免疫组化需要注意事项_精品文档资料下载.pdf

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新出厂的载玻片，表面复盖着开一层油脂样的物质，如果不加以处理，对切片的附贴是极为不利的。

我们的做法是：

新的载玻片，放于玻璃清洗液中浸泡4小时甚至过夜，然后取出，经自来水彻底冲洗后，浸入酒精中达2小时以上，取出擦干备用或烘干也可。

然后再将载玻片浸入了氨基三乙氧基硅烷（3Aminopropyltriethoxy-silane）的稀释液（1：

50用丙酮或无水乙醇稀释都可以）中硅化10分钟，后经无水乙醇洗2次，烘干即可使用。

五、切片必须烘烤附贴牢固，既要经得起抗原修复时高温的作用而不使轻易脱片，又不至于破坏抗原。

应用于免疫组化染色的切片。

由于整个过程需经几个阶段的处理，如抗原修复时抗原修复液的沸腾且需持续十几分钟，PBS的反复冲洗，有的甚至于4冰箱中孵育达十几小时。

因此，对切片的质量要求很高，尤其是切片的附贴程度。

以往有人主张切片在60以下烘烤30-60分钟即可按此进行结果是切片掉片严重，切片松动率占100%。

切片究竟烘烤多长时间才合适，既不脱片和适合各项要求，又不至于破坏抗原。

几组实验诊断P173认为，切片在60的恒温干燥箱中烘烤2-5小时最为合适。

这是因为：

抗原可耐受如此的温度，病理科一般使用的石蜡，其熔点在60左右，组织浸蜡时，浸蜡箱中的温度，一般都调在65左右，组织在这样温度中要浸泡2小时以上，才能达到彻底地浸蜡。

组织中的抗原已经受了65的温度考验，保存下来的抗原，都已具有耐热性。

另外，经上述时间烘烤出来的切片，附贴牢固，抗原保存好，染色成功率达100%，保证了病理诊断的及时性和准确性。

特需要注意的是，不管是应用于诊断的切片还是研究用的切片，烘烤后应尽快进行染色。

如上海笃玛生物科技有限公司果切片切完后，迟迟不进行染色，存放于室温中或工作冰箱中，切片中的抗原将会随着时间的延长而逐渐消失，甚至出现假阴性。

原则上是新鲜切片，即行染色，染多少张切多少张，这样才能尽可能的保存表达更多的抗原。

六、切片脱蜡必须干净，否则将会影响免疫组化染色的最后结果。

蜡不溶于水，不与其它的临床使用的抗体相融合。

它只能靠特用的试剂，处理足够的时间，才能将其除去。

如果脱蜡不干净，少许蜡存留于切片上，将会引起许多弊病，如染色不均匀，阳性物时隐时现，真假难辨，背景染色增加等。

为了解决上述的问题，切片在染色前必须彻底脱蜡，目前用于脱蜡的试剂主要是二甲苯，因它脱蜡力强，脱蜡时间较短。

较受使用者的青睐。

脱蜡的时间要根据季节，室温和试剂的新鲜谋面是在不同。

如果在夏天，室温较高，脱蜡试剂也新鲜，则脱蜡时间不需很多，3-5分钟就已足够。

如果在冬天，室温较低，脱蜡试剂也较陈旧，则脱蜡时间需要延长，10-20分钟或更长。

总之，操作时应根据不同的季节，不同的室温，不同的试剂来决定，脱蜡的时间，原则上是要彻底，干净，完全地脱去切片上的蜡。

为了做到这一步，切片在脱蜡前的加温将有助于完成上述的要求。

比如：

当天切的切片，烧烤2小时后进行染色，切片带有温度进行脱蜡这将可加速脱蜡的过程，如果预先切好烤好的切片，在染色前，还必须对切片进行加温10-20分钟，然后再行脱蜡，这样脱蜡速度加快，效果魁伟更好。

七、必须彻底抑制内源性过氧化物酶的活性，才能降低背景的染色。

在各种组织中都含有很多的内源性过氧化物酶，尤其在红细胞，中性粒细胞，单核细胞嗜酸性细胞，出血的组织坏死的组织等等。

含有这种酶的各细胞和组织如果在染色前不对其进行处理和抑制，它们将会在DAB底物的显色时，与HRP一样催化底样，使之显色，使之生成与阳性物一样的黄棕色，造成混乱。

为止，在免疫组化染色前，都必须对内源性过氧化物酶进行抑制。

当然，对它们进行彻底的消除是不行的，因为抑制太厉害，对抗原也会有相同的抑制作用。

氢在抑制内源性过氧化物酶时，也要注意对抗原的保护抑制也只能对它们中的大部分在DAB显色后，显示出淡黄色，这就足以与真正阳性物的区别。

抑制剂常用的是0.3%的H2O2，也可将其称为1%H2O2，因为市售的H2O2的浓度为30%，按其净含量则为0.3%，如果按其溶液的用量则为1%。

关于H2O2的使用，有的使用是单纯的H2O2稀释溶，有的使用是H2O2甲醇混合物。

根据实验，认为H2O2甲醇较适合于大多数的情况，因为除了H2O2外，甲醇对各种酶，都有钝化的作用，因此H2O2甲醇的双重作用效果较好。

陈尚平等认为在多数情况中，用甲醇H2O2已经获得令人满意的结果。

八、须适当合理地使用封闭试剂为了减少背景产生的非特异性染色，在免疫组化染色的过程中，在加入一抗孵育前，常常加入非免疫动物血清，以减少背景的染色，陈尚季等认为：

抗体是高度的电荷分子，可能与带有相应电荷的组织成分无特异性地结合（如胶原）。

由于这种非特异性结合，将导致标记的部分局部化（轭合物）和胶原的假阳性染色。

要用一种不相干的抗体居先处理，可能减少和标记的抗体无特异性结合。

以往，血清的使用有很多，如：

小牛血清，马血清，山羊血清，绵羊血清，兔血清，浓度也有很多种，如：

1%.2%.或1：

5、1：

10、和1:

20.必须选择合适的抗体以及对作适当的保存和配制。

上海笃玛生物科技有限公司九、选择合适的抗体至今为止，应用于临床的常用抗体有几十种，在这当中又可分为两种类型。

1.浓缩型抗体根据近几年来使用的情况认为，它有许多优点，但也有许多不足之处：

可作为各种疾病检测的常备抗体。

在各单位的常规活检诊断中，有常见的病例，也有罕见的病例，尤其是后者，有时很长时间才遇到一例，这就给抗体的应用和备用提出了更高的要求，如除了常用的抗体外，还需备用一些较为罕见病例的抗体。

这样才能解决临床的诊断问题，如临时购买，则需较长的时间，这样就会延误诊断。

实践证明：

浓缩型抗体，可作为常备检测抗体。

当购买抗体后，根据检测病例的数量，在无菌的条件下，将抗体分成小包装，然后用蜡膜封起来，于30的低温冰箱中保存，临用时取出一支，用指温促其回升至室温，然后用PBS稀释即可使用，这种抗体可保存3年左右。

成本低，价格较便宜。

它与即用型的抗体相比较，价格要便宜好多，如以某公司2002年-2003年的CK为例，浓缩型的抗体0.1ml，价格260元，该抗体可稀释为5000ml，以每张切片所需抗体为50ul计，可标记100例，每例一抗体所需2.6元，而即用型抗体1.5ml，价格150元，可标记30例，每例一抗体需5元。

需要稀释抗体，手续较为复杂。

对于新购入的浓缩型的抗体，使用时必须将稀释为工作液，才能使用，对于从未用过的抗体，还必须实验其实际的稀释度，因为各种抗体，厂家都做了相应的稀释度的实验，但这是大概的稀释度，要使抗体真正适合于本单位的稀释度，就必须对抗体的稀释度进行实验，如1:

100.1:

75.1:

50.1:

25等，如果结果在1：

50上是最佳结果，这就是最佳的稀释点，如果在这范围内找不出最佳稀释点，则应继续实验直到找出最佳稀释点为止。

需要配置各型号的微量加样器，以利于量取精确的抗体量。

需要具备一定的英语水平，因为浓缩型的抗体多为进口试剂，其使用书都以英文为主，其中涉入抗体的来源，适应让稀释对什么组织或细胞可起反应等。

2.即用型抗体。

近几年来，免疫组化技术应用的推广，即用型抗体的应用越来越受到人们的欢迎，根据几年来的使用，认为它有许多优点和不足：

使用方便。

对于初学者来说，它是一种最好的抗体，不管什么样的病例和切片，只要有抗体，不需要自己摸索稀释度，拿起试剂瓶一滴即可，极不方便。

对于不具备或基本不懂免疫组化技术的人，只要按照说明书的方法使用，也能获得理想的结果。

不需要配置多种昂贵的微量加样器。

现今的微量加样器，如为进口货，贵者多达两千多元。

而即用型抗体无需再行稀释，即买即用，无需配备其余器械。

特别适合于基层单位。

基层单位，无需多大的投资，就能开展免疫组化的工作，这对于提高诊断的准确率，极有好处。

价格较浓缩型抗体贵。

即用型抗体不可作为常备贮存抗体。

即用型抗体，一般有效期为一年。

如果用量大的单位，对于3ml一个包装的抗体，一年需要用几支，这对抗体来说，不会造成浪费。

但如果为较小的单位，一年中标记的病例较少，购买抗体时也尽量选小包装的抗体，如1.5ml。

如果碰上罕见的病例，有时一年也标记不了几例，这样就应采用浓缩的了。

即用型的抗体，有效期上海笃玛生物科技有限公司为一年，但真正购买到的抗体使用期就不可能为一年，因为抗体从生产商到销售商的手里，需要一定的时间，如果运气好的话，你购买到的抗体，是刚交到销售商的手里，那么，使用的时间可能长些，但如果在销售商的手中滞留了一段时间，抗体的有效使用期就可能不会太长，五个月、六个月或者三个月。

如果在有效的时间内不能使用完。

稍为超过一些时间还可以，如果时间过长，就应当丢弃，因为会影响标记的质量。

有人抱怨，刚买的抗体标记很好，后来就渐渐不好了。

这是因为随着时间的延长，抗体的活性会逐渐失去生物活性，导致了标记质量的下降。

（2）抗体的适应症。

在众多的抗体中，按它们的实际使用范围，把它们分为两个类：

1.适合于冰冻切片，涂片，细胞培养片。

2.适合于石蜡切片，冰冻切片，涂片和细胞培养片。

（3）选择合适的单克隆或多克隆抗体。

抗体除了分为上述的两个类外，从其克隆的高度讲，也有单克隆和多克隆之分。

1.单克隆抗体，在目前临床常用的抗体当中，大部分都是单克隆抗体。

这要归功于生物技术的不断提高。

在早些时候，应用于临床的抗体，大多数为多克隆抗体。

2.多克隆抗体，在临床应用的抗体中，还有少部分的抗体为多克隆抗体。

（4）抗体的加入。

这看似很简单的问题，如果处理不好也可导致不同的结果，如果应用自动免疫组织化学染色仪，将程序输入即可，如为手工操作，就必须注意以下的问题：

1.当PBS冲洗完毕后，在加入抗体，如一抗，二抗或三抗。

必须将存留于切片上的多余的PBS摔干，但不能让切片干涸，切片干涸，往往可产生非特异性染色，切片上PBS存留过多，将会稀释加入的抗体，影响加入抗体的浓度，同时也将影响最后的结果，如假阴性等。

2.加入的抗体以一滴为佳。

当擦干组织块周边多余的PBS后，切片保持着一定的湿润度，此时加入另外的抗体为最佳时候，滴入抗体以一滴50ml为好，加入后，轻微地摇匀地覆盖于切片上，使最后的结果稳定均衡，不至于有的地方有反应，有的地方无反应。

3.切片没擦好将会影响加入抗体的质量，切片没冲洗干净，没擦试好，当加入抗体后，它可缩于切片的一边，此时你为了使加入的抗体能够完全地覆盖整个切片，便会使劲地加入抗体，此时的结果是，抗体依然滑向一边，或者完全露出，这不光没达到目的，还浪