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3.3.4初次样品的抽取初次样品的抽取方法关系着样品的代表性。

遵从随机原则,采用正确的抽样技术,可以减少误差.提高样品的代表性。

从每个取样的容器中,或从容器的各个部位,或从散装大堆的

各个部位扦取重量大体上相等的初次样品。

装在容器(包括袋装)中

的种批,应在整个种批中随机选定取样的容器。

从选定的容器的上、中、下各部位扦取初次样品,但不一定要求每袋都抽取一个以上部位。

种子是散装或在大型容器里的,应随机从各个部位及深度扦取初次样品。

对于不易流动的粘滞性种子.可徒手取得初次样品。

对于装在

小型或防湿容器(如铁罐或塑料袋)中的种子,如有可能,应在种子装入容器前或装入容器时扦样。

如没有这样做,则应把足够数量的容器打开或穿孔取得初次样品。

然后将扦样后的容器封闭或将种子装入新的容器。

335混合样品的取得如果初次样品外观一致,可将其合并混合成混合样品。

3.3.6送检样品的取得用342中的方法之一,将混合样品缩减至适当样品大小而取得。

3.3.7送检样品的发送送检样品用木箱、布袋等容器密封包装。

加工时种翅不易脱落的种子,需用木箱等硬质容器盛装,以免因种翅脱落增加夹杂物的比倒。

供古水量测定的和经过干燥含水量很低的进检样品要装在可以密封的防潮容器内,并尽量排出其中空气。

种子健康状况测定用的送检样品应装在玻璃瓶或塑料瓶内。

送检样品必须填写

两份标签.注明树种、检验申请表(见附录c表c1)编号和种批号,一一份放人袋内,另一份挂在袋外。

送检样品要尽快连同检验申请表寄送种子检验机构。

3.4实验室的抽样方法

341测定样品的最低重量各个检验项目测定样品的最低重量在本规程有关章节中做出规定。

342测定样品的取得测定样品应对送检样品有最大的代表性,测定样品的数量应略多于规定数量。

取得测定样品的方法是将送检样品充分混合并反复对半分取。

以下两个方法可以选用:

a)四分法将种子均匀地倒在光滑清洁的桌面上,略成正方形。

两手

各拿一块分样板,从两侧略微提高地把种子拨到中间,使种子堆成长方形,再将长方形两端的种子拨到中央,这样重复3〜4次,使种子

混拌均匀。

将混拌均匀的种子铺成正方形,大粒种子厚度不超过10

cm,中粒种子厚度不超过5cm,小粒种子厚度不超过3cm。

用分样板沿对角线把种子分成四个三角形,将对顶的两个三角形的种子装入容器中备用.取余下的两个对顶三角形的种子再次混合,按前法继续

分取,直至取得咯多于测定样品所需数量为止。

b)分样器法适用于种粒小的,流动性大的种子。

分样前先将送检样

品通过分样器,使种子分成重量大约相等的两份。

两份种子重量相差不超过两份种子平均重的5%时,可以认为分样器是正确的,可以使用;

如超过5%,应调整分样器。

分样时先将送检样品通过分样器三次,使种子充分混合后再分取样品.取其中的一份继续用分样器分取.直到种子缩减至略多于测定样品的需要量为止。

3.5样品保存

3.5.1种子检验机构收到送检样品后,要按跗录E表EI登记,并即进行检验。

一时不能检验的样品应存放在凉爽、通风良好的室内或冰箱中,使种子品质的变化降到最低限度。

检验机构对保存的样品发生的劣变不承担责任。

高含水量的种子难以妥善贮藏,应尽快检验。

3.5.2为了便于复验,送检样品自发证之日起要放在适宜条件下保存四个月,使种子品质的变化降至最低限度。

低含水量的种子样品放入密封的塑料袋中,在3〜5'

c下可以保存很长时间不会变化。

供测定含水量和测定种子健康状况的进检样品,检验后不必保存。

4净度

分析4.1目的测定供检验样品中纯净种子、其他植物种子和夹杂物的重量百分率,据此推断种批的组成。

4.2定义

4.2.1净度测定样品中纯净种子重量占测定后样品各成分重量总和的

百分数。

4.2.2纯净种子

a)送检者陈述的种或分析中发现的主要种(包括该种的变种和栽培品种)的种子,是完整的、没有受伤害的,发育正常的种子;

发育不完全的种子和不能识别出的空粒;

虽已破口或发芽.但仍具发芽能力的种子。

b)带翅的种于中,凡加工时种翅容易脱落的.其纯净种子是指除去种翅的种子;

凡加工时种趣不易脱落的,则不必除去,其纯净种子包括留在种子上的种翅。

附录F表Fl乔灌木种子不意图可以帮助检验人员作出判断。

c)壳斗科的纯净种子是否包括壳斗,取决于各个种的具体情况;

壳斗

容易脱落的不包括壳斗;

难于脱落的包括壳斗。

d)复粒种子中至少含有一粒种子的。

423其他植物种子分类学上与纯净种子不同的其他植物种子。

424夹杂物

a)能明显识别的空粒、腐坏粒、已萌芽因而显然丧失发芽能力

的种子;

b)严重损伤(超过原大小一半)的种于和无种皮的裸粒种子;

c)叶片、鳞片、苞片、果皮、种翅、壳斗、种子碎片、土块和其他杂质{

d)昆虫的卵块、成虫、幼虫和蛹。

425粘滞性种子

由于结构或质地上的特点这类种子可分为:

a)容易相互粘附或容易粘附在其他物体(如包装袋、分样器等)

上I

b)容易被其他植物种子牯附.或容易粘附其他植物种子}

c)不易被清选、混合或扦样。

如果全部粘滞性结构(包括粘滞性杂质)占一个样品的三分之一或更多,就认为该样品是有粘滞性。

例如冷杉属、翠柏属、雪松属、扁柏属、柏术属-柳杉属、杉木属、落叶松属、云杉属、长叶松、冈"

松、黄杉属、红杉属、巨杉属、落羽杉属、铁杉属、槭屈、臭椿属、桤术属、桦木属、鹅耳枥属、梓属、石竹属、桉属、水青冈

属、银桦属、女贞属、枫香属、鹅掌楸属、悬铃木属、竹类、扬属、香椿属、丁香属、崖柏属、椴树属、榆属、榉属等都是粘滞性种子,应用容许差距表2、表3时.应当使用粘特性种子栏的容许误差。

见附录F表F1乔灌木种子示意图。

4.3原则

将删定样品分成纯净种子、其他植物种子和夹杂物三个组成部分,并测定各部分的重量百分率。

样品中所有植物种于和各种夹杂物,应尽可能加以鉴定。

样品中含有两十或两个以上的种难以区分时,允许只填报其属名,符合422定义的该属的全部种子均为纯净种子。

4.4程序

4.4.1测定样品

a)进检样品中混有较大的或多量的夹杂物时,要在样品称重后,分取测定样品前.进行必要的清理并称重。

用经过初步清理后的送检样品分取测定样品进行净度测定。

b)净度分析用的测定样品的最低量见附录A表A1规定。

除种粒大的至少为500粒外,其他树种通常要求至少含有纯净种子2500粒。

c)测定样品可以是按附录A表A1规定重量的一个测定样品(一个全样品),或者至少是这个重量一半的两个各自独立分取的测定样

品(两个“半样品”)。

必要时也可以是两个全样品。

d)为使百分数可以计算到一位小数。

样品的总体及其各个组成成分的称量精度要求见表1,

表1净度分析样品的总体及各个组成成分的称量精度I

测定样品重.g

称重至小数位数

(全样品或半

(全样品或半样品”及其

样品”)

组成)

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3

10.00〜99.99

2

100.0〜999.9

1

1000或1000

e)用称量发芽法检验时,不必测定净度,遇有大的杂质,可按a)处理。

442分离

测定样品称重后,按4.2将其中各种成分分离.分别按4.4.1d)要求的精确度称量,填人附录C表C2。

4.5结果计算

4.5.1全样品的原重减去净度分析后纯净种子、其他植物种子和

夹杂物的重量和,其差值不得大于原重的5%,否则需重做。

4.5.2用两个“半样品”时,每份“半样品”各自将所有成分的重量相加,如果同原重量的差距超过原重量5%,需再分析两个“半

样品”。

4.5.3分别计算两个“半样品”或两十全样品每个成分的重量占各成分重量之和的百分率(至少保留两位小数),并根据4.5.4、4.5.5和4.5.6的规定,检查两份全样品、两份“半样品”每个成分分析结果之间的差异是否超过容许差异。

如果各个成分均在容许范围之内,可以计算并在质量检验证书中填报每个成分重量百分数的平均数。

任何一个成分的分析结果超过了容许差距,均按以下程序处理:

4.5.3.1在使用“半样品”的情况下•再分析一对“半样品”(但总共不必多于四对).直至对“半样品”各成分的差距均在窖许范围之内。

将其成分的差异超过容许差距两倍的成对样品舍去不计,根据

其余各对的数据计算各个成分的百分数的平均值。

4.5.3.2在使用两份全样品的情况下,再分析一份样品。

只要最高值和最低值的差异未超过容许差距的两倍,就取这三次分析的平均值填报。

除非其中有的结果显然是由于差错而不是随机样品误差引起的-在这种情况下.将错误的结果舍去不计。

4.5.4表2用于同一实验室,对同一进检样品的净度分析结果重复间的比较,适用于任何成分。

使用时先接两次分析结果的平均值从栏I或栏2中找到相应的行,根据种子是否为粘滞性种子和分析的是半样品还是全样品,从栏3至栏6之一栏中找出其相应的容许差距。

4.5.5表3用于来自同一种批的两个不同进检样品的净度分析,两次分析可能是在相同或不同实验室进行,且当第二次分析结果低于第一次分析结果时使用,适用于任何成分。

使用时先按两次分析结果的平均值从栏1或栏2中找到相应的行.再根据种子是否为粘滞性种

子从栏3或栏4中找出其相应的容许差距。

4.5.6表4适用于来自同一种批的两个不同送检样品的净度分析,两次分析可以在相同或不同实验室进行,适用于净度分析中任何

成分的比较.以确定两个估算值是否一致。

使用时先按两次分析结果的平均值从栏1或栏2中找到相应的行,根据种子是否为粘滞性种子从栏3或栏4中找出其相应的容许差距。

表2同实验室同送检样品净度分析容许差距(5%显著水平的两尾测定

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