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Transwell实验超详细

Transwell侵袭实验总结之杨若古兰创作

第一节概念

这里想明确两个概念,一个是Transwell,另一个是肿瘤细胞侵袭模型.

关于Transwell这个词该如何解释,查了很多材料也未见精确的注解,我觉得可以这么理解吧,trans这个词根有转移、转运、穿过等意思,well有小室的意思,可以从字面上理解,这是一类有通透性的杯状的安装,根据Corning公司的Transwell说明书中的介绍,可以认为这是一种膜滤器(Membranefilters),也可认为是一种有通透性的支架(permeablesupports).

更精确地说,Transwell应当是一种实验技术,这项技术的次要材料是Transwell小室(Transwellchamber,Transwellinsert),其外形为一个可放置在孔板里的小杯子,分歧厂家对Transwell会有分歧的命名,而分歧型号也可有分歧外形,分歧大小,根据实验须要,可有分歧选择.

但不管是何种外形,其关键部分都是分歧的,那就是杯子底层的一张有通透性的膜,而杯子其余部分的材料与普通的孔板是一样.这层膜带有微孔,孔径大小有0.1-12.0µm,根据分歧须要可用分歧材料,普通经常使用的是聚碳酸酯膜(polycarbonatemembrane).

下图是一个Transwell安装的纵切面

将Transwell小室放入培养板中,小室内称上室,培养板内称下室,上室内盛装上层培养液,下室内盛装基层培养液,上基层培养液以聚碳酸酯膜相隔.

我们将细胞种在上室内,因为聚碳酸酯膜有通透性,基层培养液中的成分可以影响到上室内的细胞,从而可以研讨基层培养液中的成分对细胞生长、活动等的影响.

利用分歧孔径和经过分歧处理的聚碳酸酯膜,就可以进行共培养、细胞趋化、细胞迁移、细胞侵袭等多种方面的研讨.

上面参考guxuefeng战友和cosmosci战友的帖子具体来谈谈孔径的选择,当然分歧细胞其体积分歧,具体选择时要考虑到细胞大小.这里次要谈几种大家经常使用的实验:

(1)共培养体系:

小于3.0um孔径条件下,细胞不会迁徙通过,是以,若研讨不涉及细胞活动能力,不须要细胞穿过聚碳酸酯膜,则应选择3.0µm以下孔径.经常使用0.4、3.0µm.我们实验室用的是0.4µm.

将细胞A种于上室,细胞B种于下室,可以研讨细胞B分泌或代谢发生的物资对细胞A的影响.

(2)趋化性实验

可用5.0、8.0、12.0µm膜,上室细胞可穿过聚碳酸酯膜进入下室,计数进入下室的细胞量可反映下室成分对上室细胞的趋化能力.

①细胞B对细胞A的趋化感化:

将细胞A种于上室,细胞B种于下室,可以研讨细胞B分泌或代谢发生的物资对细胞A的趋化感化.

②趋化因子对细胞的趋化感化:

将细胞种于上室,下室加入某种趋化因子,可研讨该趋化因子对细胞的趋化感化.

(3)肿瘤细胞迁移实验

经常使用8.0、12.0µm膜,上室种肿瘤细胞,下室加入FBS或某些特定的趋化因子,肿瘤细胞会向养分成分高的下室跑,计数进入下室的细胞量可反映肿瘤细胞的迁移能力.

(4)肿瘤细胞侵袭实验

经常使用8.0、12.0µm膜,道理与肿瘤细胞迁移实验类似.

上室种肿瘤细胞,下室加入FBS或某些特定的趋化因子,肿瘤细胞会向养分成分高的下室跑,但与肿瘤细胞迁移实验分歧的是,聚碳酸酯膜上室侧铺上一层基质胶,用以模仿体内细胞外基质,细胞欲进入下室,先要分泌基质金属蛋白酶(MMPs)将基质胶降解,方可通过聚碳酸酯膜.计数进入下室的细胞量可反映肿瘤细胞的侵袭能力.

用于研讨肿瘤细胞侵袭能力的肿瘤细胞侵袭模型有如下几种(引自司徒镇强《细胞培养》):

2.1体内癌细胞侵袭模型

2.1.1皮下移植侵袭模型

2.1.2肌肉内移植侵袭模型

2.1.3腹腔内移植侵袭模型

2.1.4小鼠肾包膜下移植侵袭模型

2.1.5鼠睾丸包膜下移植侵袭模型

2.1.6小鼠耳廓皮下移植侵袭模型

2.1.7鼠爪垫皮下移植侵袭模型

2.1.8视网内界膜侵袭模型

2.2体外癌细胞侵袭模型

2.2.1体外静止器官培养法

2.2.1.1半固体培养基单细胞器官培养法

2.2.1.2液体培养基单细胞器官培养法

2.2.2半体外半体内器官培养法

2.2.3单层细胞器官培养法

2.2.4瘤细胞球体器官培养法

2.2.4.1静止球体器官培养法

2.2.4.2扭转动摇球体器官培养法

2.2.5单层细胞侵袭实验模型

2.2.6Transwell侵袭小室测定法

可见,Transwell与侵袭实验之间其实不克不及划等号,Transwell有多种利用,侵袭实验也有多种方法.所谓Transwell侵袭实验,其实是指将Transwell这一技术利用于肿瘤细胞侵袭研讨的一种实验.因为其简单易行、反复性好,因此得到了愈来愈广泛的利用,但不克不及认为研讨肿瘤侵袭只要Transwell一种方法.

第二节Transwell侵袭实验

我的课题涉及Transwell侵袭实验和Transwell迁移实验,其他方面的Transwell利用我不太清楚,是以这里次要谈谈Transwell侵袭实验.

1.实验用品:

①Transwell小室:

多种厂家可提供,论坛里经常使用的是Costar、Corning、BD生产的小室,我们实验室用的是Chemicon公司的ECM550系列,另有Boydenchamber、Millipore公司的millicell和雕弓满月射天狼战友介绍的Thincert.

这些厂家提供的小室,有的已铺好基质胶,买来就可以用,很方便,但也比较贵,我们实验室用的Chemicon公司的ECM550系列是曾经铺好胶的,质量很好,但是非常贵,24孔板配套的小室,每个价格约130元,不推荐给大家.BD也有已包被好的,价格不清楚.Coster和Corning公司生产的小室,是论坛里比较经常使用的,好像是要本人铺胶,但据说每个小室成本只要40摆布,应当比较适合中国国情.

上面是一些战友提供的价格,具体建议大家联系代理商征询.linanping1979战友提供的价格:

coster的24孔板的transwell的价格是456元RMB,8µm,用于肿瘤的侵袭实验.iceyxy战友提供的价格:

Millipore的8µm的50个1760RMB,0.4µm的2000多,是一次性的.梅林战友提供的BD价格:

240RMB一块(6.5um,24孔,12instert),好像是没胶的.liguofan说国产的boyden30块一个.jjyy提供的价格是:

corningcatNo.3422.6.5mmtranswellwith8.0umprorepolycarbonatemembraneinsert,Qty48,950人民币不到.平均每个20元不到.

Transwell小室按照公司的请求,都是一次性使用的.不过其实洗洗泡泡还是可以反复用的.我用的Chemicon公司的ECM554,用完后擦去基质胶,再用胰酶和75%酒精泡,可以把膜洗得很干净,用前用紫外里外都照30min.sword01战友提供的处理方法:

用棉签轻轻擦去胶和反面细胞,清水冲洗,超声清洗,低挡,30min,清水3×5min,蒸馏水3×5min,室温凉干,用前紫外线小室正面3h,反面6h,微波,低火10min×2.

因为我买的是铺好胶的,所以没买Matrigel,二次利用的小室只用来做不须要铺胶的迁移实验.之前的ChemiconECM550系列,膜很结实,擦不坏,可以反复用很多次,但此刻的膜曾经改用一种很薄很脆的材料,普通只能反复用一次,真黑啊!

很多战友说Costar和Corning也是可以反复用的,大家可以试试.

本人没见过,有爱好的可以本人研讨一下.

另外,根据论坛战友提供的信息,osmonic公司有公用的膜出售,鼎国生物代理.Transwell小室用过后,可把本来的膜切下,贴上osmonic公司的膜,如许又可以用了,不过我没用过,有爱好的可以试试.maojianwen战友的使用方法:

trasnwell小室做一次后,将本来的膜去掉,从头泡酸,泡酒精,使用前照紫外,然后用女士用指甲油(留意用无色较稀的)将osmonic公司的膜贴上,剪掉多余的边沿.再照紫外.

②上层培养液:

上层培养液采取无血清培养基,为保持渗透压,需加入0.05%0.2%BSA.

③细胞:

值得留意的是,有侵袭能力的细胞才可用于Transwell侵袭实验.建议实验前先用酶谱法检测MMPs的表达,特别是MMP2的表达.如果不清楚细胞MMPs的表达情况,就盲目进行Transwell侵袭实验,可能会形成不须要的浪费,一次Transwell侵袭实验花钱少则数百,多则数千,其实不是笔小数目,还是当心为妙.

另外,为了让实验结果更明显,可先撤血清让细胞饥饿12-24h,再进行实验.

④基质胶:

经常使用的是人工重构基底膜材料Matrigel,次要成分为层黏连蛋白和Ⅳ型胶原,生产厂家有BD、美国CollaborativeRsearch公司等.CaoY战友的帖这么说的:

Matrigel是BD公司生产的,是一种细胞外基质,4度时是液体,在37度会逐步凝固成胶状,不成逆.同样的东西在sigma叫ECM.zhangyong1036战友提供的价格:

BD公司的matrigel1500摆布.

如果购买的小室是曾经铺好基质胶的,那么Matrigel就不须要购买了.

⑤基层培养液:

基层经常使用含5%-10%FBS的培养基,具体浓度根据细胞侵袭力而定,侵袭力弱的细胞可适当提高FBS浓度.基层也可用趋化因子,有战友将纤维粘连蛋白加入基层培养液作为趋化因子,但个人认为,FBS仍是最合适的.

⑥细胞培养板:

经常使用于Transwell侵袭实验的细胞培养板有6孔板、12孔板、24孔板等,以24孔最经常使用.细胞培养板没什么特殊请求,普通的细胞培养板就可以.但要留意,细胞培养板该当与购买的Transwell小室相配套.

⑦此外,膜的下室面可涂上纤维粘连蛋白(fibronectin,FN,Sigma有售),如许做的目的是使穿过膜的细胞更好地附着在膜上,也可用胶原(collagen)或明胶(gelatin).很多战友认为这不是必须的,而且我也是不涂的,细胞照样贴壁很好.如果贴壁欠好的话可以试试看.linanping1979战友认为,如果培养时间很长(>24h),细胞还是会掉到下室里面去,所以有条件的话,最好还是在膜基层涂上FN.

另外,值得一提的是,膜基层涂上FN还有必定的趋化感化.

2.步调

2.1Transwell小室制备

2.1.1无基质胶Transwell小室制备

①包被基底膜:

用50mg/LMatrigel1:

8浓缩液包被Transwell小室底部膜的上室面,4℃风干.如果须要鄙人室面铺FN的话,可将200ul枪头的尖端剪掉,汲取FN均匀涂抹在小室的上面.用胶原(collagen)的话,一班配成0.5mg/ml,直接用枪吸了涂在膜上.

②水化基底膜:

吸出培养板中残存液体,每孔加入50ul含10g/LBSA的无血清培养液,37℃,30min.

另有tianjin_glioma战友提供的方法:

在上室的聚碳酸酯膜上加入浓缩后的Matrigel(3.9ug/ul)6080µl(留意体积不成太大,以刚把聚碳酸酯膜浸湿为最好),置37℃30min使Matrigel聚合成凝胶.

2.1.2有基质胶的Transwell小室制备

Chemicon公司的ECM550系列说明书请求,将小室放入培养板中,在上室加入300µl预温的无血清培养基,室温下静置15-30min,使基质胶再水化.再吸去剩余培养液.

2.2制备细胞悬液

①制备细胞悬液前可先让细胞撤血清饥饿12-24h,进一步去除血清的影响.但这一步其实不是必须的.

②消化细胞,终止消化后离心弃去培养液,用PBS洗1-2遍,用含BSA的无血清培养基重悬.调整细胞密度至1-10×105,个人认为不要超出5×105.

具体实验时采取密度要本人摸索,因为分歧细胞,其侵袭能力是分歧的.个人经验,细胞量过多,穿过膜的细胞会过多过快,如果最初用计数法统计结果的话将难以计数;而过少的话,可能还没到检测的时间点,所有的细胞都已穿过,是以起码也要包管在收样的时候,上室内还要有必定量的细胞存在.

个人认为,对照组和处理尽量不要分开计数,因为细胞数目的差别会严重影响实验结果.如果须要对细胞预处理而不克不及不分开计数,那么计数必定要多反复几次,力求精确,尽量包管对照组和处理组细胞密度分歧.

2.3接种细胞

①取细胞悬液100-200µl加入Transwell小室,分歧公司的、分歧大小的Transwell小室对细胞悬液量有分歧请求,请参考说明书.24孔板小室普通200µl.

②24孔板下室普通加入500µl含FBS或趋化因子的培养基,分歧的培养板加的量有分歧请求,具体请参考说明书.这里要特别留意的是,基层培养液和小室间常会有气泡发生,一旦发生气泡,基层培养液的趋化感化就减弱甚至消逝了,在种板的时候要特别留心,一旦出现气泡,要将小室提起,去除气泡,再将小室放进培养板.

③培养细胞:

惯例培养12-48h(次要依癌细胞侵袭能力而定).时间点的选择除了要考虑到细胞细胞侵袭力外,处理身分对细胞数目的影响也不成忽视.

以我的课题为例,我使用的药物不但会按捺肿瘤细胞侵袭力,还对细胞增殖有明显按捺.我选择的药物浓度是用MTT筛选出的72h的IC50.用这个浓度处理细胞,24h内对细胞增殖并没有明显按捺,但24h后,按捺感化就开始出现了.所以,用这个浓度来做Transwell,处理时间也必须限制在24h内,否则一旦药物按捺了细胞增殖或者引诱出凋亡,使处理组细胞数目少于对照组,那么就难以肯定穿过膜的细胞比对照组少,究竟是因为侵袭被按捺惹起,还是处理后细胞数目本人就比对照组少而惹起的了.

时间过长不成以,同样,过短也不成,因为细胞内会有必定量的MMPs储存,短时间内可能侵袭能力不会有太大改变.同时从药物被接收进去,进而发挥感化,影响MMPs表达,到最初释放到培养基中,还须要一个过程.时间点的选择可尽量长点,也可选择多个时间点研讨时间依附效应,但前提是这个时间范围内细胞数目不克不及有明显变更.

另外,我看到细胞在小室内的外形不是正常培养贴壁的外形,而是圆形的,仍是悬浮时的外形,不过会聚集成团,所以看到细胞不正常贴壁也没关系张,是正常景象

在培养过程中,膜下会逐步有少量吝啬泡发生,这是正常景象,可不予处理,但我碰到过培养一段时间后,膜下出现了大气泡,好在及时发现,否则后果将非常严重.是以,个人建议,最好接种细胞后1-2h把培养板从培养箱里拿出来看看,确信没有大气泡发生.

2.4结果统计

检测穿过的细胞数有两种方法:

2.4.1直接计数法

2.4.1.1“贴壁”细胞计数

这里所谓的“贴壁”是指细胞穿过膜后,可以附着在膜的下室侧而不会掉到下室里面去.如下图:

通过给细胞染色,可在镜下计数细胞

①用棉签擦去基质胶和上室内的细胞

②染色:

经常使用的染色方法有结晶紫染色、台肦蓝染色、Giemsa染色、苏木精染色、伊红染色等.

个人推荐采取0.1%结晶紫染色,这类方法有如下上风:

(1).不须要固定细胞,直接染色即可.

(2).配制简单方便.(3).染色后可以用33%醋酸脱色,将结晶紫完整洗脱上去,洗脱液可在酶标仪上570nm测其OD值,间接反映细胞数.个人认为这是结晶紫染色最大的上风所在.因为,虽然经过精确的细胞计数,常常穿过膜的细胞数仍难以精确控制,可能某一批实验穿过的细胞会特别多,乃至细胞成堆,这类情况下就难以计数了,这类情况下就可以用醋酸脱色后用酶标仪检测.使用结晶紫染色要留意,染色前要将膜风干,否则可能会染不上.

③细胞计数:

我们使用的是LeicaDC300F正置显微镜进行观察和拍照,把Transwell小室反过来底朝上就可清楚看到小室底膜上下室侧附着的细胞.也有很多人用手术刀将膜切下后染色,再贴在玻片上,滴二甲苯,再盖上盖玻片,就可以持久保管,但是如许做小室就成了一次性的了,不免有点浪费.

取若干个视野计数细胞个数.论坛里普通采取3-5个视野,也有人用10个,都是随机拔取,个人认为如许选择的视野带有很大的偶然性,也会掺进人为影响,特别是计数视野较少的时候.我拔取16个视野,不是随机选择,而是有固定的地位.我们使用的显微镜所看到的视野的直径刚好是Chemicon公司的ECM550系列小室底面膜的直径的1/4.

如图,蓝色部分暗示膜的大小,白色圆形暗示视野的大小,绿色方形则暗示拍照时所能拍下的视野的中间部分.如许,每个小室都拍摄如下图的16个视野进行计数,如许得到结果是比较客观和精确的.

2.4.1.2“非贴壁”细胞计数

因为某些细胞本身的缘由或某些膜的关系,有时细胞在穿过膜后不克不及附着在膜上,而是掉进下室.如下图:

2.4.2间接计数法

间接计数法次要用于穿过细胞过多,而没法通过计数获得精确的细胞数所采取的方法,与经常使用的MTT实验是同样的道理.

2.4.2.1MTT法

①用棉签擦去基质胶和上室内的细胞

②24孔板中加入500µl含0.5mg/mlMTT的完整培养基,将小室置于其中,使膜浸没在培养基中,37℃4h后取出.

③24孔板中加入500µlDMSO,将小室置于其中,使膜浸没在DMSO中,振荡10min,使甲臜充分溶解.取出小室,24孔板于酶标仪上测OD值.

2.4.2.2荧光试剂检测

这类方法普通是与Transwell小室一路出售的,其道理与MTT法类似,是用一种荧光染料染细胞,再将细胞裂解,检测荧光值.Chemicon的ECM554即属于这类.

2.4.2.3结晶紫检测

上文已说过,这里不再赘述,道理与MTT法也是类似的.但结晶紫染色还有个长处,就是染色和脱色的过程其实不影响膜上细胞,在脱色后还可从头染色.

这是用正置显微镜拍摄的图,结晶紫染色,进行细胞计数.

第三节Transwell的其他利用的实验步调

1.Transwell肿瘤细胞迁移实验

过程与Transwell侵袭实验基本分歧,分歧的只是不须要铺Matrigel.个人认为,因为没有基质胶的反对,细胞穿过膜的速度较侵袭实验明显加快,所以细胞量要更大.我做侵袭实验的细胞密度是1×105,而迁移实验的密度是1×106.另外,基层培养液的FBS浓度也可适当下调,我做侵袭实验的浓度是5%,迁移实验的浓度是2.5%.

2.cathywxy战友的Transwell上皮细胞培养步调

做了一段时间的原代细胞培养,把经验拿出来跟大家分享一下吧,请有关战友共同探讨:

(1)将雄性wistar大鼠麻醉,开胸,将气管取出,置于4℃含0.1%胰蛋白酶XIV(Sigma),100U/ml青霉素和100ug/ml链霉素(GibcoBRL)、无Ca2+、Mg2+,无血清的MEM.

(2)用无菌的细胞刮棒刮气管内壁,将所得溶液离心后得到游离细胞.

(3)离心后立即用新颖的上述MEM溶液(含10%胎牛血清)清洗3次,以中和胰蛋白酶,再用含5%胎牛血清、100U/ml青霉素和100ug/ml链霉素的LHC8medium(Biofluids)冲洗一次.

(4)冲洗过后,将得到的细胞悬液用台盼兰测定活力,若存活率大于90%,则将细胞以106/cm2密度接种于可通透的多聚碳滤膜上(12mmSNAPWELL,Costar),以37°C5%CO295%空气含5%胎牛血清(GibcoBRL)and100U/ml青霉素and100ug/ml链霉素的LHC8medium孵育6~10天.

(5)孵育后,经测定跨上皮电阻在1000~2000Ω之间,即可用于电生理试验.

显微镜下气管上皮细胞形细胞呈铺路石状,圆形核位于地方,生长时常彼此紧密连接成单层细胞片

3.metastasis战友的TranswellB16细胞的体外迁移实验

我之前用costar的Transwell做过B16细胞的体外迁移实验,具体是这么做的:

首先把Transwell倒置,在Transwell的PVPF膜(0.8um)的下概况涂一层fibronectin(10ug/ml,50ul),37度2小时,PBS洗一遍后,放入事后每孔加有600ul的培养基(含10%血清)的24孔板内,后在Transwell的内室加入细胞(100ul,用含0.1%血清的培养基浓缩好本人所需密度),放入培养箱,1218小时后,取出Transwell,用棉签擦去PVPF膜靠近内室那一面的细胞,另一面的细胞用甲醛室温固定30分钟,结晶紫染色20分钟,用清水洗3遍以上,后在显微镜下观察细胞,记数.

4.mci战友的内皮细胞HMEC1迁移实验

1%明胶处理的transwell经无血清的MCDB131培液于培养箱中平衡1小时后,上室加入100µl用serumfreeMCDB131浓缩的5*104/孔的HMEC及分歧浓度的药物,下室加入0.6mlserumfree的MCDB131培液及20%FCS刺激迁移,同时设置响应阴性及阳性对照,置于CO2培养箱中感化8小时,然后弃去孔中培液,用90%酒精常温固定30分钟,0.1%结晶紫常温染色10分钟,清水漂净,用棉签轻轻擦掉上层未迁移细胞,显微镜(Olympus,DP50,Japan).下观察并拍照,最初用10%乙酸100µl/孔抽提10分钟,于600nm处测定OD值.按捺率计算公式为:

按捺率(%)=[(OD值给药组OD值无刺激阴性对照)/(OD值不加药阳性对照OD值无刺激阴性对照)]×100%.

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