临床常见标本的采集方法精编版.docx

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临床常见标本的采集方法精编版

临床常见标本的采集方法

一、静脉血标本的采集

1．操作者先洗手或用手消毒剂喷雾后揉搓待干；2．根据受检者检验项目选择真空采血

管；3．在穿刺点上方约6cm处系紧压脉带，嘱受检者紧握拳头，使静脉充盈显露，进行皮肤消毒；4．取下双向采血针头无菌帽，以左手拇指固定静脉穿刺部位下端，右手拇指和食指持采血针柄，使针头与皮肤呈30°角沿静脉走向快速刺入皮肤，然后呈5°角向前刺破静脉壁，进入静脉腔。

见回血后，将针头顺势深入少许即可；5．将采血针的另一端刺入所需的真空采血管盖中央的胶塞中，血液自动流入试管。

如需多管血样，将松开压脉带，嘱受检者松拳，用消毒干棉球压住穿此处，快速拔出针头，嘱受检者按压局部数分钟；6．取下采血针放入利器盒，将所采血样分别贴上相应的条码，抗凝血需立即颠倒混匀，及时送检。

二、动脉血气标本的采集

1．受检者取坐位或卧位，休息5min，应正常呼吸，避免憋气及过度通气，以免影响检

查结果；2．选择动脉血管后，常规皮肤消毒，用动脉采血针（内有肝素）垂直刺入血管，针管自动吸入0.5ml后，用消毒干棉球压住穿刺处快速拔出针头。

局部按压5min以上，防止血肿形成；3．拔出后立即将针头用橡皮封闭，隔绝空气。

随即挫动注射器，使血液与肝素充分混匀，立即送检。

送检过程中要防止针头橡皮脱落，造成空气直接进入注射器。

如有不慎脱落，必须如实向检验人员说明情况，并告知临床医生，以免影响检验结果和临床诊断。

如确因不能及时送检，可将标本短时间内保存于4℃冰箱中。

三、生化检验标本的采集

注意病人生理因素对检验结果的影响，如年龄、性别、体型、情绪、运动、体位改变等。

研究表明，CH、ALP、UA等项目易受年龄的影响，性激素的测定男女差别巨大。

受情绪影响较大的项目有GLU、GH、CA、Cor、PRL等。

另外，血清中CH、ALB、ALT、ALP、AST、TG、AMY及血清Ca等项目受体位改变因素影响较大。

还应注意饮食对测定结果的影响，包括病人是否真正空腹及不进流食。

空腹一般控制在12—16h最佳，过长或过短对某些测定结果可产生影响，如GLU、BUN、CR、ALB、UA、TG、电解质、肝功能等。

个别项目需病人控制饮食，如血脂测定前最好连续素食3天，以防产生假性结果。

注意药物对测定结果的影响，目前以证明至少有100多种药物对多项生化检验结果有影响，如利胆剂可使血清CH升高；肝素使血清CH降低，APTT显著升高，大剂量的维生素C对氧化酶法测定血清GLU有负干扰，CH、TG的Trinder反应产生负干扰，咖啡因造成血GLU、CH增高，冠心平导致血清中TG和LDH增高，大剂量青霉素可使血清CK、ALT、CR升高而BIL降低等。

尽可能在标本采集前2d停服药物，却因治疗需要无法停药者，应在检验申请单上注明用药种类和剂量，以备参考。

此外，对采样时间要求严格的检验项目，应详细告诉病人真确记录时间，何时采取标本等事宜，如24h尿蛋白和电解质测定，糖耐量试验等。

对于如激素易受生理因素影响的项目，需多次测定时，最好选择每天的同一时间采样，以便减少昼夜变化的影响，便于比较和分析。

四、葡萄糖耐量试验标本的采集

OGTT检查前三天停用胰岛素、肾上腺皮质激素等药物，可正常饮食（每天碳水化合物量一般控制在250—300g）。

试验前一天晚上餐后不再进食（空腹8—124h）。

标本采集后应立即送检，切忌不同时间点的多份标本采集后一起送检。

五、血液流变学标本的采集

采集前三天停用具有溶栓抗凝作用和降脂的药物，女性避开月经期。

采集前空腹12h以上，前一天晚上低脂饮食，患者处于静息状态。

避免在输液过程中采血，禁止在输液手臂同侧采集血液，抽血时病人取坐位肘部静脉采血。

采血后立即送检并检测，最好在4h内完成，存放于4℃冰箱可延长至12h.血样不宜在0℃以下存放，以免RBC发生破裂。

六、疟原虫标本的采集

间日疟及三日疟患者应在发作后数小时至十余小时采血为宜，恶性疟患者应在发作开始时采血。

怀疑疟疾的患者一次检查阴性应多次复查，必要时骨髓涂片检查疟原虫。

采集的静脉血标本应尽快送检，标本应及时制成学膜片。

血膜片可于室温中保存，尽早检查。

七、微丝幼标本的采集

以晚上22时至次日凌晨2时病人从睡眠中醒来后，立即采血为宜。

如夜间采血确有困难的病人可采用诱出法，即在白天口服海群生2~6mg/kg体重，15~30min后采集血液。

采用试管浓集法：

取含有0.4ml枸橼酸钠的真空试管（黑色盖子），采集静脉血2ml注入试管，轻轻颠倒混匀6~8次，防止标本凝固。

标本采集后应尽快送检，并及时制成血膜片尽快检查。

检验后的剩余血液可以放在冰箱保存3d

八、乳酸测定标本的采集

检测前三天，待检者不要做剧烈运动，抽取标本前禁食12h.。

在患者处于安静状态后2h采集标本，并嘱患者不可用力握拳。

九、血药浓度监测标本的采集

对于治疗药物的检测，应根据药代动力学选择服药后的最适时间抽血检测。

欲了解药物的长期效应，通常在药物的第5个半衰期（药物的稳定期）采血；欲了解药物的峰值效应，通常在用药1~2h采集（地高辛和毛地黄毒苷为6~8h）。

十、激素检测标本的采集

许多激素在一天24h内的分泌量不同的。

如可的松在血液中的峰值为早晨4~6时，GH、LH和FSH均以阵发性方式释放。

在测定此类激素时，有必要采集连续时间间隔的数份血标本，以其中间值为测定值；而血清中肾素活性在体位由卧位变为站位时，将出现明显增高。

ACTH分泌峰值期在6~10时，低值期在0~4时，波动幅度为150%~200%。

妇科激素采血前建议静坐30min，标本采集前需要停止类固醇药、甲状腺素、ACTH、雌激素或性腺激素的治疗，否则会影响检测结果。

抽血检查时患者和医生应准确把握月经周期，以便解释检验结果。

十一、尿液分析表本的采集

患者留取标本前24h禁止服用维生素C等药物，勿食深色素食物。

禁服磺胺类药物，禁止加甲醛等防腐剂。

嘱患者清洁尿道口及周围皮肤，防止粪便、清洁剂、粉剂、油类及有色物质等污染尿液。

最好留取晨尿或“二次晨尿”（清晨排空膀胱，空腹收集2h的尿液），也可随时留取中段尿，尿量不少于10ml。

尿标本2h内送检，避免强光照射。

十二、尿三杯试验标本的采集

取尿杯3个，标明1、2、3。

于清晨第一次排尿时，分为三段排于3个尿杯中，每杯不少于5ml。

第一杯留取最前段部分尿液，第二杯留取中段尿液，第三杯尽量留取最后段部分尿液。

注意尿液要一次性排出，中间不可间断，留尿后立即送检。

十三、尿红细胞位相标本的采集

留取标本前病人按常规尿检准备。

留取早晨第一次尿的中段尿（晨尿）10ml于洁净容器中（必要时清洗外阴），2~8℃冷藏保存。

早上8时到检验科时，留取新鲜的中段尿10ml于洁净容器里（必要时清洗外阴），两次留取的尿液一并及时送检。

注意留尿前不要喝大量的水（B超以后的尿不能用）且保证尿样不受污染（女性以避开行经期）。

十四、24h尿蛋白定量标本的采集

留取标本前病人按常规尿检准备。

准备一洁净、无污染的干燥盛尿大容器，从检验科领取5ml甲苯作为防腐剂。

具体步骤：

1.在收集标本的第一天（如早晨7时），病人排空膀胱中的的尿液，弃去不要。

此后，连续收集24h的全部尿液排入大容器中。

留取第一次尿液时把5ml甲苯一并倒入；2.在结束收集标本的第二天（如早晨7时），病人排空膀胱中的尿液，收集于盛尿容器里；3.准确测量并记录总尿量；4.充分混匀全部尿液，取出约5ml于常规尿管中，贴上标识，送检验科检测，其余尿液弃去不要。

注意24h留尿完毕后，须将全部标本充分混匀，准确记录尿量，再取出约10ml检测标本。

十五、大便常规标本的采集

必须使用洁净、干燥、无吸水性的的容器，禁止用棉拭子、纸巾、纸盒等留取或存放。

尽量选取含有粘液、脓血等病变成分的粪便，外观无异常的粪便必须从表面、深处和粪端多处获取标本。

检查绕虫卵时，需用软黏透明纸拭子，在清晨排便前自肛门周围拭取标本，也可用棉拭子拭取，但必去立即送检。

检查痢疾阿米巴滋养体，应于排便后迅速送检，立即检查。

冬季采取保温措施。

十六、精液常规标本的采集

检查前禁欲（性生活、手淫及遗精）3~7d，已明确精子形成低下时，应禁欲7d后再收集标本。

排精次数与禁欲时间可能对检查结果产生一定的影响，有报道禁欲时间过长，精液量虽然增多，但精子活力有所下降。

留取标本前排净尿液，必要时清洗外阴部。

用手淫或其他的方法，将一次射出的全部精液收入洁净、干燥的加盖容器内，有报道分布射精收集的各段精液分析中，最前段精液中精子的密度最高，以后各段渐依次减少，故精液采集时应收集全部标本。

勿使用可能被酸碱污染或对精子产生影响的容器，乳胶或避孕套内含有抑制精子活力的滑石粉，应禁止使用。

标本送检时需正确注明采样时间，30min内保温送检。

精液常规检查如果出现一次异常结果，应隔1周后再复查，连续检查2次至数次，间隔应大于7d不能仅凭一次检查结果作出判断。

十七、常见临床微生物标本的采集

微生物检验工作的成败除了实验室的能力和效率外，很大程度上要看标本采集和送检环节的质量。

由于标本的采集和处理不当，可能造成检验结果的假阳性和假阴性。

因此微生物标本的采集应遵循如下原则：

1.尽量在抗菌药物使用前采集标本。

采集标本前应至少停药3d.如病人不能停药，应在下次抗生素使用前采集。

2.标本采集时，应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌的污染。

3.标本采集后应立即送至微生物实验室，放置时间过长会影响检验结果。

如不能立即送检，一般应放2~8℃冷藏的条件下保存（血液培养采集后若不能及时送检，可于室温保存）。

某些菌种（淋病奈瑟均、脑膜炎奈瑟菌、嗜血杆菌、肺炎链球菌等）。

不仅要及时送检，而且再送检的过程中要注意保温。

4.盛标本的容器必须经灭菌处理（到微生物实验室领取），但不得使用消毒剂和酸类剂处理，以免残留物影响细菌的生长。

送检时，标本切勿污染容器的瓶口和外壁，防止污染和传播。

5.送检标本应注明标本来源和检验目的，以正确选用相应的培养基和适宜的培养环境。

1.血液及骨髓标本的采集：

采血的部位多为肘中静脉，疑为亚急性细菌性心内膜炎时，以肘动脉和股动脉采血：

为宜。

切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采血。

采血部位的局部皮肤应严格消毒。

将采集的血液注入血培养瓶前，应更换针头或过火消毒。

血培养瓶不用时放常温即可，不必放在冷藏室。

采血次数及间隔时间：

急性发热性疾病（如脑膜炎、细菌性肺炎等）需尽快进行抗菌治疗。

急性骨髓炎、化脓性关节炎等需要紧急手术的患者，立即从两臂分别采取2份标本。

对感染性心内膜炎的患者再24h内采血3次，每次间隔不少于30min，必要时次日再作血培养2次。

对发热原因不明者两次抽血间隔为60min，必要时于24~48h后再抽血2次。

国外资料统计，1次血培养菌血症的检出率为80%，2次可达90%，3次可达99%.每次采血量成人5~10ml，婴幽儿为1~2ml。

培养基：

血液为10：

1，以稀释血液中的抗生素、抗体、补体、溶菌酶等杀菌物质。

有人主张对于长期接受抗菌药物治疗的病人，培养基：

血液应大于20：

1.骨髓一般采集1~2ml

血标本的采集和培养各环节必须严格无菌操作，以免发生标本的污染。

同时，不可将血培养中出现的不常见细菌或一些皮肤表面的正常细菌随意的判断为污染菌。

因为对一些大量使用抗生素、免疫制剂以及机体免疫力降低的病人，条件致病菌或非致病菌均可引起菌血症、败血症。

两次血培养结果为同一种细菌，患者2~3周后血中抗体效价明显升高，应该作为菌血症的病原菌处理。

厌氧菌培养应作为血培养检查的常规方法，特别是疑为厌氧菌感染者。

同时还必须注意L型细菌的培养。

2.脑脊液标本的采集：

对患者进行腰椎穿刺，采集脑脊液3~5ml，盛于无菌试管和血培养瓶中送检。

脑脊液标本尽量在抗生素治疗前采集，穿刺过程中应严格无菌操作，防止污染。

由于脑膜炎奈瑟氏菌离体后容易自溶，流感嗜血杆菌及肺炎链球菌容易死亡，故标本采集后应立即送检微生物实验室。

脑膜炎奈瑟氏菌等许多细菌对外界抵抗力比较弱，应注意保暖、防止干燥和日光直射。

为防止采集的标本浑浊，最好进行“床边接种”，否则影响培养的阳性率。

为了提高细菌的培养的阳性率，可在接种血平板、巧克力平板的同时，接种血液增菌培养基。

3.尿液标本的采集：

中段尿采集法是临床最常见的采集方法，以晨尿为宜。

女性病人在采样前应先用肥皂水或0.1%的高锰酸钾溶液冲洗外阴部及尿道口：

男性病人翻转包皮，用肥皂水清洗尿道口。

对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用针管的细针头斜穿入管壁采集尿液：

或拔去闭式引流的集尿袋，弃去导尿管前端的尿液，留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。

切忌直接从集尿袋的下端关口留取标本。

确定菌尿是来自肾脏，可通过尿管采集肾盂尿。

充分冲洗膀胱，以最后一次冲洗尿作为对照，然后将导尿管插入输尿管，做好左右标记，收集3次尿液。

如果尿管细菌数比对照尿细菌数多或第三次尿比第一次多，则该细菌可能来自肾脏：

相反，第一次尿菌数多余第三次尿菌数，则可能来自膀胱。

尿厌氧菌培养或儿童婴幼儿的中段尿留取困难，必要时可经耻骨上穿刺收集无污染的膀胱内尿液。

厌氧菌的培养尚需在取得尿液后，针头插于橡皮塞上立即送检。

尿液标本采集和培养最大的问题是杂菌污染，所以应严格无菌操作。

耐心细致的向病人说明如何留取中段尿。

室温下，尿标本耽搁稍久可致尿内的细菌明显增高，影响病原菌和污染菌的区分。

不能立即送检者，可暂时放4℃冰箱保存，但不能超过8h。

此外，应在用药前或停药3d后采集尿液，因为治疗所用药物多数均通过尿液排泄。

尿液标本不得加入防腐剂和消毒剂，否则影响细菌的培养结果。

4.下呼吸道标本的采集：

合格痰标本的采集是取得正确检验结果的关键。

临床微生物工作人员应耐心指导患者如何采集标本，要求采集肺深部的痰液（不是唾液），一般以晨痰最好。

清水反复漱口后用力咳嗽，从呼吸道深部用力咳出新鲜的痰液于无菌容器内送检（尽可能的减少口腔正常菌群的污染）。

痰量少者，可用4℃10%NaCL溶液雾化吸入导痰。

支气管扩张症或支气管有相通的巨大空洞的患者，清晨起床后进行体位引流，可采集大量痰液；对咳嗽乏力和昏迷病人，可用吸痰管经鼻腔或口腔抵达气管内吸引痰液；用纤维支气管可直接在病灶部位采集高浓度的感染病原菌，但应避免咽喉部正常菌群的污染；双侧肺部感染伴人工气道（如气管切开或气管插管）的患者，可用吸痰管经人工气道插至叶支气管水平吸引痰液；对重症、难治、有免疫缺陷或因厌氧菌引起的医院内肺部感染，必要时可采用环甲膜穿刺经气管吸引（TTA）、经胸壁穿刺肺吸引（LA）经纤维支气管或人工气道作防污染双套管毛刷（PSB）或防污染支气管肺泡灌洗（PBAL），采集无口咽部菌群污染的痰液，进行精确的感染病原学诊断。

痰液标本不能及时送检者，可暂置4℃冰箱存放。

如室温下耽搁数小时，使定植于口咽部的正常菌群过度生长，肺炎链球菌、嗜血杆菌等苛氧菌的检出率将明显下降。

5.咽拭子及鼻咽拭子标本的采集：

咽部是呼吸和食物的通道，晨起采集最好。

医生采集标本时应戴口罩和手套，以防传染。

病人先用清水漱口，由检查者将舌向外拉，使悬雍垂尽可能向外牵引，将咽拭子越过舌根，到咽喉壁或悬雍垂的后侧反复涂抹数次，避免接触口腔和舌黏膜，尽可能减少污染。

检查脑膜炎奈瑟氏菌或白喉棒状杆菌时，如咽部有明显发红或有伪膜存在，应在局部涂抹取材后，小心地将棉拭子立即放入无菌管中。

对局部无病变或带菌者检查，应于咽部或扁桃体上用棉拭子涂抹。

采集扁桃体部位的标本时，应以小窝为宜；高度疑似白喉时，应在咽喉部深层组织中采集标本，而表面渗出液多为类白喉棒状杆菌和葡萄球菌。

标本的采集虽然在时间上无严格控制，但最好在抗生素治疗前采集。

采集前数小时不得用消毒药水漱口或涂抹病灶居部。

标本采集后应立即送检。

因为苛氧菌（如肺炎链球菌、嗜血杆菌、卡他布兰汗菌）离开人体后容易死亡。

6.化脓及创伤感染标本的采集：

对采集标本的部位，应用无菌生理盐水洗净病灶表面的污染菌，对皮肤粘膜充分消毒。

采集标本前，病灶部位应避免使用抗菌药物和消毒剂。

如果局部伤口已用磺胺类药物和抗生素治疗，则应在培养基内加入相应的物质（如青霉素酶、对氨基苯甲酸等），以提高细菌培养的阳性率；创面出血敷用药物2h以内，烧伤在12h内，不应采集标本，此时细菌培养阳性率较低。

开放性脓肿及脓性分泌物的采集：

首先用无菌生理盐水擦洗病灶表面。

用无菌棉拭子采取脓液及病灶深部的分泌物，置培养基送检。

如为瘘管，应在无菌条件下采取组织碎片于无菌试管中送检。

闭锁性脓肿的采集：

对病灶周围的皮肤及黏膜表面先用2.5%~3.0%的碘酊消毒，再用75%的酒精脱碘，用无菌注射器穿刺抽取内容物立即送检。

疑为厌氧菌感染时，取材后立即排空注射器内空气，同时将针头插入橡皮塞中立即送检。

大面积烧伤创面分泌物的采集：

由于创面的部位不同，细菌的种类也不同，应用无菌棉拭子采集多部位的分泌物，分别送检。

有时也可将浸有脓液的最内层敷料放入无菌平皿内送检，或放入无菌肉汤中送检。

对怀疑放线菌感染的标本，常用无菌棉拭子挤压瘘管，选取流出脓液中“硫磺样颗粒”，盛于无菌试管中送检；或将无菌纱布条塞入瘘管中，次日取出送检。

标本采集后应立即送检，否则应放冰箱保存，以防杂菌污染。

另外采集标本时应注意观察分泌物的形状、颜色及有无恶臭味等，作为培养和鉴定提供依据。

7.粪便标本的采集：

大多采用自然排便采集法，即排便后，挑取有脓血、黏液、糊状、米泔样等性状异常部分的粪便，盛入无菌广口瓶中送检。

不能立即送检者应放入Cary-Blair运送培养基中保存。

对不易取得粪便或排便困难的患者或婴幼儿，可采用直肠拭子采集法。

将拭子前端用无菌甘油水湿润，，插入肛门4~5cm处（幼儿2~3cm），轻轻旋转擦取直肠表面的黏液后退出，置培养基中送检。

腹泻病人应尽量在急性期用药前采集（3d以内）。

以提高细菌培养阳性率。

怀疑厌氧菌感染（主要是艰难芽孢梭菌）时，最好排便后立即培养。

尽管粪便标本中有很多杂菌，但采集时也应放入无菌瓶中送检，以免影响致病菌的分离及误诊。

在不得已时可将粪便至于无菌容器内4℃保存，但不能超过24h.不能采用冷冻-20~-80℃保存，会使活菌数量显著减少。

8．胆汁的采集：

无菌操作，有专职医师用导管做十二指肠引流，采取的胆汁分为A、B、C三部分。

A液来自总胆管，橙黄或金黄色；B液来自胆囊，黄绿色；C夜来自肝胆管，柠檬色。

因引流是导管通过口腔，易污染口腔中的正常菌，一般认为B液适宜做细菌培养。

行胆囊造影术，可同时采集胆汁，即胆囊穿刺法。

另外，在进行胆囊及胆管手术时，可由总胆管、胆囊直接穿刺采集胆汁。

这两种操作方法不易污染，适宜作细菌培养。

采集标本后立即送检，否则应放入4℃冰箱保存。

由于胆汁细菌培养阳性率较低，在接种血平板及其他平板的同时应接中肉汤培养基增菌，待肉汤浑浊后再转种相应的平板，以提高培养阳性率。

9．穿刺液标本的采集：

穿刺液包括胸水、腹水、心包液、关节液及鞘膜液等，由临床医师行穿刺术抽取。

标本的抽取，在病人用药前或停药1~2天后行无菌操作，防止污染。

胸腹水可抽取5~10ml，心包液、关节液、等抽取1~5ml，放入无菌瓶或肉汤曾均培养基中，混匀后立即送检。

不能立即送检的可暂时置于4℃冰箱保存。

怀疑厌氧菌感染时，抽取后立即排空注射器内空气，针头插入橡皮塞中立即送检或床边接种。

10．生殖道标本的采集：

生殖器官是开放性器官，采集标本过程中应严格无菌操作，减少杂均污染，根据不同的感染类型及病变特征采集不同的标本。

采集尿道标本时，应用无菌生理盐水局部冲洗，以无菌拭子插入尿道口1~2cm停留10s，轻轻旋转拭子后退出；对外阴部糜烂、溃疡者，生理盐水冲洗后用无菌拭子擦去病灶边缘的分泌物；阴道及尿道口的分泌物需在窥阴镜下，用无菌长棉拭子采集，子宫内分泌物用无菌导管抽取，导管外套一层保护膜，插入子宫过后再穿刺该膜，负压吸引，可减少阴道菌群的污染，女性盆腔脓肿时，在阴道局部消毒，由直肠子宫凹陷处进针抽取。

前列腺液的采集皮肤消毒后，有临床医师行前列腺按摩采集。

怀疑淋病奈瑟氏菌感染时，由于其抵抗力差且有自溶性，标本采集后应立即送检，或床边接种，以提高细菌培养阳性率。

阴道内有许多正常菌群，采集宫颈标本时，应尽可能不触及阴道壁。

生殖道厌氧菌感染也多见，采集标本时应避免与氧气接触，应作床边接种或置厌氧运送培养基中送检。

十八。

其他特殊项目的标本采集

肿瘤标志物组合，避免产生大量气泡和用力振荡试管而造成标本溶血。

若检测PSA，采血前48h内不得作前列腺按摩、前列腺指诊、穿刺、灌肠、直肠指诊、直肠内超声和膀胱镜检查等，否则会使测定结果偏高；检测β-HCG时，若使用激素类药物，应在送检单上注明，怀孕或流产后检测HCG时最好也要注明；甲状腺功能检测抽血时宜用酒精消毒（不可用碘酒或碘伏）；微量元素标本才几千患者应出入静息状态，避免剧烈运动和情绪激动。

标本的输送、验收与拒收

一．送检

送检人员受到样本后，须在各病区护士站LIS系统中将接受到的标本进行条码确定。

标本送到检验科后，在检验科LIS系统中，检验人员将送检到的标本条码接受。

正常作息时间内的急诊标本，由护工送至各专业组，并进行验收登记；夜间值班时的急诊标本，由护工将标本送至急诊检验室，由值班人员进行核对、接收、登记和处理，对不合格标本与临床联系后拒收和回退。

标本收集人员必需清点标本个数是否与送检单相符，并安全送到检验科。

送检过程中要注意环境对标本的影响。

有时应避光（如阳光直射下血中胆红素会分解），样本有温度要求，应确保样本置于适合的容器内。

要保证标本运送途中的安全，防止过度震荡，标本被污染，唯一表示的条码丢失和混淆，标本对环境的污染，水分蒸发等。

对于疑有高致病性病原体标本，应按《病原微生物实验室管理条例》的相关要求运送。

同时，由于血细胞的代谢、气体交换及物质转移等因素，标本放置时间过久，易使血细胞内外多种成分发生变化，导致分析结果发生误差。

因此标本采集后应及时送检，有些检测项目的标本（如血气分析）应立即送检。

晨起批量标本采集，各临床科室应充分考虑采样与送检之间的间隔时间，一般要求在上午上班前送达相应实验室。

二．验收

标本送至实验室后有专人验收，验收基本程序：

1.唯一性标识是否正确无误；2.申请检验项目与标本是否相符；3.标本容器是否正确，有无破损；4.检验标本的外观和标本量，包括有无溶血，血清有无乳糜状、抗凝血中有无凝块，，以及细菌培养的标本有无污染的可能；5.检查标本采集时间到接收时间的间隔；6.特殊标本需要送收双方签收。

三．拒收

遇到下列情况检验科可以拒收标本：

1.唯一性标识错误、不清、涂改、脱落和丢失，标本标识码与申请单或采样清单不一致；2.用错标本容器（如用错真空采集管）或容器破损难以补救；3.人为因素的严重溶血、脂血标本；4.抗凝血中有凝块，抗凝血未加抗凝血剂或血液与抗凝剂比例不正确（如血沉、抗凝因子测定等）；5.标本量严重不足；6.不应接触空气而接触了空气（如血气分析），细菌培养的标本被污染；7.采集标本离送检间隔时间过长。

正确标本采集应注意的问题

选择最佳采样时间，采集具有代表性的标本。

容器洁净度或无菌程度符合检验要求。

注意抗凝剂、防腐剂的正确应用，防止污染。

如细菌培养的容器绝对不能有防腐剂，微量元素测定对容器结晶要求远高于其他检测，24h或12h尿中某些成分分析需加防腐剂等。

静脉采血时扎止血带时间应尽可能短（一般不超过1min），抽血速度不宜过快，以免产生大量泡沫，造成标本溶血。

防止过失性的采血（如采错部位、用错真空管等），防止边输液边采血，禁止在输液同侧采血。

含抗凝剂的真空试管采血后须及时混匀标本（轻轻点到混匀切忌用力振荡试管），防止凝块和凝固。

需要毛细血管末梢采血时，由检验人员采集。

皮肤消毒后，一定要待酒精分发干燥后采血，否则血液四处扩散而不成滴。

采血时应选取无炎症、水肿、冻疮等部位，烧伤患者选择皮肤完好处采集，除特殊情况外，不要采集耳垂血。

穿刺深度一般为2.0~