浅论成骨诱导后骨髓间充质干细胞与A文档格式.docx

浅论成骨诱导后骨髓间充质干细胞与A文档格式.docx

《浅论成骨诱导后骨髓间充质干细胞与A文档格式.docx》由会员分享，可在线阅读，更多相关《浅论成骨诱导后骨髓间充质干细胞与A文档格式.docx（6页珍藏版）》请在冰豆网上搜索。

ObjectiveToinvestigatethefeasibilityofapatite-wollastonitemagneticglassceramic（A-WMGC）asscaffoldmaterialinbonetissue　ThepurifiedbonemarrowstromalcellswhichwereseparatedfromrabbitwereinducedintoosteoblastsbyDexamethasone,β-glycerophophateandVitaminCandco-culturedwithmodifiedA-WMGCinvitro.Thecell-meterialcomplexwasobservedunderphasemicroscopeandelectronicscanningmicroscopeinordertoevaluatetheinteractionbetweencellsandA-WMGC.ResultsTheformoftheinducedcellsbyDexamethasonewasconvertedtolike-osteoblasts,theexpressionofALPincreasedobviously，andtheexpressionofCollagenIwasobserved.A-WMGCPossessedgoodmacroporousstructure:

thesizeofmacroporeswas300～400μmindiameter,andporesinterconnectedeachother.Tenhoursafterco-culture,theosteoblastsadheredtoA-WMGCscaffolds.Sevendayslater,theosteoblastsdifferentiatedandproliferatedinA-WMGCnetwork.Extracellularmatrixwassecretedamongosteoblasts.ConclusionsRabbitbonemarrowstromalcellscanbeinducedintomarrowstromalosteoblastsbysuitablecontentsofdexamethasone.ModifiedA-WMGCisagoodscaffoldmaterialforthebonetissueengineering.

　　Keywords:

bonemarrowstromalcells;

osteoblastsinduction;

apatite-wollastonitemagneticglassceramic;

biocompatibility

　　骨缺损修复一直是骨科临床的棘手问题，目前常用的修复方法均存在一定的缺点，难以满足临床需要。

组织工程骨再造被认为是最有前景的骨缺损治疗修复方法。

在一定诱导条件下，可使BMSCs向成骨细胞分化的数目大大增加［1,2］，表明其具有很强的成骨潜能，是应用最为广泛的种子细胞。

细胞与支架材料的相互作用是组织工程研究的主要领域,细胞与材料的粘附是基础,细胞必须与材料发生适当的粘附才能进行迁移、分化和增殖。

　　单一的材料难以满足骨组织工程细胞外支架材料的要求，只有通过合适的方法将几种材料组合，在性能上互相取长补短，形成复合支架材料［3］。

AW生物活性玻璃陶瓷作为一种硬组织修复材料，具有理想的生物活性和骨重建功能［4,5］。

AW生物活性玻璃陶瓷植入体内后，表面溶解，释放出硅离子，能为羟基碳酸磷灰石形成提供合适成核位置，体液中的和溶解产生的钙离子、磷离子则沉积生成富钙、磷无定形层，并最终转化为能与组织紧密结合的结晶羟基碳酸磷灰石层，其化学组成和结构均与骨组织中的矿化相接近。

　　本实验体外培养兔BMSCS，在成骨诱导剂的诱导下，向成骨细胞转化，并将其作为种子细胞，A-WMGC为支架材料，观察细胞在材料上的生长情况，探索A-WMGC作为组织工程骨支架的可行性。

　　1实验材料和方法

　　实验材料与试剂

　　实验材料96孔培养板和24孔培养板,胎牛血清,胰蛋白酶，TritonX-100,地塞米松，维生素C,β-甘油磷酸钠，碱性磷酸酶试剂盒，多聚赖氨酸，A-WMGC载体，I型胶原原位杂交试剂盒。

　　实验动物　月龄健康新西兰大耳白兔1只（由锦州医学院实验动物中心提供，动物质量许可证号：

SYXK2003-0011），体重2kg。

　　实验仪器倒置相差显微镜,AT-858自动酶标分析仪，CO2培养箱，超净工作台，扫描电子显微镜。

　　实验方法

　　兔BMSCs的分离和培养：

选月龄新西兰白兔，无菌状态下于兔股骨近端抽取骨髓2mL，采用贴壁筛选法，接种于培养瓶中，72小时后更换培养液，每日在倒置相差显微镜下观察，3天换液1次。

原代培养的BMSCS接近90%时，以%胰蛋白酶消化，离心，弃上清，制成细胞悬液，细胞计数，按1×

105/瓶接种，每日在倒置相差显微镜下观察。

　　兔BMSCs的成骨诱导及鉴定：

细胞传至第3代后，进行成骨诱导,实验分诱导组和非诱导组，诱导液为10-8mol/L地塞米松,10mmol/Lβ-甘油磷酸钠和50mg/L维生素C,倒置相差显微镜下观察细胞形态变化，分别在适当的时间测定碱性磷酸酶含量、Ⅰ型胶原的表达情况、Vonkossa染色。

　　碱性磷酸酶含量测量％胰蛋白酶消化细胞后，细胞计数，以2000个/孔的密度接种于5块96孔培养板上。

实验分2组：

诱导组和非诱导组；

每组10孔，每3天换液，于第4、6、8、10、12天分别取出1块培养板，经%TritonX-100处理后，4℃冰箱过夜，用酶标分析仪测碱性磷酸酶含量。

　　Ⅰ型胶原的表达检测％胰蛋白酶消化细胞后，细胞计数，以1×

104个/孔的密度接种于24孔培养板。

培养板内置预先经多聚赖氨酸防脱片处理的盖玻片，每3天换液。

实验分组同前，于第15天应用原位杂交技术检测各组Ⅰ型胶原的表达情况。

　　钙结节Vonkossa染色诱导15天后取出细胞爬片，PBS清洗3次，2%AgNO3水溶液浸染，紫外线下处理30分钟，蒸馏水洗1分钟，5%硫代硫酸钠水溶液处理2分钟后自来水洗5分钟。

　　A-WMGC支架材料的生物学特性:

本实验所用A-WMGC支架材料由由四川大学周大利教授提供。

该材料采用溶胶－凝胶工艺［4,5］制备，并通过造孔、成型及热处理等步骤。

A-WMGC支架材料为白色块状多孔物质，孔隙率40%～50％，孔径300～400μm，孔道相互贯通。

　　A-WMGC支架材料修饰及体外实验设计：

将A-WMGC载体环氧乙烷消毒，扫描电镜观察。

将载体分别置于24孔培养板中。

先后应用无水酒精处理48小时，三蒸水处理36小时,12小时换水1次。

使材料充分湿化。

每孔分别加入多聚赖氨酸将材料充分浸泡2小时，吸除多余液体，细胞培养箱内干燥，将传了3代的成骨诱导的BMSCs制成浓度为4×

106个/mL细胞悬液,接种到装有载体的24孔培养板中,移入CO2细胞箱培养4小时后,在支架周围小心加入培养液,进行培养。

分别于培养第3天和第10天取出24孔板内的载体，PBS洗3次后，%戊二醛固定，10%～100%的乙醇梯度脱水，扫描电镜观察。

　　统计学分析：

采用版本统计软件进行处理分析，实验数据用±

s表示，组间比较均采用重复测量的方差分析。

　　2结果

　　原代和传代培养时BMSCs的生长情况原代BMSCs于24～36小时开始贴壁,细胞为圆形，48～72小时后细胞形态为较一致的长梭形、纺锤形,核较小,呈椭圆形,核浆比例小，4～5天细胞集落形成,逐渐增大,集落之间相互靠近。

10～14天时集落边缘融合,细胞呈较均一的旋涡状或螺旋状分布。

传代BMSCs在形态上与原代无明显差别。

　　兔BMSCs成骨诱导后形态观察诱导后细胞自第3天可见部分细胞由长梭形逐渐变成长方形，并逐渐变为多角形，体积较诱导前增大，多角形细胞比例随着培养时间的延长而逐渐增高,见图1。

　　兔BMSCs的成骨诱导鉴定

　　各组碱性磷酸酶活性检测结果：

非诱导组碱性磷酸酶有基础表达，但表达量低，随时间略有增加；

地塞米松等诱导组第4天时碱性磷酸酶表达与非诱导组无明显差别,随后碱性磷酸酶表达开始随时间的延长而逐渐升高，,具有显着性差异。

　　表1成骨诱导组兔骨髓间充质细胞与非诱导组在不同时间点的碱性磷酸酶比较

　　*成骨诱导组与未诱导组比较，,具有显着性差异

　　各组原位杂交技术检测Ⅰ型胶原结果：

成骨诱导组检测Ⅰ型胶原结果发现胞浆内可见大量棕黄色颗粒，见图2。

非诱导组结果为阴性。

　　钙结节Vonkossa染色结果：

成骨诱导组Vonkossa染色可见钙盐沉积区域呈黑色钙结节，见图3。

　　未复合细胞A-WMGC载体的结构观察：

未复合细胞载体在扫描电镜下观察，放大倍数为500倍时，可见材料呈孔隙均匀分布的网架结构，孔隙表面光滑，孔隙率为40％～50％，见图4。

　　细胞与修饰后A-WMGC支架复合的形态观察：

复合兔骨髓间充质细胞后，扫描电镜下观察细胞在载体表面生长情况，放大倍数为500倍。

可见椭圆形的、多角形及不规则形的骨髓间充质细胞贴附于复合材料孔隙之间，见图5。

　　3讨论

　　运用组织工程的方法修复组织缺损是近年来研究的热点,其中种子细胞的体外培养是研究的重点之一。

骨组织工程研究要求有大量的来源稳定的种子细胞，自体或异体的成骨细胞往往取材困难，来源有限，骨髓间充质细胞具有多相分化潜能，且分化是非定向的，但己经分化的间充质干细胞仍具有转化成其它类型间充质细胞的潜能［6,7］，因而，在一定诱导条件下，可使其向成骨细胞分化的数目增加，表明BMSCS具有很强的成骨潜能骨髓间充质细胞。

向成骨细胞诱导的条件已经非常成熟,在培养基中加入地塞米松、β－甘油磷酸钠、维生素C就可以使之向成骨细胞分化［8］。

已有研究将BMSCs种植于可释放地塞米松和维生素C的支架，并植入裸鼠体内，在体内形成矿化的骨组织［9］。

　　本实验中观察到地塞米松等诱导组细胞形态向类成骨细胞转化，自诱导第3天可见部分细胞由长梭形逐渐变成长方形，并逐渐变为多角形，细胞饱满，多角形细胞比例高，部分区域细胞呈现漩涡状分布。

第4天时碱性磷酸酶