花粉发育至一定阶段的花药接种到人工培养基上进行培养,以形成花粉胚或愈伤组织进而分化成植株的技术。

花粉培养:

是将花粉从花药中分离出来进行离体培养的过程。

花药制备与培养

取材要求:

小孢子发育时期在单核晚期。

注意:

1.防止损伤花药:

操作过程中注意不要损伤花药,不要直接夹花药,若受损伤,则应淘汰。

因为损伤常常会刺激花粉壁形成二倍体的愈伤组织。

2.去掉花丝:

为了去掉体细胞

单倍体植株的二倍化:

自发加倍

优点:

不会出现核畸变,

缺点:

加倍频率极低;

人工加倍

用秋水仙碱处理单倍体可使加倍频率提高

从愈伤组织再生

把单倍体植株的茎、叶柄或根的节段,诱导形成愈伤组织,把这种愈伤组织转移到分化培养基上,在再生植株中将出现许多二倍体植株。

子房培养:

子房培养是指将子房从母体上分离出来,在无菌的人工环境条件下培养,使其生长发育形成幼苗的过程。

分为授粉子房培养和为授粉子房培养

未授粉子房

性细胞(卵细胞、助细胞、极核、反足细胞)----胚状体或愈伤组织----雌性单倍体植株

体细胞(珠被、子房壁)---胚状体或愈伤组织----二倍体植株;

受粉子房:

获得成熟果实或者具有生活力的种子

胚珠培养:

分为受精胚珠的培养和未受精胚珠培养

受精胚珠:

一是形成种子;二是形成愈伤组织

未受精胚珠:

形成单倍体植株

子房胚珠的培养应用

1.挽救杂种胚,促进原胚继续生长,使杂种幼胚发育成熟;

2.未授粉胚珠和子房,诱导孤雌生殖,产生雌性单倍体

离体受精:

从花粉萌发到受精形成种子,从种子萌发到幼苗形成的整个过程,均在试管内完成,称为离体受精,或试管受精

离体受精:

子房试管受粉:

人工方法把花粉直接引入子房,使花粉粒在子房腔内萌发并完成受精过程。

精卵细胞融合法:

微电融合、高钙高PH介导融合、一般钙条件下融合、PEG诱导融合

离体受精的意义:

1.离体受精技术在克服自交不亲和性与远缘杂交障碍,特别是克服花粉在柱头上不萌发或萌发后不能进入花柱,或在花柱中生长缓慢,使配子不能如期融合方面有着极其重要的意义。

2.另外,试管受精技术也为外源特异基因的有性转移,诱导遗传变异开辟了一条新途径

胚培养:

采用人工的

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