精品蔗糖酶的提取纯化及蛋白质含量测定研究Word格式.docx
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醋酸钠；
甲苯；
95%乙醇；
0.5mol/LTris-HClpH7.3缓冲液；
4mol/L醋酸；
0.05mol/LTris-HClpH7.3缓冲液；
1mol/LNaCl的0.05mol/LTris-HClpH7.3缓冲液；
0.5mol/LNaOH;
Q-Sepharose；
DNS；
葡萄糖标准溶液；
0.2mol/LpH4.6醋酸缓冲液；
2mol/LNaOH;
5%蔗糖；
试剂A（碱性铜试剂）；
试剂B（酚试剂）；
标准浓度牛血清白蛋白溶液；
浓硫酸；
硫酸钾3份与硫酸铜1份（质量分数）混合粉末；
30%NaOH；
2%硼酸溶液；
混合指示剂；
0.01mol/LHCl标准溶液；
30%丙烯酰胺贮液；
10%过硫酸铵溶液；
分离胶缓冲液贮液；
浓缩胶缓冲液贮液；
2*SDS-样品缓冲液；
SDS-电极缓冲液贮存液；
染色液；
脱色液。
2.2.2仪器:
恒温水浴锅,恒温培养箱,高速冷冻离心机、磁力搅拌器或梯度混合器，搅拌子层析柱、梯度发生器及搅拌子、紫外分光光度计、点滴板,电炉,恒温水浴锅,分光光度计721分光光度计,刻度吸管0.5ml（*1），2ml*2，5ml*1,试管1.5cm*15cm（*8）,恒温水浴槽,改良式凯氏定氮仪,DYY-60型电泳仪。
2.3实验过程及方法
2.3.1蔗糖酶提取及初提纯
a.酵母的自溶在250ml锥形瓶中加入鲜酵母20g、醋酸钠1.6g，加入1.5ml甲苯用滤布加牛皮纸将瓶口塞住，摇匀10min，放入37℃培养箱保温60h，使酵母自溶。
b.制备初提液A在培养箱中取出装有已自通酵母的锥形瓶，加入10ml蒸馏水，摇匀，倒入塑料离心管中，平衡后用高速冷冻离心机4℃、15000r/min离心10min。
小心取出离心后中间层的液体，重新倒入离心管中，4℃、15000r/min离心10min。
仔细倒出上层清液，测出体积为VA，取出3ml保存。
c.制备热提取液B预先将水浴加热到50℃，将初提液A倒入50ml的锥形瓶中，加4mol/L醋酸3.2ml左右，摇匀，水浴保温20min，在保温过程中不断摇动锥形瓶，取出后迅速在冰浴中冷却，冷却液于4℃、15000r/min离心10min。
测出上层清液的体积记为VB，取出3ml保存。
d.制备乙醇沉淀提取液C将热提取液B倒入100ml烧杯中，把烧杯放入冰浴中，轻轻搅拌并慢慢加入95%乙醇溶液，体积与热提取液B相同。
整个过程不少于20min，再继续搅拌5min，将烧杯内的液体全部移入离心管中，杯底白色固体保留待用，4℃、15000r/min离心10min。
仔细地倒掉上层清液，用5ml0.05mol/L
Tris-HClpH7.3缓冲液把烧杯中的白色固体溶解，倒入离心管搅拌使离心管内的白色固体溶解，4℃、15000r/min离心10min。
测量上层清液体积VC，全部保存。
2.3.2蔗糖酶的纯化QSepharose-柱层析法
A离子交换柱的填充B缓冲液盐度梯度发生器的安装C柱的平衡：
交换剂成为相应的交换型①在小烧杯中加入15毫升TrisHCl②恒流泵进口插入烧杯液面下③恒流泵出水管一端连接柱子④放松夹子⑤打开恒流泵⑥用TrisHCl冲洗⑦直到缓冲液面与交换剂相切D加样及洗穿透峰①夹紧下端夹子,在烧杯加入15毫升TrisHCl②从上部缓慢加入0.5ml提取液C，放松夹子③样品全部刚好进入交换剂内，相切，夹紧夹子⑤先打开恒流泵，再放开夹子，⑥用量筒收集全部流出液体，每管收集3ml⑦直到液面相切
E洗脱①将梯度发生器出口与恒流泵相连②恒流泵与柱相连③打开搅拌器，打开连通器旋钮，打开恒流泵④用20毫升TrisHCl缓冲液配制的1摩尔/升NaCl20毫升溶液开始梯度洗脱打开夹子⑤用量筒收集3毫升/管，直到全部缓冲液流出
F离子交换剂的再生烧杯加入15毫升NaCl洗脱→不用收集→凝胶冲到小烧杯→全部凝胶回收
G测吸光度,酶活力测试,取酶活力最高的2管为柱分离液D。
2.3.3蔗糖酶活力的测定
2.3.3.1葡萄糖标准曲线制作：
烧水，不要太多，进行DNS反应：
注意振荡混匀，移液管对应，要及时清洗
试管号
1
2
3
4
5
葡萄糖/ml
0.8
1.0
1.2
1.4
1.6
蒸馏水/ml
3.0
2.2
2.0
1.8
DNS/ml
1.5
总体积/ml
4.5
A540nm
0.00
0.101
0.261
0.359
0.479
0.574
沸腾后计时。
在沸水浴中加热5min。
取出后立即用冷水冷却到室温。
2.3.3.2酶活力测定
A，稀释样品，浓度从低到高，即C→B→A，防止污染。
提取液
A
B
C
D
比例
1：
200
20
移液管原液
0.25ml
0.5ml
定容
50ml容量瓶
10ml移液管
B水解反应
试管项目
A0
A1
B0
B1
C0
C1
D0
D1
酶液A稀释液
各取4种稀释液2.00ml，加入8支试管，按项目名称编号
NaOHml变性
0.5
---
预热
5%蔗糖试剂瓶，8支试管（放在试管架上），于35℃预热10min
蔗糖ml
各试管加入5%蔗糖2ml加入后立即摇匀开始计时，35℃准确反应3min
NaOH终止反应
4.50
全部反应后，取出试管架
C进行DNS反应，测吸光值
试管号/ml
反应液V测
0.1
0.15
0.3
从上次水解反应液中分别取出V测，用ABCD移液管，先取对照
蒸馏水
2.9
2.85
2.7
DNS
1.50
总体积
0.173
0.257
0.698
0.662
2.3.4蔗糖酶蛋白质含量测定及比活力计算
2.3.4.1蛋白质含量标准曲线绘制:
Folin-酚反应
标准牛血清蛋白液/ml
0.2
0.4
0.6
4.3
4.1
3.9
3.7
3.5
试剂A/ml
试剂B/ml
第一次
第二次
6.0
A660
0.181
0.323
0.457
0.576
0.703
2.3.4.2未知蛋白质浓度测定
A样品稀释
稀释比例
1:
100
稀释方法
0.5ml原液：
0.5ml原液+9.5ml移液管量取
不稀释
B测样品蛋白含量
试剂量/ml所加试剂
管号
样品稀释液/ml移液管：
酶液
1/20Tris0.5ml
Tris3ml
水/ml
4.0
试剂A
试剂B
OD660nm/A
O
O.625
0.355
0.508
0.193
2.3.5微量凯氏定氮法测总蛋白氮
将0.04mlB样液与3ml浓硫酸、20mg硫酸钾-硫酸铜混合物加热消化。
洗涤微量凯氏定氮仪时，用装有10ml2%硼酸溶液和4滴混合指示剂的锥形瓶检测，变绿则重新洗涤。
将消化液定容至50ml，取5ml于反应室，同时加入10ml30%NaOH，用少量水洗涤漏斗后水封。
等到颜色变绿后计时3min，再蒸馏1min，滴定。
六次滴定消耗HCl的体积（ml）分别为：
0.48、0.55、0.52、0.45、0.50、0.50。
2.3.6SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质的相对分子质量
2.3.6.1分离胶制备
①配分离胶成分：
12%分离胶②各成分加入小烧杯，加入每一种应立即用塑料吸管抽吸慢慢混匀，不要有过多气泡③TEMED最后加入，马上灌胶④用塑料吸管从一边加入玻璃板之间，防止气泡，不要全部挤入（2/3高度，梳子下端距分离胶上边缘1.5cm⑤加水覆盖，加满水，出现界面，再次出现界面聚合完成，⑥倒出水，用滤纸条吸出表面的水⑦聚合30~60min
2.3.6.2浓缩胶制备
①用滤纸吸干水层②配制5%浓缩胶：
5%③各成分加入小烧杯，加入每一种应立即用塑料吸管抽吸慢慢混匀，不要有过多气泡④TEMED最后加入，马上灌胶⑤用塑料吸管从一边加入玻璃板之间，混匀加入在分离胶上层⑥插入梳子，不要插反⑦聚合⑧取出梳子（注意用力平衡，不要左右摇摆）⑨用滤纸条除去样品槽内的水分。
⑩撕去胶条，玻璃板方向：
凹槽向内，不要用力压
2.3.6.3加样品：
加入样品和marker，进行电泳。
电泳结束后，染色4h，然后用脱色液脱色三次。
以maker中标准蛋白质相对分子量的对数（lgMW）为纵坐标，相对迁移距离为横坐标作图，得到标准曲线。
然后根据样品蛋白质分子的相对迁移距离，从标准曲线上查出其相对分子质量。
3.结果与分析
3.1蔗糖酶的提取及初提纯，蔗糖酶的纯化——QSepharose-柱层析法
3.1.1实验结果
VA=18.8mlVB=18.5mlVc=5.8mlVD=5.8ml
VA总=VA=18.8ml
VB总=VB·
[VA/（VA-3）]=18.5·
[18.8/（18.8-3）]=22.01ml
Vc总=Vc·
[VA/（VA-3）]·
[VB/（VB-3）]=VC·
[VB总/（VB-3）]=5.8·
[22.01/（18.5-3）]=8.34ml
VD总=VD·
VC总/V样=5.8*8.8/0.5=96.75ml
3.1.2结果分析
A.VB较大是因为在离心前平衡时加入了较多的蒸馏水是VB增大。
B、在同一温度下，溶液中各物质的量不同，所以溶解度不同，对蔗糖酶进行纯化。
C、Qsepharose为在PH7左右为强阴离子交换剂且带正电，可与蔗糖酶很好结合，使之洗脱下来。
采用Qsepharose-柱层析法提高了实验效率，是蔗糖酶与杂志蛋白得到了很好的分离，提高了纯度，体现了离子交换蛋白纯化的优越性。
3.2蔗糖酶活力测定
项目
葡萄糖/mg
0.178
0.202
0.357
0.345
V总/ml
18.80
22.00
8.34
96.74
V测/ml
酶总活力单位数
10039.2
8197.2
7256.9
5066.3
酶回收率/％
81.65
72.28
49.86
A、本实验采用3,5-二硝基水杨酸与还原糖共热被还原成棕红色的氨基化合物，在一定条件范围内还原糖与反应液的颜色深度成正比，因此利用分光光度计进行测定，计算样品中含糖量，操作简便、迅速，杂志感染小。
B、葡萄糖标准曲线制作时加样一定要非常准确，因为分光光度后，测定酶活力时要根据标准曲线来计算葡萄糖的毫克数。
本实验结果较好，因为所有点都落在一条直线上且R^2较高接近0.999。
C、由结果发现酶活力逐渐下降，C的酶活力总数较高，可能是由于在加入蔗糖后摇匀时不是很均匀，使一些酶的反应不充分。
3.3蔗糖酶蛋白质含量的测定及比活力计算
总酶活/U
总蛋白/mg
比活力
U/mg
蛋白回收
率/％
蛋白质
质量/mg
纯化倍
数/倍
18.8
666.35
15.07
0.177
22
407.14
20.13
61.1
0.0925
1.34
46.82
154.99
7.03
0.1403
10.29
1.62
3124.71
0.243
0.0419
207.35
A、本实验采用Folin-酚法测定蛋白质含量，反应产物的颜色随着蛋白质浓度的增高而加深，本法极为灵敏，课测定范围非常精确，且蛋白质经过纯化后对本法的影响较小。
B、本实验的蛋白质标准曲线制作的比较准确，所有点都落在直线上，且R^2=0.9989，非常接近1，所以对后面的蛋白质含量计算比较准确。
C、从结果可以看出A、B、C、D的总蛋白一次减少，说明在每部的纯化过程中蛋白质损失越来越多，蛋白质回收率越来越小，尤其是D非常小。
而比活力却随着纯化次数的增加越来越大，纯化倍数也增加，比活力越大说明酶的纯化程度越高。
3.4微量凯氏定氮法测总蛋白氮计算与分析
样品含氮量（mg/ml）=17.51mg/ml
蛋白质含量（mg/ml）=17.51*6.25=109.344mg/ml
样品B蛋白质含量（mg）=109.344*22=2407.625mg
A、本实验采用微量凯氏定氮法测定蛋白质含量，方法简单、适用范围广，较准确且成本低。
B,实验用Folin-酚法测定B的蛋白质含量为407.14mg，而本次实验测得的蛋白质含量为2407.625mg，是前次实验的6倍，因为本实验测得的样品中含氮量默认为样品中所有蛋白质的含量，而且蒸馏水中也含有少量氮，试验中对颜色的判别也存在误差，使两次实验结果相差较大。
3.5SDS-GAPE测定蛋白质的相对分子质量
3.5.1蛋白质迁移距离
迁移距离/cm
相对迁移率
相对分子量数
染料迁移距离/cm
标准蛋白质
0.49
0.1284
97400
3.66
0.75
0.2213
66200
0.3579
4300
1.78
0.4699
3100
0.1120
99151
3.57
1.25
0.3501
45009
0.38
0.1053
101391
3.61
0.51
0.1339
92215
3.81
0.92
0.2415
65659
3.5.2结果与分析
标准蛋白质中本来有6种蛋白质，胶体上应该有6条电泳区带，但实验中只有4条，原因可能有如下几点：
①另外两种蛋白质分子质量较小，迁移距离较大跑到胶外去了，所以看不到；
②可能那两种蛋白质浓度太低，电泳区带太窄以致无法看清；
③可能是最后几条重合在一起形成一条电泳区带。
4.结论
通过实验，从提取酵母中的酶到柱层析及测定蛋白质的一些性质这些实验过程中，熟悉了高速离心机、紫外分光光度计，恒温水浴槽,改良式凯氏定氮仪,DYY-60型电泳仪等仪器的使用方法，掌握了酵母自溶法，离心除杂质法、热提取法、乙醇沉淀提取法，Q-Sepharose柱层析法、DNS法、Folin-酚法、SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳法等操作方法，并得到了蔗糖酶的一系列数据。
通过查阅资料了解了很多课本以外的实验方法，学会了一些简单的数据处理，在实践中有一定的指导意义。
参考文献：
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[2]孙培龙，吴石金.生物化学技术实验指导.化学工业出版社，2008.
[3]陈冰,林轩.蔗糖酶水解蔗糖的研究[J].湛江师范学院学报,1997.
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