版临床重要耐药菌感染传播防控策略专家共识全文Word文件下载.docx

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1术语定义1.1耐药（resistance）

微生物对临床治疗（常规）使用的关键药物的敏感性减弱、丧失[5]。

1.2多重耐药（multidrug-resistant，MDR）、广泛耐药（extensivelydrug-resistant，XDR）、全耐药（pandrug-resistant，PDR）和多重耐药的微生物（multidrug-resistantorganism，MDRO）

目前学术界对各种病原菌MDR、XDR、PDR的标准定义尚未统一，但有国际专家建议的暂行标准可供参考[6-7]。

目前已发表的相关共识多定义如下。

MDR：

对可用药物中3类或更多（每类中的1种或更多）不敏感。

XDR：

对可用药物除了2类或1类之外，其余（每类中的1种或更多）均不敏感。

PDR：

对可用药物均不敏感。

1.3医疗保健相关感染（healthcare-associatedinfection，HCAI）、医院获得性感染（hospitalacquiredinfection，HAI）、医源性感染（iatrogenicinfection，II）和社区获得性感染（community-acquiredinfection，CAI）

HCAI：

患者接受治疗过程中获得的感染，或某些人员（主要是医务人员）在医疗环境中获得的感染[5]。

HAI：

简称医院感染，指入院时不存在也不处在潜伏期，医院内获得的感染，包括出院后才发病的情况，实际工作中有的情况有明确的专业界定。

HCAI的范围比HAI大,二者一般情况可以视作同义词。

II是由生物医用制品或医疗行为导致的因果关系明确的感染,是HCAI/HAI的一种类型。

CAI和HAI相对，是在一般的社会生活环境内——主要是社区内获得的感染，和医疗环境、医疗行为、医疗制品无关。

1.4感染控制（infectioncontrol，IC）

全称感染控制与预防（infectioncontrolandprevention）,指防止或终止感染的扩散（spread）[7]。

广义而言即对感染进行预防与控制，避免发生、加重、体内播散（dissemination）、人际传播（transmission）并促进治愈的一门学科和实践。

涉及生物学尤其是微生物学、诊断学、治疗学、行为学、材料学等。

1.5抗微生物药物管理（antimicrobialstewardship，AMS）

也称作抗生素管理（antibioticstewardship，AS）、抗菌药物管理。

是通过管理改善抗微生物药物（抗生素）处方和使用的方式[7]。

2临床重要耐药菌的流行病学、耐药机制及实验室检测

2017年，WHO发布公告，将临床重要耐药细菌按危险程度进行分级，指出目前亟需开发新抗菌药物以应对重要耐药菌所致感染，包括耐碳青霉烯类革兰阴性杆菌、产超广谱β-内酰胺酶肠杆菌目细菌、耐甲氧西林金黄色葡萄球菌（MRSA）和耐万古霉素屎肠球菌等[8]。

CHINET中国细菌耐药监测网2019年结果显示，肠杆菌目细菌对第三代头孢菌素的耐药率维持在较高水平，其中大肠埃希菌和肺炎克雷伯菌的耐药率分别约为55%、45%[9]。

铜绿假单胞菌和鲍曼不动杆菌对碳青霉烯类的平均耐药率分别约为25%、75%。

近年来，肺炎克雷伯菌对碳青霉烯类的耐药率呈快速上升趋势，且我国不同省份不同医疗机构分离菌株的耐药率相差较大[10]。

研究表明，不同国家不同医疗机构不同人群分离的碳青霉烯类耐药菌株所产碳青霉烯酶基因型别有较大差别[11]。

金黄色葡萄球菌中甲氧西林耐药菌株的平均检出率约为35%，且儿童分离菌株中该耐药菌株的检出率呈上升趋势[9]；

与国际上报道不同的是，我国临床分离的万古霉素耐药屎肠球菌的检出率处于低水平，<

3.5%[12]。

临床常见细菌对抗菌药物耐药的主要机制包括以下几个方面：

（1）膜孔蛋白改变或缺失。

膜孔蛋白编码基因的改变，或参与膜孔蛋白表达的调节基因的改变，使得相应的膜孔蛋白缺失或功能缺陷，从而引起抗菌药物耐药[13]。

如肺炎克雷伯菌Ompk35和Ompk36的缺失，导致菌株对碳青霉烯类抗生素耐药[14]，铜绿假单胞菌由于编码orpd膜孔蛋白的基因下调而对碳青霉烯类耐药[15]。

（2）外排泵的过表达。

外排泵在铜绿假单胞菌和不动杆菌等革兰阴性菌的β-内酰胺类耐药中起着重要作用[16]。

研究[17-18]表明,肺炎克雷伯菌对替加环素耐药的机制主要是由于RND型AcrAB-TolC外排泵和OqxAB外排泵高表达所致。

（3）水解酶的生成。

β-内酰胺酶能够水解β-内酰胺环，使得抗菌药物不能与青霉素结合蛋白PBP有效结合，从而干扰细胞壁的合成[19]。

其中，碳青霉烯酶是最常见的β-内酰胺酶之一，其产生是肠杆菌目细菌对碳青霉烯类抗生素耐药最主要的机制[20]。

（4）靶位点的改变。

MRSA主要的耐药机制就是特有的mecA基因大量编码特殊的对β-内酰胺类抗生素低亲和力结合的青霉素结合蛋白PBP2a，从而导致β-内酰胺类抗生素耐药[21]。

革兰阴性菌基因突变可导致DNA促旋酶或拓扑异构酶活性位点改变，从而引起喹诺酮类耐药[22]。

（5）修饰酶的产生。

氨基糖苷钝化酶能与氨基糖苷类抗生素特定的氨基或羟基结合，从而导致这类抗生素发生钝化而失效[23]。

Tet（X）最早被认为是四环素灭活酶，可在氧气和NADPH同时存在的情况下化学修饰四环素类药物，导致四环素类耐药[24]，而近来研究发现Tet（X）及其变异体与替加环素耐药密切相关[25]。

（6）生物膜的形成。

生物膜形成是细菌在抗菌药物环境下存活的有效途径[26]，鲍曼不动杆菌和铜绿假单胞菌在医院环境中长期存在，并造成广泛的医院感染，与其较强的生物膜形成能力密切相关。

耐药基因在病原菌中的传播方式分为垂直传播和水平传播两种方式。

第一种传播方式由于耐药基因位于菌株染色体上，耐药性仅能随着菌株的繁殖由亲代传给子代；

而第二种传播方式由于质粒、转座子等可移动元件的存在，使得耐药基因可在不同菌种、不同菌属、不同菌株间互相传播，导致耐药性的广泛扩散。

以下简述耐药菌检测的实验室方法：

2.1MRSA

对受试葡萄球菌使用头孢西丁纸片法药敏试验，或头孢西丁或苯唑西林稀释法药敏试验，也可使用苯唑西林盐琼脂筛选MRSA[27]。

一些商品化的显色培养基也可用于MRSA的筛查。

由于绝大多数MRSA携带mecA基因，可采用PCR扩增mecA基因检测MRSA，也可采用乳胶凝集法测定PBP2a检测MRSA，其检测灵敏度和特异度分别可达100%和97.1%[28]。

2.2耐万古霉素肠球菌（VRE）

采用纸片扩散法、E-test法、脑心浸液琼脂筛选法和显色培养基法等。

脑心浸液琼脂筛选法测定万古霉素MIC和动力试验及色素产生，可区别万古霉素获得性耐药（如VanA和VanB）与固有、中介水平耐药（VanC），万古霉素对鹑鸡肠球菌和铅黄肠球菌最低抑菌浓度（MICs）8~16μg/mL属于固有、中介水平耐药，而对获得性耐药的VRE进行筛查，则是以预防感染为目的[27]。

2.3产ESBLs肠杆菌目细菌

可使用纸片扩散法或微量肉汤稀释法进行ESBLs的初筛及确证，相应操作和判读标准可参考CLSIM100文件。

此外，三维试验、双纸片协同试验、E-test法和显色培养基法也可检测ESBLs。

也可使用分子生物学方法检测blaCTX-M、blaSHV和blaTEM等ESBLs基因。

2.4耐碳青霉烯类革兰阴性杆菌

主要包括耐碳青霉烯类肠杆菌目细菌（CRE）、耐碳青霉烯类鲍曼不动杆菌（CRAB）和耐碳青霉烯类铜绿假单胞菌（CRPA），可采用纸片扩散法、自动化仪器法、微量稀释法或E-test法及显色培养基法等，也可采用分子生物学方法检测blaNDM、blaKPC、blaIMP、blaOXA-48等耐药基因。

目前，实验室检测碳青霉烯酶的方法众多，主要包括CarbaNP试验、改良碳青霉烯灭活试验（mCIM）、碳青霉烯酶抑制剂增强试验、免疫层析试验以及分子生物学方法等。

其中酶抑制剂增强试验使用3-氨基苯硼酸和EDTA可判断被测菌株是否产生A类碳青霉烯酶（主要为KPC酶）、B类金属酶或同时产两种类型的碳青霉烯酶，操作简单、结果易读[29]。

免疫层析试验采用抗原抗体反应的技术，可在15min内快速检测碳青霉烯酶并可分型,总体灵敏度和特异度可分别达97.31%和99.75%[30]。

2.5多重耐药艰难梭菌

可采用环丝氨酸-头孢西丁-果糖琼脂（CCFA）培养基或艰难梭菌鉴定（CDIF）培养基对艰难梭菌（CD）进行培养，但单纯的细菌培养不能用于诊断CD的感染，仅用于菌株分型和耐药性的后续检测[31]。

实验室常使用酶联免疫法或层析法测定CD毒素、CD高水平表达的代谢谷氨酸脱氢酶（GDH）以及分子生物学方法测定毒素基因的两步法或三步法联合检测CD的感染[32]。

亦可使用分子生物学方法检测tcdA、tcdB、cdtA、cdtB等毒素基因。

CD的耐药性检测可采用琼脂稀释法或E-test。

2.6多重耐药耳念珠菌

多重耐药耳念珠菌[7]可采用表型鉴定、分子生物学及基质辅助激光解吸电离飞行时间质谱（MALDI-TOF）等方法进行鉴定，但基于表型的检测方法可能将耳念珠菌鉴定为希木龙假丝酵母菌或其他假丝酵母菌。

药敏的检测通常采用CLSIM60推荐的微量肉汤稀释法[33]。

亦可检测ERG基因是否存在突变或缺失，从而导致对唑类药物耐药；

检测FKS基因是否存在突变，而导致棘白菌素类药物耐药

3临床重要耐药菌感染防控通用要点3.1手卫生

正确执行手卫生可减少手部微生物（包括耐药菌）污染，从而降低医院感染发生风险。

手卫生被认为是预防和控制耐药菌传播的最基础、最有效、最经济的策略[34]。

手卫生是减少病原体感染和传播不可或缺[35-36]的手段，也是感染防控的基础措施之一，是整体防控策略的一部分。

规范的手卫生设施包括流动水洗手池、非手触式水龙头开关、洗手液、干手设施、手消毒剂和手卫生流程示意图等。

手卫生设施的设置应方便可及，符合《医务人员手卫生规范》（WS/T313—2019）[37]的要求。

各医疗机构应依据国家规范，制定本机构的手卫生制度，并实施有关策略。

包括改善手卫生设施，保证手卫生用品充足且便于获取；

张贴手卫生警示标识和提醒；

开发领导层，提高重视程度并加强管理；

增强对各级各类人员手卫生知识与技能培训教育，开展多种形式的手卫生宣传活动，提高各类人员手卫生意识与技能；

加强手卫生监督、管理、考核与信息反馈；

鼓励患者参与手卫生改进实践，提高耐药菌感染患者探视人员的手卫生意识；

营造医疗机构内良好的手卫生文化等[38-41]。

落实各项措施，切实提高医务人员手卫生意识、依从性和正确性，降低耐药菌交叉感染的风险。

3.2接触预防3.2.1基本要求

MDRO感染或定植的患者需在标准预防的基础上采取接触预防措施。

根据标准预防原则，应在合理的时机正确地实施手卫生；

当执行有喷溅操作（如伤口冲洗、吸痰、气管插管等）、护理气管切开的患者和有分泌物喷溅的患者时，以及在有证据支持感染或定植源（如烧伤创面）引发传播的环境中工作时，应进行面部防护，如佩戴口罩和护目镜或防护面屏[42-43]。

标准预防措施对于防止潜在定植患者的传播也至关重要，MDRO定植通常不易被检测到，即使是主动监测也可能由于缺乏敏感性、实验室缺陷，或由于抗菌药物治疗导致间歇性定植而无法识别[44]。

因此，采取接触预防的同时，不能忽略正确实施标准预防。

3.2.2管理要求

制定MDRO感染防控相关制度，包括抗菌药物合理应用管理、MDRO预防和控制措施、手卫生制度等；

开展相关科室的教育培训，对所有医生、护士、医技人员、保洁人员、外送人员分层次分别进行培训和宣教，提高工作人员对MDRO的重视，严格执行工作人员工作过程中涉及到的MDRO防控措施；

与微生物室合作，规范标本送检；

获取上级行政支持，提高医院领导层面对MDRO防控工作的重视程度，配备合格、充足的隔离用品；

专人负责MDRO的监测并监督各科室执行各项措施。

3.2.3接触预防措施

（1）患者隔离（见3.3）。

（2）接触隔离：

对实施接触预防的患者进行诊疗护理时，医务人员可能接触患者或患者周围环境中可能受污染的区域时需穿隔离衣和戴手套。

在进入患者病房之前穿好隔离衣和戴好手套，离开病房前摘掉手套并脱隔离衣[45-46]。

医务人员对患者实施诊疗护理操作时，将MDRO感染或定植患者安排在最后进行，转诊或外出检查之前通知接诊或接待检查的科室，提醒其采取相应防控措施。

（3）诊疗用品处理：

与患者直接接触的相关医疗用品，如听诊器、血压计、体温表、输液架等要专人专用，并及时消毒处理。

轮椅、担架、床旁心电图机等不能专人专用的医疗器械、器具及物品要在每次使用后擦拭消毒。

（4）环境清洁消毒：

清洁和消毒可能被病原体污染的环境表面和设备，包括邻近患者的物体表面（如床栏杆、床头桌）、患者诊疗环境中经常接触的表面（如门把手、病房中厕所的表面和周围）；

优先清洁实行接触隔离措施的房间，并重点清洁消毒患者经常接触的表面（如床栏杆、床头桌、病房浴室的设备、门把手）和临近患者的设备。

（5）医疗废物管理：

在患者床头放置医疗废物桶。

在MDRO感染患者或定植患者诊疗过程中产生的医疗废物，以及沾有患者痰液、体液等的生活垃圾，应当按照医疗废物进行处置和管理。

3.3患者隔离3.3.1病原体

对于CRE、CRAB、CRPA、MRSA、VRE、CD感染或定植者，需要隔离。

如果条件有限,则优先对CRE感染者或定植者隔离;

我国普通人群中产ESBLs的肠杆菌目细菌比例较高，在医疗机构内通过隔离预防此类耐药菌传播，已无实际意义。

3.3.2隔离方法

（1）单间隔离:

应优先将CRE、CD感染或定植者安置于单人病室，尤其是传播风险大的患者，如有人工气道机械通气、大小便失禁、伤口持续有分泌物等情形的患者。

隔离病室入口处应有明显隔离标识，隔离病室诊疗用品应专人专用，医务人员和探视者进入隔离病室应执行接触预防措施和手卫生。

（2）集中安置:

当不具备实施单间隔离的条件时,应将同一种耐药菌感染或定植者安置在同一间病室或隔离区域,保证与其他患者有足够的床间距。

划定集中安置患者护理活动限制区域，可设物理屏障或划线标注。

避免在耐药菌感染或定植者紧邻区留置各种导管、安置有开放伤口或免疫功能低下等易感患者。

接收隔离耐药菌感染或定植者，需安排专门的照护工作人员，即不应同时担负无耐药菌感染者，或非同种耐药菌感染或定植者的照护任务。

其他医务人员，如护士、呼吸治疗师等视医疗机构具体情况参照执行，特别是在耐药菌感染流行或暴发期间。

3.3.3隔离期限

原则上应隔离至耐药菌培养连续两次阴性。

对于部分长期携带耐药菌患者，可以至疾病症状消失出院时。

3.4主动监测3.4.1感染患者监测

对于有感染症状的患者，应及时送检相应的微生物标本进行检测（如培养、核酸检测等）。

当从标本中检出临床重要耐药菌时，实验室应将结果及时通知相应的临床医务人员和感控人员。

3.4.2无症状定植者的主动筛查3.4.2.1筛查的意义

无症状的耐药菌定植患者可成为潜在的传染源，对其开展主动筛查有助于早发现、早应对。

然而，在采取包括手卫生、环境卫生等标准预防情况下，对于特定耐药菌（如产ESBLs的肠杆菌目细菌）进行主动筛查是否有必要（是否能增加防控效果）还存有较大争议。

除CRE、MRSA和VRE外，当前阶段主动筛查并非是一线防控措施，而往往作为一线措施控制不佳时或暴发调查时的强化防控措施。

3.4.2.2筛查的耐药菌

基于现有研究，主动筛查通常针对以下耐药菌和特定标本类型，CRE（粪便或直肠拭子）[47]、MRSA（鼻前庭拭子）、VRE（粪便或直肠拭子），由医疗机构依据自身防控重点和耐药菌情况等考虑开展。

此外，鼓励有条件的医疗机构对其他种类耐药菌（如鲍曼不动杆菌）和标本类型（如下呼吸道标本）进行主动筛查科研。

3.4.2.3筛查的指征

有条件的医疗机构宜依据自身医疗服务的特点和耐药菌监测数据等资料，确定特定或高风险人群，并对其开展特定耐药菌的主动筛查。

（1）在非耐药菌感染暴发时，开展主动筛查的特定或高风险人群通常包括预估入住ICU>

2d患者，需入住新生儿ICU的新生儿，需进行器官、骨髓/干细胞移植的患者，器官移植的供体，需进行心脏手术患者（仅需筛查MRSA）等。

（2）在暴发或怀疑暴发时，宜对涉及病区的所有入院和在院患者进行筛查。

若受条件限制确实无法做到，则宜优先筛查高风险患者，通常包括：

过去6个月内已知曾检出该耐药菌的患者，从耐药菌感染高风险科室（如ICU）转入者，有与已知耐药菌感染/定植者同一病室、免疫受限、移植术后、有开放气道、有大面积创面、新生儿、从别的医疗机构转入等耐药菌感染发生高危因素之一的患者。

（3）不推荐对医务人员进行CRE、VRE等耐药菌的主动筛查。

（4）不推荐常规对医务人员进行MRSA主动筛查。

有报道医务人员携带MRSA可能与医院感染暴发有关，当面对MRSA感染暴发而经过环境采样、详细调查和采取干预措施后仍未能控制暴发时，在知情同意情况下方可考虑对医务人员进行MRSA主动筛查。

3.4.2.4筛查的频率

主动筛查包括入院/入病区48h内采样以反映带入情况，以及在院/在病区采样以反映院内获得情况，其频率取决于筛查目的（如是否为暴发调查）、资源配置（如采样和检测的人力），常见为一周一次，在暴发调查时可能更频繁。

3.4.2.5筛查的方法

主动筛查通常包括对标本进行核酸扩增检测和培养鉴定两种方法。

基于现有条件，最常采用的是培养鉴定方法（通常使用含特定抗菌药物的选择性培养基），但培养方法耗时较长（1~2d），且敏感性较核酸方法低。

鼓励有条件的医疗机构开展核酸扩增检测方法，并对其进行敏感性和特异性的观察。

核酸方法检测已知的菌种和已知的耐药基因，但不能检测未被纳入的已知耐药基因或新的尚未知的耐药基因，同时也往往难以将特定耐药基因与特定菌种关联。

3.5环境监测

《病区医院感染管理规范》[48]和《医院消毒卫生标准》[49]中规定怀疑医院感染暴发或疑似暴发与医院环境有关时，应进行目标微生物检测；

应每季度对重症监护病房物体表面、医务人员手和空气进行消毒效果监测，当怀疑医院感染暴发、ICU新建或改建以及病室环境的消毒方法改变时，应随时进行监测。

《医疗机构环境表面清洁与消毒管理规范》[50]、《多重耐药菌医院感染预防与控制技术指南（试行）》[51]规范均未对MDRO的环境监测是否需要常规开展、监测频率及方法作出具体要求。

针对环境监测，国际上发达国家已取消常规微生物监测，美国疾病控制与预防中心（CDC）和加拿大在环境相关指南中指出医疗机构不需要对空气、水和环境表面进行常规采样监测，认为常规环境卫生学监测投入成本大、收益不足，而环境卫生学监测阳性结果与医院感染发生的相关性也待明确。

目前，国内常规环境监测仍停留在医院的普通环境表面，很少开展临近患者诊疗区域内高频接触表面的监测，且现有的检测环境清洁卫生的方法[50]，包括目测法、化学法（荧光标记法、荧光粉迹法、ATP法）、微生物法，各有利弊，仍缺乏科学、简便、成本低廉的方法。

3.6环境清洁消毒

环境的清洁与消毒在控制临床重要耐药菌的感染与传播中发挥着不可或缺的作用，环境包括地面、床单元及各种物体表面，重点在于床单元及高频接触的设备。

根据相关行业标准和技术规范，医疗机构应对床单元表面及高频接触的设备进行定期清洁消毒，或者在遇到污染时进行及时消毒，患者出院时应进行终末消毒。

当医院感染暴发或检出MDRO时，应强化清洁与消毒，主要是增加清洁与消毒的频率,而非增加消毒剂浓度，此主要基于耐药菌为抗感染药物耐药而非对消毒剂耐药的考虑。

常用含有效氯400~700mg/L消毒剂作用时间10min，频次≥2次/天；

被患者血液、体液、分泌物等污染的环境表面，应先采用可吸附的材料将其清除，然后采用含有效氯2000~5000mg/L的消毒剂作用30min；

非艰难梭菌耐药菌感染环境也可以采用季铵盐，或采用季铵盐加紫外线消毒[52]。

与此同时，需要注意重复使用的清洁工具应及时清洗消毒、干燥保存。

此外，保洁人员的配备及培训、环境清洁消毒过程的监督与监测也是确保环境清洁卫生质量的重要方面[53]。

3.7去定植（decolonization）

去定植是一种基于循证依据的干预措施，可用于预防CHAI[54]。

去定植分为普遍性去定植和目标去定植，后者往往通过筛查临床重要的MDRO，而采取相应的干预措施。

术前鼻拭子筛查金黄色葡萄球菌，并对定植者鼻腔局部涂抹2%莫匹罗星软膏或与葡萄糖酸氯己定（CHG）擦浴联用，可有效降低术后（特别是心脏手术和整形手术）感染的风险[55]。

CHG是最具有循证依据的皮肤去定植剂，在交叉对照临床试验中，每日CHG洗浴能降低原发血流感染（BSI）[54]。

在重症监护病房（ICU）中，CHG洗浴已被证明能减少MRSA和VRE的交叉传染率，但广泛使用莫匹罗星和氯己定可能会加速耐药[56]。

因此，作为加强的MRSA控制措施，CDC建议只对特定人群实施有限的去定植[57]。

肠道CRE和VRE去定植一般是比较困难的。

在血液病患者中，粘菌素选择性肠道去定植可能有利于在短期内降低MDR/广泛耐药革兰阴性杆菌（XDR-GNB）肠道定植率和BSI风险，但不具有长期持续的效果[58]。

CDC不推荐对肠道VRE或多重耐药革兰阴性杆菌（MDR-GNB）定植患者去定植。

ESCMID-EUCIC专家小组亦不建议对第3代头孢耐药肠杆菌目细菌和CRE携带者进行常规去定植。

对于CRAB、全耐药革兰阴性杆菌（PDRGNB）和泛耐药铜绿假单胞菌（XDRPA）等定植患者，目前证据还不足以提供任何干预的建议[59]。

粪菌移植（fecalmicrobiotatransplantation，FMT）是一种非常有效的治疗难治性CD感染的方法，有希望用于肠道MDR细菌去定植[60]。

3.8临床应用管理

为有