骨髓基质干细胞成骨的研究进展文档格式.docx

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BMSCs的数量随着年龄的增加也不断减少,鼠在21个月时股骨干骨髓中的细胞要少于4个月时的骨髓细胞。

BMSCs在骨髓中含量极少(1×

105个单核细胞中含有1个BMSCs),因此要求在体外培育扩增后,才能达到组织工程学所要求的细胞数量。

在抽取骨髓血的进程中,每一个部位抽出量不该超过2mL,不然将因抽出物中血量增加而引发有核细胞数的明显下降。

  经常使用取得BMSCs的方式有:

a)贴壁法。

所得细胞成份复杂,BMSCs的纯度不足;

b)密度梯度离心法。

该方式基于沉降作用,这是较简便且有效的分离方式,它能有效地将红细胞、白细胞和间充质细胞分离开来。

Lisignoli[1]研究发觉,密度梯度离心法能增加BMSCs分化成为成骨细胞克隆的数量;

c)流式细胞仪法;

d)免疫学方式。

免疫选择法通过骨髓基质干细胞表面带有或缺乏某些抗原标志,进行挑选,可取得相对纯化的基质干细胞。

赵子义等[2]研究发觉,利用免疫磁珠标记神经生长因子受体(nervegrowthfactorreceptor,NGFR)抗体分离、纯化而取得NGFR+MSCs比一样培育条件下贴壁法纯化BMSCs其扩增倍数高出2~3个数量级,而且其内含有更高比例具有多向分化潜能的细胞,因此分离骨髓NGFR+细胞取得的BMSCs作为种子细胞应用于组织工程具有明显优势。

但到目前为止,BMSCs的特异性表面抗原标志仍没有明确,而且缺少选择性分离BMSCs的方式。

  2骨髓基质干细胞的体外增殖生物学特性

  对BMSCs细胞周期的研究说明,其大约有20%处于静止期,即G0期细胞,这说明BMSCs具有壮大的增殖能力,可是有文献报导,高度传代(大于25代)的BMSCs中有一部份已经表现出凋亡的特点。

BMSCs接种密度的大小直接阻碍BMSCs的增殖能力,低密度接种(5000/cm2)BMSCs不管在扩增速度仍是扩增倍数上都明显高于高密度接种,而极低密度接种~12/cm2)更有利于细胞的增殖。

杨柳等人[3]在实验中也发觉种植密度较高时,严峻阻碍BMSCs的贴壁生长,考虑为含有的红细胞、白细胞比重大于BMSCs而第一沉积于瓶底,且细胞代谢废物增多所至。

  BMSCs成骨活性随着供体年龄增加呈下降趋势,年龄越大,在培育中形成的群落和具有成骨样细胞特点的细胞越少,而且细胞对诱导因子的反映灵敏性下降。

  低氧张力条件下BMSCs培育,其细胞增殖速度大大提高,且细胞ALP表达也大大增强[4]。

考虑其缘故为机体内部的氧分压明显低于外界(140mmHg),专门是骨髓内氧分压只为30~50mmHg,大约相当于外界的1/3,因此BMSCs长期暴露于高氧分压的状态,必将致使细胞过度氧化,功能下降。

若是体外进行培育的条件与体内氧分压相似,那么更有利于细胞功能的保留。

  顾祖超等人[5]在实验中发觉,兔BMSCs原代培育,其开始贴壁(1~2d)的时刻和完全贴壁时刻(12~14d)均擅长传代培育的BMSCs。

传代BMSCs不形成集落,形态加倍单一,呈梭形,14d之内没有形成明显钙化结节。

BMSCs经诱导培育后的形态要紧为多角形,其贴壁率有所下降,且在10~12d之内形成明显钙化结节。

传代细胞和诱导细胞二者的生长曲线无统计学不同,倍增时刻为~h,生长顶峰均在接种后6~7d显现。

BMSCs长满单层后,可显现多层生长,没有发生接触抑制。

  Sun等人[6]的研究还发觉大鼠BMSCs抑制T淋巴细胞的扩增,以为此特性可使其应用于同种异体移植。

Cancedda[7]指出,通过体外扩增,BMSCs在体内的成骨效率明显低于新鲜的骨髓,其在体外的多项分化潜能慢慢消失。

  3骨髓基质干细胞的诱导分化

  由于BMSCs具有分化多方向性的特点,而骨组织工程学要求其向单一方向分化,因此BMSCs的定向诱导具有重要作用。

就其成骨方向来讲,具有诱导作用的有以下几种因素。

  化学物质的作用

  地塞米松(Dex)Beresford等[8]发此刻原代及传代细胞培育中均加入地塞米松时,骨髓基质细胞向成骨细胞及脂肪细胞转化,在传代培育中再加入1,25二羟维生素D3,那么抑制其向脂肪细胞转化,通过骨钙蛋白mRNA分析证明向成骨细胞转化占优势。

而仅在传代培育中加入地塞米松时,骨髓基质细胞多向脂肪细胞转化。

  而Maniatopoulos[9]以为只有在地塞米松和β甘油磷酸钠存在的培育环境下,才能形成矿化骨样小结,形成矿化小结的时刻、形状、数量与地塞米松加入的时刻及剂量有关。

  1,25羟基维生素D3(1,25(OH)2D3)Kelly等[10]发觉1,25(OH)2D3在增进BMSCs向成骨细胞分化的同时,能够抑制由糖皮质激素诱导的脂肪细胞分化。

Faucheux等[11]研究说明,1,25(OH)2D3增进BMSCs中骨钙素水平升高,同时刺激BMP3mRNA的表达,这种刺激在原代培育的BMSCs较已分化BMSCs更强。

  细胞因子的作用

  许多细胞因子如骨形成蛋白(bonemorphogeneticprotein,BMP)、碱性成纤维细胞因子(basicfibroblastgrowthfactor,bFGF)、转化生长因子β(transforminggrowthfactorβ,TGFβ)等在BMSCs分化及增殖上起着重要的作用。

  BMPBMP是强有力的诱导因子之一,能够启动BMSCs的成骨进程,可能是诱导BMSCs向成骨细胞系转化的大体信号因子,诱导成骨最强的是BMP二、4、7。

Rickard等[12]研究说明BMP2能够快速诱导BMSCs向成骨细胞转化,作用8~10d观看到BMP2可明显增进BMSCs形态转变,并可提高BMSCs的ALP、骨涎蛋白、骨钙蛋白的mRNA的表达。

同时指出,单独利用BMP的作用较联合利用地塞米松的骨诱导活性低,从而以为BMP可能并非能单独起作用,在整个骨诱导进程中可能需要激素的协同作用。

而Kim等[13]以为BMP2可明显加速BMSCs向成骨细胞转化,但却不能增进骨钙蛋白的分泌,以为BMP可增进成骨细胞前体细胞向成骨细胞转化,但不能使之向成熟成骨细胞转化。

  bFGFbFGF能够增进BMSCs体外培育成纤维细胞集落的形成,增进细胞的增殖,但对BMSCs的转化作用仍存在不同的研究结果。

Hanada等[14]以为在地塞米松存在的培育环境中,bFGF作用6d时可显著增加细胞增殖,同时骨钙蛋白表达、骨矿化结节形成。

BMP2的促转化作用不如bFGF明显,二者联合应历时促BMSCs转化作用强于单一因子。

而Martin等[15]研究说明在众多生长因子中bFGF对BMSCs具有最强的促割裂作用,同时经bFGF作用的细胞植入体内表现出较强的成骨能力。

  TGFβTGFβ是较强的促成骨分化的因子。

Locklin等[16]研究发觉TGF能够抑制BMSCs的增殖,但能提高其ALP的表达,并能减少和延迟BMSCs向脂肪细胞的转化,Andrades等[17]研究说明,基因重组人转化生长因子β能够诱导BMSCs向成骨细胞分化和成熟。

  生物力学因素

  生物力学因素在骨形成进程中的作用亦不容轻忽,它能够阻碍细胞的生长、增殖和分化进程。

Yoshikawa等[18]采纳特制培育皿培育BMSCs,此培育皿能够对细胞产生周期性张力和拉力,同静态培育相较,外力作用下培育细胞的ALP活性、骨钙素水平、DNA含量、细胞干重均明显升高。

  4骨髓基质干细胞作为基因医治的靶细胞用于骨缺损的修复

  骨缺损的基因医治是把具有增进成骨作用的基因导入靶细胞,既能诱导其向成骨细胞转化,使之发挥种子细胞的作用,又能在体内骨组织再生进程中持续高效地分泌生长因子,有利于组织工程化骨组织的形成。

骨髓基质干细胞因其容易搜集并进行组织培育,细胞表面有骨诱导蛋白的受体,具有明确的成骨潜能而成为经常使用的靶细胞。

  Oyama等[19]将TGFβ1基因的复制缺点型病毒转入成骨细胞中,转染后成骨细胞中TGFβ1mRNA的表达仍维持在明显的上调状态,细胞分泌合成的TGFβ1较对照组高46倍,细胞Ⅰ型胶原含量提高了5倍,将转染了TGFβ1的成骨细胞植入体内可明显增加新生骨组织的数量。

金丹等[20]研究说明经hBMP7基因转染的BMSCs增殖能力无明显改变,能够显著提高其合成胶原、ALP、骨钙蛋白、层粘连蛋白的能力,证明经hBMP7基因转染后能够增进BMSCs向成骨细胞转化。

进一步利用经转染的BMSCs修复兔桡骨缺损,经大体观看、X线、组织学检测分析结果证明经转染的BMSCs修复骨缺损的成骨速度和成骨量均优于未转染BMSCs的对照组。

如何操纵外源基因在受体细胞内的表达时刻和表达数量,使之与再生组织的需要相适应,仍需进一步研究。

  总之,BMSCs是理想的骨组织工程学种子细胞,可是目前只停留在实验室时期,要应用于临床,还有很长的研究道路要走。

且此刻多数研究只是针关于动物,对人的BMSCs特性及培育了解不多。

人的BMSCs培育难度要高于动物,因此,成立一套骨髓基质干细胞提取、培育、分化的标准方式显得加倍必要。

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