一次性使用卫生用品卫生标准Word文档下载推荐.docx
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3产品须符合表1中微生物学指标。
表1
产品种类
微生物指标
初始污染菌1）
cfu/g
细菌菌落总数cfu/g或cfu/mL
大肠菌群
致病性化脓菌2）
真菌菌落总数cfu/g或cfu/mL
手套或指套、纸巾、湿巾、内裤、电话膜
抗菌（或抑菌）液体产品
卫生湿巾
口罩
普通级
消毒级
妇女经期卫生用品
尿布等排泄物卫生用品
避孕套
≤10000
≤200
≤20
不得检出
≤100
1）如初识污染菌超过表内数值，应相应提高杀灭指数使达到本标准规定的细菌与真菌限值.
2）致病性化脓菌指绿脓杆菌、金黄色葡萄球菌与溶血性链球菌。
4卫生湿巾除必须达到表1中的微生物学标准外，对大肠杆菌和金黄色葡萄球菌的杀灭率须≥90％，如需标明对真菌的作用，还须对白色念珠菌的杀灭率≥90％,其杀菌作用在室温下至少须保持1年。
4.5抗菌（或抑菌）产品出必须达到表1中的同类同级产品微生物学标准外，对大肠杆菌和金黄色葡萄球菌的抑菌率须≥50％（溶出性）或＞26%（非溶出性）,如需标明对真菌的作用，还须白色念珠菌的抑菌率≥50%（溶出性）或＞26％（非溶出性），其抑菌作用在室温下至少须保持1年.
6任何经环氧乙烷消毒的卫生用品出厂时，环氧乙烷残留量必须≤250ug/g.
5、生产环境卫生指标
5。
1装配与包装车间空气中细菌菌落总数应≤2500cfu/m3.
5.2工作台表面细菌菌落总数应≤20cfu/cm2.
3工人手表面细菌菌落总数应≤300cfu/只手,并不得检出致病菌。
6、消毒效果生物监测评价
6.1环氧乙烷消毒：
对枯草杆菌黑色变种芽胞（ATCC9372）的杀灭指数≥103。
6.2电离辐射消毒：
对短小杆菌芽胞E6d（ATCC27142）的杀灭指数应≥103.
6.3压力蒸汽消毒：
对嗜热脂肪杆菌（ATCC7953）的杀灭指数应≥103。
7、测试方法
7.1产品测试方法
7。
1.1产品外观：
目测，应符合本标准3.1的规定.
1.2产品毒理学测试方法：
见附录A。
7.1.3产品微生物检测方法：
见附录B。
7.1。
4产品杀菌性能、抑菌性能与稳定性测试方法:
见附录C。
1.5产品环氧乙烷残留量测试方法：
见附录D。
7.2生产环境采样与测试方法：
见附录E。
7.3消毒效果生物监测评价方法：
见附录F。
8、原材料卫生要求
8.1原材料应无毒、无害、无污染；
原材料包装应清洁，清楚表明内含物的名称、生产单位、生产日期或生产批号;
影响卫生治疗的与原材料应不裸露;
有特殊要求的原材料应标明保存条件和保质期。
8。
2对影响产品卫生质量的原材料应有相应检验报告或证明材料，必要时需进行微生物监控和采取相应措施。
3禁止使用废弃的卫生用品作原材料或半成品.
9生产环境与过程卫生要求
9.1生产区周围环境应整洁，无垃圾,无蚊、蝇等害虫孳生地。
9.2生产区应有足够空间满足生产需要,布局必须符合生产工艺要求，分割合理,人、物分流，产品流程中无逆向与交叉。
原料进入与成品出去应有防污染措施和严格的操作规程，减少生产环境微生物污染。
9。
3生产区内应配置有效的防尘、防虫、防鼠措施，地面、墙面、工作台面应平整、光滑、不起尘、便于除尘与清洗消毒,有充足的照明与空气消毒或净化措施，以保证生产环境满足本标准第5章的规定。
9.4配置必需的生产和质检设备，有完整的生产和质检记录,切实保证产品卫生质量.
5生产过程中使用易燃、易爆物品或产生有害物质的，必需具备相应安全防护措施,符合国家有关标准或规定。
6原材料和成品应分开堆放，待检、合格、不合格原材料和成品应严格分开堆放并设明显标志。
仓库内应干燥、清洁、通风，设防虫、防鼠设施和垫仓板,符合产品保存条件。
9.7进入生产区要换工作衣和工作鞋，戴工作帽，直接接触裸装产品的人员需戴口罩,清洗和消毒双手或戴手套；
生产区前应相应设有更衣室、洗手池、消毒池与缓冲区.
9.8从事卫生用品生产的人员应保持个人卫生，不得留指甲，工作时不得戴首饰，长发应卷在工作帽内.痢疾、伤寒、病毒性肝炎、活动性肺结核、尖锐湿疣、淋病及化脓性或渗出性皮肤病患者或病院携带者不得参与直接与产品接触的生产活动。
9.9从事卫生用品生产的人员应在上岗前及定期（每年一次）进行健康检查与卫生知识（包括生产卫生、个人卫生、有关标准与规范）培训，合格者方可上岗。
10、消毒过程要求
10。
1消毒级产品最终消毒必须采用环氧乙烷、电离辐射或压力蒸汽等有效消毒方法。
所用消毒设备必须符合有关卫生标准。
10.2根据产品卫生标准、初始污染菌与消毒效果生物监测评价标准制定消毒程序、技术参数、工作制度,经验证后严格按照既定的消毒工艺操作。
该消毒程序、技术参数或影响消毒效果的原材料或生产工艺发生变化后应重新验证确定消毒工艺。
10.3每次消毒过程必须进行相应的工艺（物理）和化学指示剂监测,每月用相应的生物指示剂监测，只有当工艺监测、化学监测、生物监测达到规定要求时,被消毒物品才能出厂。
10.4产品经消毒处理后，外观与性能应与消毒处理前无明显可见的差异.
11、包装、运输与贮存要求
11.1执行卫生用品运输或贮存的单位或个人，应严格按照生产者提供的运输与贮存要求进行运输或贮存。
11.2直接与产品接触的包装材料必须无毒、无害、清洁,产品的所有包装材料必须具有足够的密封性和牢固性以达到保证产品在正常的运输与贮存条件下不受污染的目的。
12、产品标识要求
12。
1产品标识应符合《中华人民共和国产品质量法》的规定，并在产品包装上标明执行的卫生标准号以及生产日期和保质期（有效期）或生产批号和限定使用日期。
12.2消毒级产品还应在销售包装上注明“消毒级”字样以及消毒日期和有效期或消毒批号和限定使用日期，在运输包装上标明“消毒级”字样以及消毒单位与地址、消毒方法、消毒日期和有效期或消毒批号和限定使用日期.
附录A
（标准的附录）
产品毒理学测试方法
A1各类产品毒理学测试指标
当原材料、生产工艺等发生变化可能影响产品毒性时,应按表A1根据不同产品种类提供有效的（经政府认定的第三方）成品毒力学测试报告。
表A1
皮肤刺激试验
阴道粘膜刺激试验
皮肤变态反应试验
手套或指套、内裤
√
根据用途选择1）
湿巾、卫生湿巾
根据材料选择
避孕套
1）用于引导粘膜的产品须做引导粘膜刺激试验,但无须做皮肤刺激试验。
A2试验方法
皮肤刺激试验、引导粘膜刺激试验和皮肤变态反应试验方法按卫生部《消毒技术规范》（第三版）第一分册《实验技术规范》（1999）中的“消毒剂毒理学实验技术”中相应的试验方法进行.
固体产品的样品制备方法按照A3进行。
注
1、用于皮肤刺激试验中的空白对照应为:
生理盐水和斑贴纸。
2、在皮肤变态反应中,致敏处理和激发处理所用的剂量保持一致.
A3样品制备
A3.1皮肤刺激试验和皮肤变态反应试验
以横断方式剪一块斑贴大小的产品。
对于干的产品，如尿布、妇女经期卫生用品，用生理盐水润湿后贴到皮肤上，再用斑贴纸覆盖.
A3.2引导粘膜刺激试验
A3.2.1干的产品（如妇女经期卫生用品）
以横断方式剪取足够量的产品,按1g/10mL的比例加入灭菌生理盐水，密封于萃取容器中搅拌后置于37℃±
1℃下放置24h。
冷却到室温，搅拌后析取样液备检。
A3。
2。
2湿的产品（如卫生湿巾）
在进行阴道粘膜刺激试验的当天,挤出湿巾里的添加液作为试样.
A4判定标准
以卫生部《消毒技术规范》（第三版）第一分册《试验技术规范》（1999）中“毒理学试验结果的最终判定”的相应部分作为试验结果判定原则。
附录B
产品微生物检测方法
B1产品采集与样品处理
于同一批号的三个运输包装中至少抽取12个最小销售包装样品,1/4样品用于检测，1/4样品用于留样,另1/2样品（可就地封存）必要时用于复检.抽样的最小销售包装不应有破裂，检验前不得启开。
在100级净化条件下用无菌方法打开用于检测的至少3个包装，从每个包装中取样，准确称取10g±
1g样品.剪碎后加入到200mL灭菌生理盐水中，充分混匀，得到一个生理盐水样液。
液体产品用原液直接做样液。
如被检样品含有大量吸水树脂材料而导致不能吸出足够样液时，稀释液量可按每次50mL递增，直至能吸出足够测试用样液.在计算细菌菌落总数与真菌菌落总数时相应调整稀释度。
B2细菌菌落总数与初始污染菌检测方法
本方法适用于产品初始污染菌与细菌菌落总数（以下统称为细菌菌落总数）检测.
B2。
1操作步骤
待上述生理盐水样液自然沉降后取上清液做菌落计数。
共接种5个平皿，每个平皿中加入1mL样液，然后用冷却至45℃左右的融化的营养琼脂培养基15-20mL倒入每个平皿内混合均匀。
待琼脂凝固后翻转平皿置35℃±
2℃培养48h后，计算平板上的菌落数。
2结果报告
菌落呈片状生长的平板不宜采用;
计数符合要求的平板上的菌落，按式（B1）计算结果：
K
X1=A*·
·
（B1）
5
式中：
X1—-细菌菌落总数，cfu/g或cfu/mL；
A—-5块琼脂培养基本版上的细菌菌落总数;
K——稀释度。
当菌落数在100以内，按实有数报告，大于100时才有二位有效数字.
如果样品菌落总数超过本标准的规定，按B2。
3进行复检和结果报告。
3复检方法
将留存的复检样品依前法复测2次，2次结果平均值都达到本标准的规定，则判定被检样品合格;
其中有任何1次结果平均值超过本标准规定,则判定被检样品不合格.
B3大肠菌群检测方法
B3.1操作步骤
取样液5mL，接种50mL乳糖胆盐发酵管，置35℃±
2℃培养24h,如不产酸也不产气，则报告为大肠菌群阴性。
如产酸产气,则划线接种伊红美蓝琼脂平板，置35℃±
2℃培养18—24h,观察平板上菌落形态。
典型的大肠菌落为黑紫色或红紫色,圆形,边缘整齐，表面光滑湿润，常具有金属光泽，也有的呈紫黑色，不带或略带金属光泽，或粉红色，中心较深的菌落。
取疑似菌落1-2个作革兰氏染色镜检，同时接种乳糖发酵管，置35℃±
2℃培养24h，观察产气情况。
B3.2结果报告
凡乳糖胆盐发酵管产酸产气，乳糖发酵管产酸产气，在伊红美蓝平板上有典型大肠菌落，革兰氏染色为阴性无芽孢杆菌，可报告被检样品检出大肠杆菌。
B4绿脓杆菌检测方法
B4.1操作步骤
取样液5mL，加入到50mLSCDLP培养液中，充分混匀，置35℃±
2℃培养18—24h。
如有绿脓杆菌生长，培养液表面呈现一层薄菌膜，培养液常呈黄绿色或蓝绿色.从培养液的薄菌膜处挑取培养物，划线接种十六烷三甲基溴化铵琼脂平板，置35℃±
2℃培养18—24h，观察菌落特征。
绿脓杆菌在此培养基上生长良好,菌落扁平，边缘不整，菌落周围培养基略带粉红色,其他菌不长。
取可疑菌落涂片作革兰氏染色，镜检为革兰氏阴性菌者应进行下列试验。
氧化酶试验:
取一小块洁净的白色滤纸片放在灭菌平皿内，用无菌玻棒挑取可疑菌落涂在滤纸片上，然后在其上滴加一滴新配制的1％二甲基对苯二胺试液，30s内出现粉红色或紫红色，为氧化酶试验阳性,不变色者为阴性。
绿脓菌素试验：
取2—3个可疑菌落，分别接种在绿脓菌素测定用培养基斜面，35℃±
2℃培养24h，加入三氯甲烷3-5mL，充分振荡使培养物中可能存在的绿脓菌素溶解，待三氯甲烷呈蓝色时，用吸管移到另一试管中并加入1mol/L的盐酸1mL，振荡后静置片刻。
如上层出现粉红色或紫红色即为阳性，表示有绿脓菌素存在.
附录C
产品杀菌性能、抑菌性能与稳定性测试方法
C1样品采集
为使样品具有良好的代表性,应于同一批号三个运输包装中至少随机抽取20件最小销售包装样品，其中5件留样,5件做抑菌或杀菌性能测试,10件做稳定性测试。
C2试验菌与菌液制备
C2。
1试验菌
C2.1.1细菌:
金黄色葡萄球菌（ATCC6538），大肠杆菌（8099或ATCC25922）。
1。
2酵母菌:
白色念珠菌（ATCC10231）
菌液制备:
取菌株第3—14代的营养琼脂培养基斜面新鲜培养物（18—24h）,用5mL0。
03mol/L磷酸盐缓冲液（一下简称PBS）洗下菌苔,使菌悬浮均匀后用上述PBS稀释至所需浓度。
C3杀菌性能试验方法
该试验取样部位，根据被试产品生产者的说明而确定。
C3。
1中和剂鉴定试验
进行杀菌性能测试必须通过以下中和剂鉴定试验。
1试验分组
1）染菌样片+5mLPBS
2）染菌样片+5mL中和剂
3）染菌对照片+5mL中和剂
4）样片+5mL中和剂+染菌对照片
5）染菌对照片+5mLPBS
6）同批次PBS
7）同批次中和剂
8）同批次培养基
C3.1。
2评价规定
1）第1组无试验菌,或仅有极少数试验菌菌落生长。
2）第2组有较第1组为多,但较第3、4、5组为少的试验菌落生长，并符合要求.
3）第3、4、5组有相似量试验菌生长,并在1*104—9＊104cfu/片之间,其组间菌落数误差率应不超过15%。
4）第6—8组无菌生长。
5）连续3次试验取得合格评价。
2杀菌试验
将试验菌24h斜面培养物用PBS洗下，制成菌悬液（要求的浓度为：
用100uL滴于对照样片上，回收菌数为1*104—9＊104cfu/片）。
取被试样片（2。
0cm*3.0cm）和对照样片（与试样同质材料，同等大小,但不含抗菌材料，且经灭菌处理）各4片，分成4组置于4个灭菌平皿内.
取上述菌悬液，分别在每个被试样片和对照样片上滴加100uL，均匀涂布，开始计时，作用2、5、10、20min，用无菌镊分别将样片投入含5mL相应中和剂的试管内，充分混匀,作适当稀释，然后取其中2—3个稀释度，分别吸取0.5mL，置于两个平皿，用凉至40—45℃的营养琼脂培养基（细菌）或沙氏琼脂培养基（酵母菌）15mL作倾注，转动平皿,使其充分均匀,琼脂凝固后翻转平板,35℃±
2℃培养48h（细菌）或72h（酵母菌），做活菌菌落计数。
试验重复3次,按式（C1）计算杀菌率：
X3=（A-B）/A＊100％·
（C1）
X3—-杀菌率，％；
A-—对照样品平均菌落数；
B--被使样品平均菌落数。
C3.2。
2评价标准
杀菌率≥90％，产品有杀菌作用。
C4溶出性抗（抑）菌产品抑菌性能试验方法
C4。
将试验菌24h斜面培养物用PBS洗下，制成菌悬液（要求的浓度为:
用100uL滴于对照样片上或5mL样液内，回收菌数为1*104—9*104cfu/片或mL）。
取被试样片（2.0cm＊3.0cm）或样液（5mL）和对照样片或样液（与试样同质材料，同等大小，但不含抗菌材料,且经灭菌处理）各4片（置于灭菌平皿内）或4管。
取上述菌悬液，分别在每个被试样片或样液和对照样片或样液上或内滴加100uL，均匀涂布/混合，开始计时，作用2、5、10、20min，用无菌镊分别将样片或样液（0.5mL）投入含5mLPBS的试管内，充分混匀，作适当稀释，然后取其中2-3个稀释度，分别吸取0.5mL，置于两个平皿，用凉至40—45℃的营养琼脂培养基（细菌）或沙氏琼脂培养基（酵母菌）15mL作倾注，转动平皿，使其充分均匀，琼脂凝固后翻转平板，35℃±
试验重复3次，按式（C2）计算抑菌率
X4=（A-B）/A＊100%·
（C2）
X4—-抑菌率，％；
B——被试样品平均菌落数。
抑菌率≥50％—90％，产品有抑菌作用，抑菌率≥90%，产品有较强抑菌作用。
C5非溶出性抗（抑）菌产品抑菌性能试验方法
C5.1操作步骤
称取被试样片（剪成1.0cm＊1。
0cm大小）0。
75g分装包好。
将0。
75g重样片放入一个250mL的三角烧瓶中，分别加入70mLPBS和5mL菌悬液，使菌悬液在PBS中的浓度为1＊104—9*104cfu/mL.
将三角烧瓶固定于振荡摇床上，以300r/min振摇1h。
取0。
5mL振摇后的样液，或用PBS做适当稀释后的样液，以琼脂倾注法接种平皿，进行菌落计数。
同时设对照样片组和不加样片组,对照样片组的对照样片与被试样片同样大小但不含抗菌成分，其他操作程序均与被试样片组相同,不加样片组分别取5mL菌悬液和70mLPBS加入一个250mL三角烧瓶中，混匀，分别于0时间和振荡1h后，各取0.5mL菌悬液与PBS的混合液做适当稀释，然后进行菌落计数.
试验重复3次，按式（C3）计算抑菌率：
X5=（A–B）/A*100%·
（C3）
X5—-抑菌率，%；
A——被试样品振荡前平均菌落数；
B-—被试样品振荡后平均菌落数。
C5.2评价标准
不加样片组的菌落数在1＊104-9＊104cfu/mL之间，且样品振荡前后平均菌落数差值在10％以内,试验有效；
被试样片组抑菌率与对照样片组抑菌率的差值＞26％，产品具有抗菌作用.
C6稳定性测试方法
C6.1测试条件
C6。
1.1自然留样：
将原包装样品置室温下至少1年,每半年进行抑菌或杀菌性能测试。
2加速试验：
将原包装样品置54—57℃恒温箱内14天或37-40℃恒温箱内3个月，保持相对湿度＞75%，进行抑菌或杀菌性能测试。
产品经自然留样，其杀菌率或抑菌率达到附录C3或附录C4、附录C5中规定的标准值，产品的杀菌或抑菌作用在室温下的保持时间即为自然留样时间。
产品经54℃加速试验,其杀菌率或抑菌率达到附录C3或附录C4、附录C5中规定的标准值，产品的杀菌或抑菌作用在室温下至少保持一年。
产品经37℃加速试验，其杀菌率或抑菌率达到附录C3或附录C4、附录C5中规定的标准值，产品的杀菌或抑菌作用在室温下至少保持二年。
附录D
产品环氧乙烷残留量测试方法
D1测试目的
确定产品消毒后启用时间，当新产品或原材料、消毒工艺改变可能影响产品理化性能时应予测试。
D2样品采集
环氧乙烷消毒后，立即从统一消毒批号的三个大包装中随机抽取一定量小包装样品，采样量至少应满足规定所需测定次数的量（留一定量在必要时进行复测用）。
分别于环氧乙烷消毒后24h及以后每隔数天进行残留量测定，直至残留量降至本标准4。
6所规定的标准值以下.
D3仪器与操作条件
仪器：
气相色谱仪、氢焰检测器（FID）
柱:
Choromosorb101HP60-80目；
玻璃柱长2m，Φ3nm。
柱温：
120℃。
检测器：
150℃。
气化器:
载气量:
氮气：
35mL/min。
氢气：
空气：
350mL/min。
柱前压约为108kPa.
D4.1标准配制
用100mL玻璃针筒从纯环氧乙烷小钢瓶中抽取环氧乙烷标准气（重复放空二次，以排除原有空气）,塞上橡皮头，用10mL针筒抽取上述100mL针筒中纯环氧乙烷标准气10mL,用氮气稀释到100mL（可将10mL标准气注入到已有90mL氮气的带橡皮塞头的针筒中来完成）。
用同样的方法根据需要再逐级稀释2-3次（稀释1000—10000倍），作三个浓度的标准气体.按环氧乙烷小钢瓶中环氧乙烷的纯度、稀释倍数和室温计算出最后标准气中的环氧乙烷浓度。
计算公式如下：
44*106273
c=*·
（D1）
22。
4*103*k273+t
式中:
c——标准气体浓度，ug/mL；
k——稀释倍数；
t——室温,℃.
D4.2样品处理
至少取2个最小包装产品，将其剪碎,随机精确称取2g，放入萃取容器中，加入5mL去离子水，充分摇匀,放置4h或振荡30min待用。
如被检样品为吸水树脂材料产品，科适当增加去离子水量，以确保至少可吸出2mL样液.
D4。
3分析
待仪器稳定后，在同样条件下，环氧乙烷标准气体各进样1.0mL，待分析样品（水溶液）
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